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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto de diferentes métodos de desinfección en el establecimiento in vitro de Cacao (Theobroma Cacao L.) En la estación experimental Sapecho - Bolivia]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Abstract Cocoa (Theobroma cacao L.) is a perennial tree grown in humid tropical areas, of great economic importance for Africa, Asia and Latin America, its production has been limited by the impact of diseases and the low productive potential of plantations. There are clones with high productive potential and tolerance to the main diseases, but there is no efficient method of plant propagation, so somatic embryogenesis is seen as a tool for the mass production of these clones. The work was carried out in the Plant Biotechnology Laboratory of the Sapecho Experimental Station, located in the municipality of Palos Blancos in the department of La Paz, with the aim of establishing in vitro, using explants from the flower buds of cocoa, using three methods disinfection. Fourteen days after starting the in vitro implantation, total contamination (fungi, bacteria) was evaluated. 21 days later, the surviving explants and callus formation were observed. As a result, it can be mentioned that the highest percentage of fungal and bacterial contamination was 98.5%, which was presented using method III independent of the type of explant used, the disinfection method with the highest survival rate was method I with 64% in staminodia and method II with 25% in cocoa petals, the highest percentage of callogenesis formation occurred with method I and method II using staminoids with 35% and 10% respectively. The type of explant used has a great influence on contamination, survival and callus formation, so it can be indicated that the type of explant that presents the best in vitro establishment of cocoa is staminodies, in order to obtain disease-free seedlings.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align=right><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>BIOTECNOLOG&Iacute;A AGR&Iacute;COLA</strong></font></p>     <p align=right>&nbsp;</p>     <p align="center"><b><font size="4" face="Verdana">Efecto de diferentes m&eacute;todos de desinfecci&oacute;n en el  establecimiento in vitro de Cacao (Theobroma Cacao L.)&nbsp;En la estaci&oacute;n  experimental&nbsp;Sapecho - Bolivia</font></b></p>     <p align=center>&nbsp;</p>     <p align="center"><b><font size="4" face="Verdana"><font size="3">Effect of different disinfection methods on the in vitro   establishment of cocoa (<i>Theobroma cacao</i> L.) at the Sapecho Experimental Station - Bolivia</font></font></b></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align=justify><font size="2" face="Verdana"><b>&nbsp;</b></font></p>     <p align=center><font size="2" face="Verdana"><b>Marco Antonio Echenique Quezada<sup>1</sup>, Delcy Calle Alanoca<sup>2</sup>    <br> </b></font> <font size="2" face="Verdana"> <b><sup>1</sup></b>Docente Investigador,   Facultad de Agronom&iacute;a, Universidad Mayor de San Andr&eacute;s, Bolivia. <a href="mailto:manmaeq@gmail.com">manmaeq@gmail.com</a></font>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br> <font size="2" face="Verdana"><b><sup>2</sup></b>Facultad de Agronom&iacute;a, Universidad Mayor de San Andr&eacute;s, Bolivia. <a href="mailto:decalanoca@gmail.com">decalanoca@gmail.com</a></font>    <br> <font size="2" face="Verdana"><b>Art&iacute;culo recibido en: </b>4 de marzo 2020 <b>Aceptado en:</b> 9 de junio 2020</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p> <hr>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">El cacao (<i>Theobroma cacao</i> L.) es un árbol perenne cultivado en zonas tropicales húmedas, de gran   importancia económica para Africa, Asia y América Latina, su producción se ha visto   limitada por el impacto de enfermedades y el bajo potencial productivo de las   plantaciones. Existen clones con alto potencial productivo y tolerancia a las   principales enfermedades, pero no se cuenta con un método eficiente de   propagación de plantas, por lo que la embriogénesis somática se visualiza como   una herramienta para la producción masiva de estos clones. El trabajo fue   realizado en el Laboratorio de