Diagnóstico Molecular de la Enfermedad de Chagas mediante Amplificación Isotérmica mediada por asas (LAMP)

QUISPE, SERGIO¹ TORRICO, BERNARDO² GUEVARA, PALMIRA³
1   Encargado Unidad de Identificación Genética, Carrera de Bioquímica, Facultad de Ciencias Farmacéuticas y Bioquímicas, UMSA. 2   Director Carrera de Bioquímica. Facultad de Ciencias Farmacéuticas y Bioquímicas, UMSA. 3   Profesor Investigador Instituto de Biología Experimental, Universidad Central de Venezuela. Caracas Venezuela
FECHA DE RECEPCIÓN: 16 DE ABRIL DE 201
FECHA DE ACEPTACIÓN 30 DE JULIO DE 2014

El seguimiento de las infecciones en triatominos es fundamental en la epidemiología de la enfermedad de Chagas. Demostramos la factibilidad de incorporar un nuevo diagnóstico molecular y detectar mediante LAMP, infecciones por T. cruzi y T. rangeli en muestras de contenido intestinal y hemolinfa preservadas en papel de filtro. La Amplificación Isotérmica mediada por asas (LAMP) es un nuevo método de amplificación de ácidos nucléicos que amplifica DNA con una alta especificidad, eficiencia y rapidez bajo condiciones isotérmicas, utilizando cuatro cebadores y DNA polime-rasa con actividad de cadena desplazante. Se ha aplicado un método que acelera la reacción LAMP mediante la utilización de cebadores aceleradores. El método LAMP utilizado en este trabajo produce una reacción en menos tiempo que el método original, esta reacción fue aplicada sobre muestras de Tripanosoma rangely y Tripanosoma cruzy. Regularmente el tiempo de detección es menor a una hora, este nuevo método nos facilita el análisis genético, incluyendo el diagnostico clínico genético en el laboratorio.

PALABRAS CLAVE LAMP, Isotérmica, DNA, Tripanosoma.

Abstract

The monitoring of triatomino infections is a key step in the epidemiology of Chagas disease. We demonstrate the feasibility of incorporating new molecular identification tools, we obtained positive LAMP identification of infections by T. cruzi and T. rangeli in haemoliph and digestive track samples preserved in filter paper. Loop-mediated isothermal amplification (LAMP) is a novel nucleic acid amplification method thatam-plifies DNA with high specificity, efficien-cy and rapidity under isothermal condi-tions using a set of four specially designed primers and a DNA polymerase with strand displacement activity. We have applied a method that accelerates the LAMP reac-tion by using additional primers, termed loop primers. The LAMP method presented here uses loop primers to achieve reaction times of less than half that of the original LAMP method, this reaction was applied to samples from Tripanosoma rangely and Tripanosoma cruzy. Since the total time of analysis including detection is less than 1 h, this new method should facilitate genetic analysis, including genetic diagnosis in the clinical laboratory

KEYWORDS LAMP, isoterm, DNA

INTRODUCCIÓN

Las enfermedades infecciosas emergentes y reemergentes en Latinoamérica y el Caribe, causadas por agentes patógenos como Leishmania, Trypano-soma, Mycobacterias, repercuten en la calidad de vida de las poblaciones. Las metodologías tradicionales como el cultivo, serología y la técnica de la Reacción en Cadena de la Polimerasa (PCR) vienen siendo utilizadas en muchos países para el diagnostico y detección de diversas enfermedades, aunque son sensibles y específicos consumen bastante tiempo y costos. Razones fundamentales para la búsqueda de nuevas herramientas diagnosticas de amplificación de ácidos nucléicos; el año 2000 los investigadores Thekisoe e Inoue en Japón desarrollaron la técnica llamada LAMP (Amplificación Isotérmica mediada por asas). Esta nueva técnica tiene las características de ser simple, rápida, especifica, sensible y de bajo costo; todo ello la faculta para ser una excelente alternativa como una prueba que pueda desarrollarse en regiones endémicas y con requerimientos básicos de infraestructura, consideramos en un futuro próximo la estandarización de esta técnica en los laboratorios de países latinoamericanos.

En el curso de una década, el análisis de estas ventajas en los procedimientos metodológicos ofrecidos por la LAMP, ha renovado el interés en el desarrollo de pruebas diagnósticas basadas en DNA como una alternativa real en el diagnóstico clínico.

En la biología de la enfermedad de Chagas, la adaptación de los vectores triatominos a los ambientes humanos, junto con la circulación de Trypanosoma cruzi entre estos y los animales salvajes y domésticos es el factor de mayor importancia para el establecimiento de la infección en humanos (1). Es necesaria la evaluación y el seguimiento de los triatominos en cuanto a su infección y a los cambios que conduzcan a su adaptación a ambientes humanos. (Quispe, 2007)

METODOLOGÍA

Aislamiento de DNA de muestras clinicas

Se ha embebido en papel filtro FTA una gota de muestra, se dejo secar al menos por tres horas a temperatura ambiente. En un tubo eppendorf se introdujo un pequeño fragmento cortado de papel filtro con muestra. Se aña-dio 150 uL de reactivo de purificación, incubado a temperatura ambiente por 15 minutos. Se centrifugo brevemente y se descarto el sobrenadante con cuidado. Se repitió los utlimos tres pasos nuevamente. Para lavar el sedimento se añadio 150 uLdeTamponTE. Se centrifugó y descartó el sobrenadante con cuidado. Se dejo secar a 50°C por 1 hora.

