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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto antimicrobiano del extracto crudo oleoso de Rosmarinus Officinalis sobre cepa de Escherichia coli]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The objective of the research work was to evaluate in vitro the antimicrobial efficacy of the crude oil extract of rosemary (Rosmarinus officinalis) on Escherichia coli. Concentrations were evaluated at 20%, 40%, 60 and 80% in dilution in 96.8% ethanol. The MIC was determined by the broth microdilution method, the bacterial inoculum of the strain ATCC 25922 was activated in the differential agar for MacConkey Enterobacteria and it was standardized to 0.5 of the MacFarland scale in spectrophotometer, having as a result that the 60% tube and 80% oil extract of rosemary did not present turbidity, which when planted on Mueller-Hinton agar determined the MBC in which no colony growth was observed. The measurement of the inhibition rings formed from the OXOID disks impregnated with the concentrations of the rosemary oil extract plus the 70% ethanol solvent was carried out and it was concluded that the 60% and 80% oil extract had the highest antibacterial effect when forming halos of 9.10 mm and 10.90 mm respectively.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align=right><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Informaci&oacute;n T&eacute;cnica</b></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>&nbsp;</b></font></p>     <p align=center>&nbsp;</p>     <p align=center><font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Efecto antimicrobiano del extracto crudo oleoso de <i>Rosmarinus Officinalis</i> sobre cepa de <i>Escherichia coli</i></b></font></p>     <p align=center>&nbsp;</p>     <p align=center><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Effect antimicrobial of extract of <i>Rosmarinus officinalis</i> on strain of <i>Escherichia coli</i></b></font></p>     <p align=center>&nbsp;</p>     <p align=center>&nbsp;</p>     <p align=center><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Montero-Recalde Mayra Andrea*, Martinez-Jimenéz Jorge Aníbal, Avilés-Esquivel Diana Fernanda, </b></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Valle-Velástegui Edgar Luciano, Pazmiño-Miranda</b> <b>Nelly Del Pilar</b></font></p>      <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Universidad T&eacute;cnica De Ambato.</font> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Facultad De Ciencias Agropecuarias.</font> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Cant&oacute;n Cevallos-Tungurahua-Ecuador.</font> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Casilla postal: 18-01-334.</font> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Telf: (593) 032746151 &ndash; 032746171.</font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a   href="mailto:jamj_99@yahoo.es">jamj_99@yahoo.es</a></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">, </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a   href="mailto:df.aviles@uta.edu.ec">df.aviles@uta.edu.ec</a></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">, </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a   href="mailto:df.aviles@uta.edu.ec"></a></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a   href="mailto:el.valle@uta.edu.ec">el.valle@uta.edu.ec</a></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">, </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a   href="mailto:df.aviles@uta.edu.ec"></a></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a   href="mailto:nd.pazmino@uta.edu.ec">nd.pazmino@uta.edu.ec</a></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>&nbsp;</b></font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>*Direcci&oacute;n de contacto</b>: </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Mayra Andrea Montero-Recalde </b></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Universidad T&eacute;cnica De Ambato.</font> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Facultad De Ciencias Agropecuarias.</font> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Cant&oacute;n Cevallos-Tungurahua-Ecuador.</font> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Casilla postal: 18-01-334.</font> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Telf: (593) 032746151 &ndash; 032746171.