Biotecnología Vegetal de la Estación   Experimental Sapecho, situada en el municipio de Palos Blancos del departamento   de La Paz, con el objetivo de establecer in vitro, mediante explantes   procedentes de los botones florales del cacao, utilizando tres métodos de   desinfección. A los 14 días de haber iniciado la implantación in vitro, se   evaluó la contaminación total (hongos, bacterias), 21 días más tarde, se   observaron los explantes sobrevivientes y la formación de callos. Como   resultado se puede mencionar que el porcentaje de contaminación por hongos y   bacterias más alto fue 98.5% que se presentó utilizando el método III   independiente al tipo de explante utilizado, el método de desinfección que tuvo   mayor porcentaje de sobrevivencia fue el método I con 64% en estaminodios y el   método II con 25% en pétalos de cacao, el mayor porcentaje de formación de callogenesis   se dio con el método I y método II mediante los estaminodios con 35% y 10%   respectivamente. El tipo de explante utilizado tiene gran influencia en la   contaminación, sobrevivencia y formación de callos por lo que se puede indicar   que el tipo de explante que presenta mejor establecimiento in vitro de cacao son los estaminodios, para la obtención de plántulas libres de enfermedades.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Palabras clave:</b> <i>Theobroma cacao</i>, desinfección, estaminodios, establecimiento, in vitro.</font></p> <hr>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Abstract</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Cocoa (<i>Theobroma cacao</i>   L.) is a perennial tree grown in humid tropical areas, of great economic   importance for Africa, Asia and Latin America, its production has been limited   by the impact of diseases and the low productive potential of plantations.   There are clones with high productive potential and tolerance to the main   diseases, but there is no efficient method of plant propagation, so somatic   embryogenesis is seen as a tool for the mass production of these clones. The   work was carried out in the Plant Biotechnology Laboratory of the Sapecho   Experimental Station, located in the municipality of Palos Blancos in the   department of La Paz, with the aim of establishing in vitro, using explants   from the flower buds of cocoa, using three methods disinfection. Fourteen days   after starting the in vitro implantation, total contamination (fungi, bacteria)   was evaluated. 21 days later, the surviving explants and callus formation were   observed. As a result, it can be mentioned that the highest percentage of   fungal and bacterial contamination was 98.5%, which was presented using method   III independent of the type of explant used, the disinfection method with the   highest survival rate was method I with 64% in staminodia and method II with   25% in cocoa petals, the highest percentage of callogenesis formation occurred   with method I and method II using staminoids with 35% and 10% respectively. The   type of explant used has a great influence on contamination, survival and   callus formation, so it can be indicated that the type of explant that presents   the best in vitro establishment of cocoa is staminodies, in order to obtain   disease-free seedlings.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Keywords:</b> <i>Theobroma cacao</i>, disinfection, staminodia, establishment, in vitro.</font></p> <hr>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><i><br clear=all>   </i>       </font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana"><b>INTRODUCCIÓN</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">El cacao (<i>Theobroma cacao</i> L.) es un árbol originario de   América, su fruto es la base para la elaboración de chocolate y sus derivados   (Borrone et al. 2007). Esta especie se cultiva en los trópicos húmedos y es   fuente importante de ingresos en los países en desarrollo (Lanaud et al., 2009).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La producción mundial de cacao en la gestión 2013/2014 superó   las 4104000 toneladas de granos, el 72% de esta producción se concentra en   cinco países, Costa de Marfil, Ghana, Indonesia, Nigeria y Camerún. (Quispe et   al. 2016). Bolivia es un actor menor en el mercado mundial de cacao, presenta   una producción de 1488 TM, siendo los municipios del Norte del departamento de   La Paz, donde se concentra el 81% de la producción nacional (Espinoza et al., 2014).