LAMP para diagnostico de Trypanosoma rangeli

Se ha amplificado mediante la reacción isotérmica LAMP (Thekisoe, 2011), para la detección especifica de Trypanosoma cruzy y Trypanosoma rangeli, basado en los genes de RNA ribosomal 18S y los pequeños RNA nucleares.

Muestras. Las muestras correspondieron a DNA de Trypanosoma rangeli aislado de perro y DNA de Trypanosoma rangeli aislado de Triatomino.

Master Mix. Se preparo una solución Master Mix con una volumen final de 25 ul por cada reacción que contenía lo siguiente: Tampón 2X, Primer Mix, enzima BST I, agua bidestilada y DNA templado aislado por método de columna.

LAMP. Se trabajo con 23 ul de master mix y 2 ul de DNA de la muestra y agua bidestilada como controles del cuarto gris y cuarto blanco, a todos se les coloco 10 ul de parafina para evitar aerosoles de amplicones. En vez de incubarlo en baño de María, como se describe en la técnica original, se amplificó en un termociclador MJ Research a temperatura estable de 63°C por 60 minutos y para terminar la reacción se aplico un shock térmico a 80°C por 5 minutos.

Revelado. Para identificar los productos de LAMP se utilizo la metodología de electroforesis en gel de agarosa al 2% y se reveló con Bromuro de Eti-dio, se visualizo en luz UV a través de la cámara de Bio-Rad.

El DNA producto de la reacción LAMP fue visualizado mediante electroforesis en geles de agarosa como una escalera que degenera en un barrido, la cual comienza con un fragmento base generalmente mayor a cien pares de bases, cuyo tamaño lo determinan los iniciadores internos FIP/BIP. El patrón de bandas de la escalera llega a alcanzar fragmentos de más de 10 Kb, mostrándose como un barrido o "smear" que alcanza al bolsillo del gel (Notomi, 2000).

RESULTADOS Y DISCUSIÓN

Como se observa en la figura uno, en el carril dos (T. rangeli aislado de perro) no hubo amplificación, en el carril tres (T. rangeli aislado deTriatomino) si existe amplificación del producto, en los carriles 4, 5 y 6 que contenían agua como control negativo, no se observo amplificación.

Detección del producto en la amplificación LAMP

En la reacción de amplificación LAMP, además de la síntesis abundante del DNA blanco (>10 ug/25uL en una hora), se producen en una correlación directa, altas concentraciones del ión pirofosfato. Al reaccionar con los cationes divalentes de magnesio presentes en la mezcla de reacción, se forma un precipitado de la sal de pirofosfato de magnesio detectado a simple vista en el tubo de la reacción (Mori, 2001) (Figura 4). La formación del precipitado es directamente proporcional a la síntesis de DNA durante la amplificación y permite el seguimiento en tiempo real de la reacción LAMP a través de un turbidómetro. La turbidez durante la síntesis de DNA es un fenómeno exclusivo de la reacción LAMP atribuido a su alto rendimiento, esta característica brinda una alternativa para la detección a las PAAN en tiempo real, la cual utiliza equipos de menor costo que el Real Time-PCR (RT-PCR) (Naga-mine y col., 2002).

Revelado de la amplificación LAMP mediante electroforesis en muestras diluidas para Tripanosoma cruzy

En esta reaccion se ha trabajado con Azul de Hidroxinalftol a una concentracion final de 120 uM. Asimismo, en los carriles 2, 3 se observa amplificacion positiva. La muestra del triatomino amplifica, la muestra de sangre de ra-bipelao no amplifica, es probable que exista inhibicion por la hemoglobima de la sangre adherida en el papel FTA. El control Negativo del protocolo extraccion TE, amplificó por lo que se dede repetir nuevamente esta reaccion a nuevas condiciones de extraccion. (ver Foto 4)

Los resultados de la coloracion del Azul de Hidroxinalftol a una concentracion final de 120 uM, no muestran ser muy diferenciables por lo que se recomienda trabajar a concentraciones mayores.

Mediante el desarrollo de esta novedosa técnica realizada, se ha logrado aplicar el diagnostico molecular de enfermedades endémicas causadas por varios patógenos, nosotros realizamos la técnica LAMP para detectar Trypa-nosma rangeli y Trypanosma cruzi en varias muestras biológicas.

La técnica LAMP, resulto ser una nueva herramienta aplicable al fácil diagnostico de varias enfermedades en Latinoamérica, muestran una alta especificidad y sensibilidad porque se utilizaron cuatro cebadores y dos aceleradores que reconocen el sitio blanco especifico del DNA.

La estandarización de todo método es un hecho sin precedentes y fundamental para que cada país pueda implementarlo, el curso ha sido una magnífica oportunidad para los países Latinoamericanos para poder acercarnos a las nuevas herramientas diagnosticas que se han desarrollado. Por todo esto enaltecemos y felicitamos a todo el grupo organizador y la excelente ponencia de los Profesores Invitados, asimismo a los diferentes invitados especiales de los pueblos de Latinoamérica, Se han creado nuevos lazos de integración de conocimientos y el enfoque hacia la lucha por la salud pública.

AGRADECIMIENTOS

El trabajo experimental fue Financiado por: United Nations University. BIOLAC Biotechnology Programme for Latin America and the Caribbean Programa de Biotecnología para América Latina y el Caribe.

REFERENCIAS

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