</font> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>E-mail: </b><a href="mailto:ma.montero@uta.edu.ec">ma.montero@uta.edu.ec</a></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">, </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a href="mailto:mayrismontero@yahoo.es">mayrismontero@yahoo.es</a></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Historial del art&iacute;culo.&nbsp;</b></font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Recibido marzo, 2017.</font>    <br> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Devuelto agosto 2017</font>    <br>   <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Aceptado septiembre, 2017.</font>    <br> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Disponible en l&iacute;nea, noviembre 2017.</font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center">&nbsp;</p> <hr noshade>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El trabajo de   investigaci&oacute;n tuvo como objetivo evaluar in vitro la eficacia antimicrobiana   del extracto oleoso crudo de romero (<i>Rosmarinus officinalis </i>L.) sobre <i>Escherichia     coli. </i>Se evaluaron concentraciones al 20%, 40%, 60 y 80% en diluci&oacute;n en   etanol al 70%. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se determin&oacute; la CIM   mediante el m&eacute;todo de microdiluci&oacute;n en caldo, el in&oacute;culo bacteriano de la   cepa ATCC 25922 se activ&oacute; en el agar diferencial para Enterobacterias   MacConkey y se la estandariz&oacute; al 0.5 de la escala de MacFarland en   espectrofot&oacute;metro, teniendo como resultado que el tubo al 60% y 80% de   extracto oleoso de romero no presentaron turbidez, los cuales al ser   sembrados en agar Mueller-Hinton determin&oacute; la CMB en la que no se observ&oacute;   crecimiento de colonias. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se realiz&oacute; la medici&oacute;n de los   halos de inhibici&oacute;n formados a partir de los discos OXOID impregnados con las   concentraciones del extracto oleoso de romero m&aacute;s etanol y se concluye que el   extracto oleoso al 60% y 80% presentaron el mayor efecto antibacteriano al   formar halos de 9.10 mm y 10.90 mm respectivamente</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Palabras clave:</b> <i>Escherichia coli,</i> antibiograma, MacFarland, arrastre de vapor, discos oxoid, destilaci&oacute;n.</font></p> <hr noshade>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Abstract</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">The objective of the   research work was to evaluate in vitro the antimicrobial efficacy of the   crude oil extract of rosemary (Rosmarinus officinalis) on Escherichia coli.   Concentrations were evaluated at 20%, 40%, 60 and 80% in dilution in 96.8%   ethanol. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">The MIC was determined   by the broth microdilution method, the bacterial inoculum of the strain ATCC   25922 was activated in the differential agar for MacConkey Enterobacteria and   it was standardized to 0.5 of the MacFarland scale in spectrophotometer,   having as a result that the 60% tube and 80% oil extract of rosemary did not   present turbidity, which when planted on Mueller-Hinton agar determined the MBC   in which no colony growth was observed. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">The measurement of the   inhibition rings formed from the OXOID disks impregnated with the   concentrations of the rosemary oil extract plus the 70% ethanol solvent was   carried out and it was concluded that the 60% and 80% oil extract had the   highest antibacterial effect when forming halos of 9.10 mm and 10.90 mm   respectively.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Key words:</b> <i>Escherichia coli, </i>antibiogram, MacFarland, steam trawl, oxoid disks, distillation.</font></p> <hr noshade>     <p align=justify>&nbsp;</p>     <p align=justify>&nbsp;</p>     <p align=justify><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Introducción</b></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>&nbsp;</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El Estado prevendrá y   controlará la introducción y ocurrencia de enfermedades de animales y vegetales,   asimismo promoverá prácticas y tecnologías de producción, industrialización,   conservación y comercialización que permitan alcanzar y afianzar la inocuidad   de los productos. Para tal efecto, el Estado mantendrá campañas de erradicación   de plagas y enfermedades en animales y cultivos, fomentando el uso de productos   veterinarios y fitosanitarios amigables con el medio ambiente. Los animales que   se destinen a la alimentación humana serán reproducidos, alimentados, criados,   transportados y faenados en condiciones que preserven su bienestar y la sanidad del alimento (Asamblea Nacional, 2010).