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La región de Alto Beni, que comprende los municipios de Palos   Blancos y Alto Beni del departamento de La Paz, se caracteriza por ser una zona   productora de cacao orgánico, se produce aproximadamente el 60% de cacao a nivel nacional (CEIBO, 2016).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">El cacao es un cultivo importante, se puede propagar por la vía   sexual y asexual, para la propagación sexual la planta resultante recibe las   características tanto del padre como de la madre, pero se tiene incertidumbre   de las plantas resultantes. Por la vía asexual se obtienen plantas   genéticamente iguales a la planta madre. Los dos métodos tienen una alta tasa de propagación (Gómez, 2010). </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Actualmente en la región, la propagación sexual se da mediante   la polinización natural, sus costos son bajos, pero no todas las plantas tienen   características deseables, la polinización dirigida, tiene costos altos por la   mano de obra que se utiliza. Por estas razones es importante buscar tecnologías   que ayuden a aumentar la cantidad de plantas clonales libres de microorganismos, con características agronómicas y productivas deseables. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">El cultivo de tejidos in vitro, es un conjunto de técnicas que   permiten el establecimiento, mantenimiento y manipulación de cualquier parte de   una planta, desde una célula hasta un organismo completo, bajo condiciones   artificiales, asépticas y controladas para obtener plantas libres de patógenos,   principalmente eliminando microorganismos (virus, bacterias, y hongos)   presentes   en   los   tejidos  de  las  plantas, </font><font size="2" face="Verdana">utilizando diferentes productos   y métodos de desinfección (Soliz et al., 2012).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La embriogénesis somática es   una técnica que permite obtener clones con una arquitectura dimórfica normal y   un sistema radical de gran anclaje, además de los otros potenciales que esta   técnica presenta para el mejoramiento genético, intercambio y conservación de   material a fin de lograr regenerar clones que mantengan características genéticas (Hidalgo, 2014).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Teniendo en cuenta los aspectos   anteriormente descritos, el objetivo de este trabajo de investigación fue   realizar el establecimiento in vitro del cultivo de cacao mediante explantes   florales de cacao, utilizando tres métodos de desinfección en dos tipos de explantes procedentes de los botones florales del cacao. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana"><b>MATERIALES Y MÉTODOS</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Ubicación de la zona de estudio</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La investigación fue   desarrollada en el laboratorio de Biotecnología Vegetal de la Estación   Experimental Sapecho, dependiente de la Facultad de Agronomía de la Universidad   Mayor de San Andrés, ubicado a 2 km de la localidad de Sapecho a 276  km  de    la  ciudad  de  La  Paz,  Provincia  Sud  Yungas, municipio  de  Palos    Blancos,  altitud  de  430  m s.n.m., latitud Sur 15° 33&#8242; 27.59&#8242;,   longitud Oeste 67° 20 05.10&#8242;&#8242;, con temperatura media anual   de 28°C y una precipitación anual promedio de 1800 mm (PDM Palos Blancos, 2012).</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana"><b>Metodología</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">El presente trabajo de   investigacion fue descriptivo, se evaluó tres métodos de desinfección y el tipo   de explante floral a introducir a condiciones in vitro. El medio de cultivo que   se utilizó fue el planteado por Murashige y Skoog (1962) + 2 mg L<sup>-1</sup> 2.4-D (Ácido 2.4-Diclorofenoxiácetico) + 100 mg L<sup>-1</sup>  Mioinositol + 2          mg L<sup>-1</sup> Glicina + 40 g L<sup>-1</sup> de sacarosa y 6 g L<sup>-1</sup> de agar. El pH del medio se ajustó a 5.7, estos medios de cultivo se   dispensaron en placas Petri (100 x 15 mm) en una cantidad de 15 ml de medio de   cultivo, antes de esterilizarlo en autoclave a 121°C y 1.1 kg  cm<sup>-2</sup> durante 20 min. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Los explantes utilizados para   la investigación, fueron botones florales de plantas élite de cacao (<a href="#f1">Figura 1</a>)   de la Estacion Experimental Sapecho, se colectaron en las primeras  horas de la mañana, entre las 6:00 y 7:00 a.m. con el fin de evitar la apertura de los mismos, éstos se colocaron  en  tubos  de  ensayo  con  agua fría (4 °C),</font> <font size="2" face="Verdana">para trasladarlos de manera inmediata al laboratorio, hasta la desinfección superficial.</font></p> <font face="Verdana"><font size="2">     <p align="justify">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align=center><a name="f1"></a><img width=182 height=208 id="Imagen 108" src="/img/revistas/riiarn/v7n1/image001.jpg">  <img width=166 height=208 id="Imagen 110" src="/img/revistas/riiarn/v7n1/image002.jpg">&nbsp;</p>     <p align=center><b>Figura 1. </b>Arbol elite de cacao (Izq.), botones   florales de cacao (Der).</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">Para la desinfección de los explantes, se emplearon los métodos   propuestos por Vásquez (2017), Hidalgo (2014) y Rivera (2003), denominados como método I, II, y III respectivamente. </p>     <p align="justify">Los botones florales de cacao seleccionados se sometieron a dos   desinfecciones. En la primera desinfección los explantes fueron lavados con   agua corriente y detergente comercial por cinco minutos y luego fueron enjuagados con agua destilada (<a href="#t1">Tabla 1</a>). </p>     <p align="center"><b>Tabla 1.</b> Descripción de los métodos de desinfección.  </p>     <p align="center"><a name="t1"></a><img src="/img/revistas/riiarn/v7n1/a07_figura01.gif" width="370" height="219"></p> </font></font>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">En la cámara de flujo laminar se realizó una segunda   desinfección, utilizando alcohol al 70% durante 30 segundos,  para   luego   someter a los explantes a los diferentes metodos de desinfección, en todos los   métodos se aplicó tres enjuagues con agua estéril antes de la siembra de los explantes en el medio de cultivo.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Como explantes para el cultivo in vitro de cacao, se utilizaron   pétalos y estaminodios, que fueron aislados de los botones florales.  Los  botones florales cerrados </font><font size="2" face="Verdana">fueron seccionados con pinzas y   bisturí estériles, se tomaron los botones florales desinfectados y se realizó   un corte transversal a 1/3 de la base para extraer los cinco estaminodios y los   cinco pétalos con mayor facilidad, los cuales se colocaron en placas Petri (100   x 15 mm), con 15 ml del medio de cultivo. En cada placa Petri se colocó cinco   estaminodios y en otra placa Petri cinco pétalos, pertenecientes a un mismo botón   floral, distribuidos uniformemente en toda la superficie del medio, asegurando un buen contacto de los explantes con el medio de cultivo (<a href="#f2">Figura. 2</a>).</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="f2"></a><img width=160 height=162 id="Imagen 18" src="/img/revistas/riiarn/v7n1/image003.png"> <img width=160 height=162 id="Imagen 19" src="/img/revistas/riiarn/v7n1/image004.png"></font><font size="2" face="Verdana">&nbsp;</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana"><b>Figura 2. </b>Siembra de explantes; estaminodios (Izq.) y pétalos (Der.).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Realizada la siembra, se   procedió al sellado y marcado de las muestras, tomando en cuenta la fecha y el   tipo de explante sembrado (estaminodio y pétalos). Fueron trasladados a la sala   de incubación donde se les sometió a las siguientes condiciones: temperatura   25°C y humedad relativa de 60%, se los dejaron por 35 días en oscuridad,   durante este tiempo se evaluó, el porcentaje de contaminación, porcentaje de sobrevivencia y formación de callos.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">El diseño experimental utilizado fue el completamente al azar   con arreglo bifactorial (Vicente, s.f.) de 3x2 (3 métodos de desinfección x 2   tipos de explante); seis tratamientos (<a href="#t2">Tabla 2</a>) con cinco repeticiones; cada   unidad experimental conformada por 10 explantes (pétalos y estaminodios). Las   variables en estudio fueron; porcentaje de contaminación, porcentaje de sobrevivencia, y formación de callos.