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Por esta razón, el uso de   fitobióticos, ha despertado el interés para evaluar las propiedades de los   extractos de plantas y remplazar el uso de antibióticos, ya que estos crean   resistencia bacteriana   (Iyobe 1997).   Dados los innumerables usos en el ámbito fitoterapéutico, el romero (<i>Rosmarinus     officinalis L.</i>) perteneciente a la familia Lamiaceae, es una especie   originaria de la región mediterránea, rica fuente de metabolitos activos, muy   usada en la medicina tradicional por sus efectos digestivos, antiespasmódicos y   carminativos (Castaño <i>et al.,</i> 2010). La propiedades antimicrobianas del   romero (<i>R. officinalis </i>L.) han presentado interés en el campo   alimentario y farmacéutico (Po-Jung <i>et al</i>. 2007), utilizado por sus propiedades como un antimicrobiano natural, a   partir de la extracción de sus hojas Mounchid <i>et al</i>. 2005, no obstante el mayor espectro de   acción lo presenta el aceite esencial, evidenciándose por los valores bajos de Concentración mínima inhibitoria (CIM) que presenta sobre <i>Escherichia coli</i> y otras de interés alimentario (Castaño <i>et al.</i> 2010).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Su actividad biocida se define como la capacidad que posee un compuesto natural para inhibir el crecimiento de microorganismos, así se encuentran plantas como el romero (<i>R. officinalis </i>L:) con diferentes bondades y varios efectos como antiinflamatorios, astringentes, antiespasmódicos además del efecto bactericida. El romero contiene más de 40 principios antibacterianos y más de 20 antivíricos, en su composición se encuentran, terpenoides, flavonoides, ácidos fenólicos, pequeñas cantidades de alcaloide rosmaricina y un 2% de aceite esencial (Estrada-Orozco, 2010).</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Con estos antecedentes, este trabajo consiguió determinar la actividad antibacteriana del extracto oleoso de <i>R. officinalis </i>L. sobre<i> Escherichia coli</i>, mediante el uso del extracto crudo oleoso de romero ecuatoriano, aplicando la técnica microbiológica de difusión en disco, para su posible aplicación en animales, ya sea para uso como fármaco o para formulación de dietas balanceadas según los resultados de este estudio.</font></p>      <p align="justify">&nbsp;</p>      <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Materiales y métodos</b></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>&nbsp;</b></font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los parámetros de evaluación considerados fueron: CIM, CMB y sensibilidad antimicrobiana mediante la medición de los halos de sensibilidad formados por las concentraciones al 20%, 40%, 60% y 80% del aceite crudo oleoso de romero.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>Obtención de material biológico</i>. La cepa utilizada para el ensayo fue: <i>Escherichia coli</i> ATCC 25922. (<a href="#f1">Figura 1</a>)</font></p>     <p align="center"><a name="f1"></a><img src="/img/revistas/jsab/v5n2/a12_figura_01.jpg" width="304" height="318"></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>Obtención del extracto de romero</i>. Para la obtención del extracto de romero, se tomó 2 kg de ramas del arbusto de romero antes de la floración utilizando las hojas más jóvenes, a las cuales se las lavó con agua bidestilada y se las dejó secar por 24 h bajo sombra, se procesó con el equipo tipo Clevenger, obteniéndose el extracto mediante el proceso de destilación por arrastre de vapor, esta técnica separa sustancias ligeramente volátiles e insolubles en agua, de otros productos no volátiles mezclados con ellos (Domínguez 2009, <a href="#f2">Figura 2</a>), posteriormente se sometió a un proceso de decantación para separar el extracto acuoso del oleoso del romero, con el extracto oleoso al 100%, a partir de este se preparó las 4 concentraciones porcentuales, así: al 20% 4 mL de etanol + 1 mL del extracto oleoso de romero, 40% 3 mL de etanol + 2mL del extracto oleoso de romero, 60% 2 mL de etanol + 3 mL del extracto oleoso de romero y finalmente 80% 1 mL de etanol + 4 mL del extracto oleoso de romero.