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><b>Tabla 2.</b> Descripción de los tratamientos.</font></p>     <p align="center"><a name="t2"></a><img src="/img/revistas/riiarn/v7n1/a07_figura02.gif" width="375" height="169"></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Para comparar las medias de los tratamientos, se aplicó el   método de la Diferencia Mínima Significativa (DMS), utilizando un nivel de   significancia de 0.05 y 0.01. Los hongos se detectaron por medio de la   presencia de micelio y las bacterias a través de los exudados presentes en la   base del explante viable es aquel que no presentó ninguna presencia de estos y presentaron formación de callos.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana"><b>RESULTADOS Y DISCUSIÓN</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">A los 14 días de haber iniciado la implantación in vitro, se   observó una duplicación del volumen de los explantes, indicio de respuesta   callogénica; sin embargo, no se evidenció formación de callos, ni cambio de   color de los explantes. 21 días más tarde, se observaron formación de callogenesis de color cristalino y apariencia higroscópica.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Porcentaje de contaminación total</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Los resultados del análisis de varianza para el porcentaje de   contaminación total mostró diferencias altamente significativas (p&lt;0.01),   entre los métodos de desinfección, tipo de explante y la interacción de ambos   factores de estudio, en el establecimiento in vitro de cacao. La contaminación total presente en el establecimiento  de   cacao   en   condiciones  in  vitro, </font><font size="2" face="Verdana">depende de los métodos de desinfección y del tipo de explante que se utilice en el trabajo.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Los resultados del porcentaje   de contaminación total y tipo de explante (<a href="#f3">Figura 3</a>) mostraron que se tuvo  un   alto porcentaje de contaminación para el metodo de desinfección para el tipo de   explante pétalo, hallándose menor contaminación para el tipo de explante estaminodios.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><a name="f3"></a><img width=342 height=219 id="Gráfico 106" src="/img/revistas/riiarn/v7n1/image005.png"></font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><b>Figura 3.</b> Porcentaje de   contaminación total en los tipos de explante de cacao bajo la aplicación de tres métodos de desinfección. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Para los métodos de   desinfección, por medio de la prueba (DMS), se identificaron tres grupos, el   primero compuesto por los tratamientos T5 y T6 que obtuvo alta contaminación   por hongos y bacterias con el 98.5%, seguido del  segundo  grupo   correspondiente a los tratamientos T3, T2 y T4 con 77.67% de contaminación y el   trecer grupo T1 con 36% de contaminación, mostrando que con la aplicación del   método III en los explantes estaminodios se tiene menor contaminación.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">El tratamientos con hipoclorito   de sodio al 10% a un tiempo de 15 minutos, es el más apropiado para eliminar  la   contaminación, la concentración alta de hipoclorito de sodio puede causar la   quema de los explantes y provocar oxidación. (Hidalgo, 2014). Además Rivera   (2003) y Chanatásig (2004), obtuvieron 10 y 0 % de contaminación, respectivamente, usando hipoclorito de sodio al 25 % por 10 minutos.</font><font size="2" face="Verdana">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana">      <img width=161 height=162 id="Imagen 115" src="/img/revistas/riiarn/v7n1/image006.png"><img width=163 height=163 id="Imagen 26" src="/img/revistas/riiarn/v7n1/image007.png" alt="Descripción: C:\Users\windows\Documents\imagenes de cacao 2019\IMAGENES DE CACAO\1ra introducion cacao de 6 clones\20190401_084356.jpg"><img width=164 height=162 id="Imagen 116" src="/img/revistas/riiarn/v7n1/image008.png"><img width=162 height=163 id="Imagen 117" src="/img/revistas/riiarn/v7n1/image009.png" alt="Descripción: C:\Users\windows\Documents\imagenes de cacao 2019\IMAGENES DE CACAO\1ra introducion cacao de 6 clones\20190401_091031.jpg"></font><font size="2" face="Verdana"> </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align=center><font size="2" face="Verdana"><b>Figura 4.</b> Contaminación (de Izq. a Der.): estaminodios   con hongo, estaminodios con bacteria; pétalos con hongos, pétalos con bacteria.</font><font face="Verdana">   </font></p> <font face="Verdana">    <p align="justify"><font size="2"><b>Porcentaje de sobrevivencia</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2">El resultado del análisis de varianza para el porcentaje de   sobrevivencia, señala que se tuvo diferencias altamente significativas   (p&lt;0.01) entre los métodos de desinfección, tipo de explante y la   interacción de ambos factores de estudio, en el establecimiento in vitro de   cacao. El porcentaje de sobrevivencia en el establecimiento de cacao a   condiciones in vitro, depende de los métodos de desinfección y del tipo de   explantes que se utilicen en el trabajo. Los resultados del porcentaje de   sobrevivencia por los métodos de desinfección y tipo de explante (<a href="#f5">Figura 5</a>),   por medio de la prueba (DMS), identificó tres grupos, el primero compuesto por   el tratamiento T1 que obtuvo alta sobrevivencia con el 64%, seguido del    segundo  grupo correspondiente a los tratamientos T3, T2 y T4 con 22.33% de sobrevivencia   y el tercer grupo T6 y T5 con el 1.5% de sobrevivencia, mostrando que se tuvo    alto  porcentaje de sobrevivencia para el metodo de desinfección I y tipo de explante Estaminodio.</font></p>     <p align="center"><font size="2"><a name="f5"></a><img width=336 height=219 id="Gráfico 107" src="/img/revistas/riiarn/v7n1/image010.png"></font></p>     <p align="center"><font size="2"><b>Figura 5.</b> Porcentaje de sobrevivencia en los tipos de explante de   cacao bajo la aplicación de tres métodos de desinfección. </font></p>     <p align="justify"><font size="2">Chanatásig, 2004, menciona que   al utilizar hipoclorito de sodio (NaOCl) al 25% (v/v) durante 10 minutos se   obtuvo 99% de sobrevivencia de estaminodios y 97% de sobrevivencia en pétalos,   es posible que estos resultados se deban a que los explantes fueron tomados del   interior del botón floral, por lo tanto es de esperar que los explantes   estuvieran  protegidos por el cáliz de la contaminación exterior, así como del   daño que el desinfectante hubiera podido causar, Mroginski y Roca (1991),   señalan que es difícil lograr cultivos completamente estériles para cualquier   especie. Asimismo, Leifert et al. (1991), afirman que en diferentes estudios   los explantes que han sido tomados de plantas cultivadas en el campo en climas tropicales son más difíciles y a veces imposibles de esterilizar. </font></p>     <p align="justify"><font size="2"><b>Porcentaje de formación de   callos</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2">Mediante el análisis de   varianza se encontró que para el método de desinfección y la interacción de   ambos factores de estudio se tuvo diferencias altamente significativas   (p&lt;0.01), mientras que para el tipo de explante hubo diferencias   significativas (p&lt;0.05). El establecimiento de cacao a condiciones in vitro,   depende de los métodos de desinfección y del tipo de explantes que se utilicen en el trabajo.</font></p>     <p align="justify"><font size="2">Los resultados del porcentaje   de formacion de callos por los métodos de desinfección y tipo de explante    identificó tres grupos, el primero compuesto por el tratamiento T1 que obtuvo   alta formación de callos con el 35%, seguido del  segundo  grupo   correspondiente a el tratamiento T3 con 10% de formación de callos y el tercer   grupo con los tratamientos T2, T4, T5 y T6 con 0% de formación de callos,   mostrando que el metodo de desinfección I y tipo de explante estaminodios tuvieron los más altos porcenajes de formación de callos.</font></p> <font size="2">     <p align="justify">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align=center><img width=219 height=208 id="Imagen 34" src="/img/revistas/riiarn/v7n1/image011.png"></p>     <p align="center"><b>Figura 6.</b> Inducción a formación de callos en el tipo de explante   estaminodios.