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="f2"></a><img src="/img/revistas/jsab/v5n2/a12_figura_02.jpg" width="381" height="316"></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>Concentración Mínima Inhibitoria (CIM) del extracto crudo oleoso de Rosmarinus officinalis</i>. Para la determinación de la CIM, se realizó la preparación del inóculo como lo recomienda el National Committee for Clinical Laboratory Standards (NCCLS 2012) para lo cual se tomó con un asa bacteriológica 5 UFC bien aisladas y del mismo tipo morfológico del medio cultivado y se inoculó en 5 mL de caldo cerebro-corazón, llevando a incubación a 37 °C por 2 h, hasta obtener una turbidez estandarizada al tubo 0.5 de escala de McFarland para lo cual se observó en un fondo blanco con líneas negras como contraste, teniendo el estándar una concentración establecida de 1.5 x 10 <sup>8 </sup>de UFC.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La técnica se aplicó en   base a el National Committee for Clinical Laboratory Standards, tomando a   partir del inóculo estandarizado 4 mL para la determinación de la CIM especificado en la <a href="#t1">tabla 1</a>.</font></p>     <p align="center"><a name="t1"></a><img src="/img/revistas/jsab/v5n2/a12_tabla_01.gif" width="439" height="195"></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los tubos   inoculados se llevaron a incubación a una temperatura de 37 ºC por 24 h y   posterior a este tiempo, se observó la turbidez a las concentraciones   analizadas y el tubo con menor turbidez se lo determinó como la CIM, siendo el   tubo número 4 con extracto al 80% como la concentración mínima que impide el crecimiento de microorganismos. NCCLS 2011, NCCLS 2012.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>Determinación de la   Concentración Mínima Bactericida (CMB)</i>. Para establecer la CMB, se eligió   los tubos que presentaron menor turbidez en la determinación de la CIM y se   sembró en agar MacConkey incubándose a 37 ºC por 24 h. NCCLS 2012, NCCLS 2011   comprobando el cero crecimiento de UFC en placa tanto al 60% y 80% del extracto crudo oleoso de romero. <a href="#f3">Figura 3</a>.</font></p>     <p align="center"><a name="f3"></a><img src="/img/revistas/jsab/v5n2/a12_figura_03.jpg" width="386" height="330"></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>Sensibilidad antibacteriana</i>. Se tomó con un hisopo estéril el inóculo preparado y estandarizado con el tubo número 5 de la escala McFarland, y al retirarlo se tuvo precaución de escurrir el hisopo sobre las paredes del tubo retirando el exceso de líquido.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se preparó el inóculo de la siguiente manera: se tomó con aza bacteriológica cinco colonias de la cepa de<i> Escherichia coli</i> cultivada previamente por 24 h en agar MacConkey <a href="#f4">Figura 4</a>, se inocularon en 5 mL de caldo Cerebro-Corazón he incubaron a 37 °C durante 3 h hasta que se desarrolló turbidez semejante al tubo N° 0.5 de la escala de MacFarland a una concentración de 1x 10<sup>-8</sup> UFC. Posteriormente se procedió a cultivar con ayuda de un hisopo estéril por estriado múltiple en agar Mueller Hinton, dejando reposar por 10 min antes de colocar los discos de sensibilidad OXOID impregnados con las dosis del extracto crudo oleoso de romero y etanol al 70% como testigo y se los dejó secar 5 min antes de colocar los discos. Se ubicaron los discos impregnados con las concentraciones del aceite de romero y se las ubicó con una pinza anatómica estéril sobre el Agar Mueller Hinton y se los presionó suavemente para permitir su adherencia al agar de manera apropiada en la placa a 15 mm del borde de la misma, se utilizaron cajas Petri de 90 mm y se ubicaron 4 discos impregnados del extracto crudo oleoso de romero en cada placa, con 4 repeticiones por placa por cada una de las concentraciones al 20%, 40%, 60% y 80% <a href="#f5">Figura 5</a>, distribuidos de forma que no se produjo superposición de los halos de inhibición ubicando los discos en las placas e incubando a 37 °C en grupos no mayores a diez placas durante 24 h completas y de manera invertida <a href="#f6">Figura 6</a>. Posteriormente se procedió a realizar la lectura de los discos y se lo hizo a través de la medición de los halos de inhibición con una regleta de medición en milímetros. NCCLS 2011, NCCLS 2012.</font></p>     <p align="center"><a name="f4"></a><img src="/img/revistas/jsab/v5n2/a12_figura_04.jpg" width="313" height="298"></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><a name="f5"></a><img src="/img/revistas/jsab/v5n2/a12_figura_05.jpg" width="380" height="297"></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><a name="f6"></a><img src="/img/revistas/jsab/v5n2/a12_figura_06.jpg" width="279" height="280"></p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Resultados</b></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>&nbsp;</b></font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El comportamiento de la cepa <i>Escherichia coli</i> ATCC 25922 ™* frente al incremento en las concentraciones de extracto crudo oleosos de romero, presenta actividad en la turbidez de cada una de las muestras realizadas (<a href="#t2">Tabla 2</a>), exponiendo así, que desde el 1% en adelante no presenta turbidez y por tanto no existe crecimiento bacteriano.