</p>     <p align="justify">La inducción a la formación de callos depende del tipo de medio   de cultivo que se utilice. Hidalgo (2014), a los 40 días obtuvo el 36% de los   explantes en proceso de formación de callos, el porcentaje de inducción de   callos de los estaminodios a los 40 días fue de 18 % (medio MS), 60 días los   porcentajes fueron de 43% (medio MS), mientras Quimbita (2011), utilizando   sales MS al 50% de su concentración en el mismo lapso de tiempo consiguió un 32% de desarrollo.</p>     <p align="justify">&nbsp;</p> </font></font>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana"><b>CONCLUSIONES</b></font><font face="Verdana"><font size="2"></font></font></p> <font face="Verdana"><font size="2">    <p align="justify">Se determinó que el método de desinfección del tratamiento uno   (1% de concentración durante 5 minutos) mediante estaminodios es el más   adecuado para la introducción de establecimiento de cacao a condiciones in   vitro. El porcentaje de contaminación por hongos y bacterias más altos se   presentaron en los tratamientos cinco y seis (hipoclorito de sodio al 5% de   concentración durante 50 minutos) con el 98.5%, independiente al tipo de explante utilizado.</p>     <p align="justify">El método de desinfección que tuvo mayor porcentaje de   sobrevivencia fue el método I (hipoclorito de sodio al 1% de concentración   durante 5 minutos) alcanzando el 64% de establecimiento de estaminodios y el   método II (hipoclorito de sodio de 5% de concentración durante 30 minutos) con   25% en pétalos de cacao. El mayor porcentaje de formación de callos se dio con   el método I y método II mediante los estaminodios con 35% y 10% respectivamente.</p>     <p align="justify">De esta forma se establece que el mejor método de desinfección   se fue con el método I (Vásquez, 2017) y el tipo de explante que presenta mejor   establecimiento son los estaminodios, para la obtención de plántulas de cacao libres de enfermedades. </p>     <p align="justify">&nbsp;</p> </font></font>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana"><b>BIBLIOGRAFÍA</b></font><font face="Verdana"><font size="2"></font></font></p> <font face="Verdana"><font size="2">    ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify">Borrone J; Brown, S; Kuhn,   N; Motamayor, J; Schnell, R. 2007. Microsatellite markers developed from <i>Theobroma     cacao</i> L. expressed sequence tags (en línea). Molecular   Ecology 7(2): 236-239. Consultado 5 may. 2020. Disponible en     <a href="https://onlinelibrary.wiley.com/doi/abs/10.1111/j.1471-8286.2006.01561.x" target="_blank">https://onlinelibrary.wiley.com/doi/abs/10.1111/j.1471-8286.2006.01561.x</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=945822&pid=S2409-1618202000010000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">CEIBO. 2016. Selecciones   locales de cacao de la cooperativa el Ceibo Ltda. La Paz (en línea). Consultado   18 ago. 2019. Disponible en <a href="https://www.eldiario.net/noticias/2016/2016_09/nt160922/agraria.php?n=119&-selecciones-locales-de-cacao-de-la-central-de-cooperativas-el-ceibo-" target="_blank">https://www.eldiario.net/noticias/2016/2016_09/nt160922/agraria.php?n=119&amp;-selecciones-locales-de-cacao-de-la-central-de-cooperativas-el-ceibo-</a>l&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=945823&pid=S2409-1618202000010000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">Chanatasig, C. 2004. Inducción   de la embriogénesis somática en clones superiores de cacao (<i>Theobroma cacao</i> L.), con resistencia a enfermedades fungosas. Tesis M.Sc. Turrialba, Costa Rica.  Centro Agronómico Tropical de Investigación y Enseñanza. 86 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=945824&pid=S2409-1618202000010000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">Espinoza, S; Olivera, M;   Ledezma, J. 2014. Producción del cacao y del chocolate en Bolivia Datos 2010-2013   en base a encuestas a productores y empresarios chocolateros. La Paz, Bolivia. Conservación Internacional Bolivia y Conservation Strategy Fund. 58 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=945825&pid=S2409-1618202000010000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">Gómez, S. 2010. Evaluación de   la propagación in vitro en cinco clones promisorios de cacao (<i>Theobroma     cacao</i> L.). Tesis Lic. Guatemala. Universidad de San Carlos de Guatemala. 88 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=945826&pid=S2409-1618202000010000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">Hidalgo, C. 2014. Estudio   preliminar para la obtención de explantes de cacao (<i>Theobroma cacao</i> L.)   a través de embriogénesis somática. Tesis Lic. Daule, Ecuador. Universidad de Guayaquil. 90 p.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=945827&pid=S2409-1618202000010000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">Lanaud, C; Fouet, O; Clément,   D; Boccara, M; Risterucci, A; Surujdeo-Maharaj, M. 2009. A meta QTL analysis of disease resistance traits of <i>Theobroma     cacao </i>L. (en línea). Molecular Breeding 24: 361-374. Consultado 5 may. 2020. Disponible en <a href="https://doi.org/10.1007/s11032-009-9297-4" target="_blank">https://doi.org/10.1007/s11032-009-9297-4</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=945828&pid=S2409-1618202000010000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">Leifert, C; Ritchie, J;   Waites, W. 1991. Contaminants of Plant Tissue and Cell Culture (en línea).   World Journal of Mycrobiology and Biotechnology 7: 452-469. Consultado 5 may. 2020. Disponible en <a href="https://doi.org/10.1007/BF00303371" target="_blank">https://doi.org/10.1007/BF00303371</a>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=945829&pid=S2409-1618202000010000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">Mroginski, L; Roca, W. 1991. Establecimiento de un laboratorio   para el cultivo de&nbsp;tejidos vegetales. En: p. 1-17. W. M. Roca y L. A.   Mroginski (Eds). Cultivo de Tejidos en la Agricultura. Fundamentos y   Aplicaciones. Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT). Cali, Colombia. Publicación N° 151.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=945830&pid=S2409-1618202000010000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">PDM (Plan de Desarrollo Municipal) Palos Blancos. 2012. Gobierno   Autónomo Municipal de Palos Blancos. Consultora Iniciativa. La Paz, Bolivia. 429 p. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=945831&pid=S2409-1618202000010000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">Quimbita, B. 2011.  Efecto de la concentración de 2,4-D y el   tipo de explante en la formación de callos embriogénicos en el cultivo in vitro   de cacao (<i>Theobroma cacao</i> L.). Tesis Lic. Bayamo, Cuba. Universidad de Granma. pp. 33-43. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=945832&pid=S2409-1618202000010000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">Quispe, J; Pérez, E; Condori, S; Arana, M. 2016. Manual de   manejo de cacao. INIAF. La Paz, Bolivia.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=945833&pid=S2409-1618202000010000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">Rivera, S. 2003. Respuesta de clones de cacao (<i>Theobroma   cacao</i> L.) a la embriogénesis somática de explantes florales. Tesis Lic. Cartago, Costa Rica. Instituto Tecnológico de Costa Rica. 64 p. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=945834&pid=S2409-1618202000010000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">Soliz, R; Olivera, J; Rafael,   S; La Rosa, L. 2012. Propagación in vitro de Carica papaya var.PTM-331 a partir de meristemos apicales. Revista Peruana de Biología 18(3): 343-347. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=945835&pid=S2409-1618202000010000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">Vásquez, M. 2017.   Implementación de un protocolo para la obtención de callos de cacao (<i>Theobroma     cacao</i> L.) con interés comercial. Tesis Lic. Quito, Ecuador. Universidad de Las Américas. 58 p. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=945836&pid=S2409-1618202000010000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Vicente, J. s.f. Guía Metodológica de diseños experimentales. Universidad Mayor de San Andrés, Facultad de Agronomía. La Paz, Bolivia. 221 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=945837&pid=S2409-1618202000010000700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p> </font></font>      ]]></body><back>
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