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="t2"></a><img src="/img/revistas/jsab/v5n2/a12_tabla_02.gif" width="786" height="173"></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Con respecto a la CBM no   se apreció crecimiento de colonias en agar Mueller Hinton (<a href="#t3">tabla 3</a>), por lo   tanto las concentraciones de aceite de romero al 60% y 80% no permitieron el desarrollo bacteriano de la cepa de <i>Escherichia coli</i> ATCC 25922 ™*</font></p>     <p align="center"><a name="t3"></a><img src="/img/revistas/jsab/v5n2/a12_tabla_03.gif" width="801" height="193"></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Con respecto a la CBM no   se apreció crecimiento de colonias en agar Mueller Hinton (<a href="#t4">tabla 4</a>), por lo   tanto las concentraciones de aceite de romero al 60% y 80% no permitieron el desarrollo bacteriano de la cepa de <i>Escherichia coli</i> ATCC 25922 ™*</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="t4"></a><img src="/img/revistas/jsab/v5n2/a12_tabla_04.gif" width="753" height="94"></p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Discusión</b></font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El extracto de romero cuenta de manera clara con compuestos activos de efectos antimicrobianos sobre bacterias de contaminación alimentaria, además se los puede utilizar como alternativa natural de tipo conservante evitando así el riesgo toxicológico por el uso de conservantes sintéticos (Castaño <i>et al.</i> 2010).</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El extracto de romero utilizado para el desarrollo de esta investigación, fue de tipo oleoso y mostró resultados positivos al inhibir el crecimiento de <i>Escherichia coli </i>ATCC 25922 in vitro, a una concentración del 80%, formando halos de inhibición bacteriano de 10.90 mm, al igual que (Solano-Solano <i>et al</i>. 2016) concluye en su tesis de pregrado que el extracto oleoso determinó halos de inhibición de 11.93 mm sobre la cepa certificada de <i>Streptococcus mutans</i>. Lanas-Terán &amp; Marín-Vega 2016 en su investigación manifiesta que el extracto acuoso de romero aplicado al 100% en una cepa de <i>S. mutans</i> no mostró un halo mayor a 6.15mm, al contrario el autor refiere que el extracto de romero más extracto de salvia mostró un halo de inhibición de 12.60 mm; mientras que el resultado de ésta investigación que se desarrolló a partir del extracto de romero sin combinación con otra materia vegetal, aplicado en la cepa de <i>Escherichia coli </i>ATCC 25922, si mostró actividad antimicrobiana al 80% de concentración, determinándose halos de inhibición de 10.90 mm a las 24 h de incubación a 37 °C.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La dimensión de los halos de inhibición con la concentración al 80% de extracto de romero fue de (10.90 mm), resultados similares los evidencia Solano-Solano et al. (2016) indicando que el extracto oleoso de romero produjo una media de 11.93 mm de halo de inhibición (p&lt; 0.001), diferencia significativa al grupo control, además mostrando similitud con el efecto de la clorhexidina.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los extractos acuosos de Salvia con Romero al 100% de concentración sobre el <i>S.</i> <i>mutans</i>, mostraron un halo de inhibición de 12.60 mm a las 24 h y de 15.40 mm a las 48 h, mientras que la acción bactericida del extracto acuoso de Salvia (<i>Salvia Officinalis</i>) al 100%, sobre el <i>S. mutans</i>, mostró un halo de inhibición de 12.45mm a las 24 h y de 15.35 mm a las 48 h Lanas-Terán &amp; Marín-Vega 2016. El extracto de romero (<i>R. officinalis</i>) utilizado en la presente investigación a la concentración de 60% mostró resultados similares con halos de inhibición de 9.10 mm a las 24 h de incubación, mientras que a la concentración de 80% los halos de inhibición fueron de 10.90 mm a las 24 h de incubación, siendo esta la concentración del extracto que no permitió que la bacteria se desarrolle.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El extracto oleoso de <i>Rosmarinus officinalis</i> mantiene una relación directa entre la concentración de extracto y su efecto antibacteriano.</font></p>      <p align="justify">&nbsp;</p>      <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Conflictos de intereses</b></font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La investigación realizada  no presenta conflictos de interés. </font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">&nbsp;</p>      <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Agradecimientos</b></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>&nbsp;</b></font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los autores agradecen a la Universidad Técnica de Ambato Facultad de Ciencias Agropecuarias, por el apoyo técnico, científico y logístico realizado a la presente investigación.</font></p>      <p align="justify">&nbsp;</p>      <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Literatura citada</b></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Asamblea Nacional. Ley Organica del Regimen de la Soberania Alimentaria. Fernando Cordero Cueva, Francisco Vergara; 2010. p. 13.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=916924&pid=S2308-3859201700020001200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Botana-López LM, Landoni MF, Martín-Jimé nez T. Farmacología y Terapéutica Veterinaria (1st ed.). Madrid: Mcgraw Hill Inter americana; 2002. p. 713.</font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Castaño HI, Ciro G, Zapata JE, Jimènez SL. Actividad bactericida del extracto etanolico y del aceite esencial de hojas de <i>Ros marinus officinalis</i> L. sobre algunas bacterias de interes alimentario. Vitae 2010; 17(2):149-54.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=916926&pid=S2308-3859201700020001200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Dominguez X. Destilacion por arrastre de vapor, caracteristicas, ventajas y aplicaciones. In Química orgánica. 2009.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Estrada-Orozco SP. Determinación de la actividad antibacteriana in vitro de los extractos romero (<i>Rosmarinus officinalis</i>) y tomillo (<i>Thymus vulgaris</i>). [Tesis de Licenciatura], Escuela Superior Politécnica de Chimborazo. Riobamba, Ecuador; 2010. p.86.</font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Iyobe S. Appearance of extended spectrum beta Lactamases. J Nipón Riwsho 1997;55(5): 1219-24.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=916929&pid=S2308-3859201700020001200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Lanas-Terán GA, Marín-Vega GX. Efectividad del extracto acuoso de salvia, romero y de salvia-romero al 100% como bactericida sobre el <i>Streptococcus mutans</i>. Estudio microbiológico <i>in vitro</i>. [tesis licenciatura]. Universidad Central del Ecuador; 2016. p. 76.</font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Mounchid K, Bourjilat F, Dersi N, Aboussaouira T, Rachidai A, Tantaoui-Elaraki A et al. The susceptibility of <i>Escherichia coli</i> strains to essential oils of <i>Rormarinus officinal</i> and <i>Eucalyptus globulus</i>. Afr J Biotechnol. 2005;4(10):1175-6.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=916931&pid=S2308-3859201700020001200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">National Committee for Clinical Laboratory Standards. Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing; Twenty-First Informational Supplement. 2011; 31(1):1-172.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=916932&pid=S2308-3859201700020001200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">National Committee for Clinical Laboratory Standards. Performance standards for antimicrobial disk susceptibility tests, approved standard. 11th Edition. 2012; 32(1): 1 -32.</font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Po-Jung T, Tzung-Hsun T, Su-Chen H. In vitro inhibitory effects of rosemary extracts on rowth and glucosyltransferase activity of <i>Streptococcus sobrinus</i>. Food Chem. 2007; 105(1): 311-6.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=916934&pid=S2308-3859201700020001200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Solano-Solano XK, Tamara Jacqueline Moya-Silva TJ, María Isabel Zambrano-Gutiérrez MI. Inhibición del <i>Streptococcus mutans</i>, mediante el uso de extracto acuoso y oleoso de <i>Rosmarinus officinalis</i> “romero”. Odontología. 2016;19(2):29-34.</font></p>      <p align=center><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><i>____________________</i></b></font></p>      ]]></body><back>
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