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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Respuesta de Glycine max a Azospirillum lipoferum y Rhizobium etli a dosis 50 % de fertilizante nitrogenado]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad Michoacana de San Nicolás de Hidalgo Instituto de Investigaciones Químico Biológicas Laboratorio de Microbiología Ambiental]]></institution>
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<institution><![CDATA[,Universidad Autónoma Agraria Antonio Narro Departamento de Parasitología ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The production of Glycine max (soybean) demands nitrogenous fertilizer (NIFE), as a NH4NO3 (ammonium nitrate) to supply its N demand, which when is applied in excess causes lost soil`s productivity. An alternative for this problem is to reduce and to optimize NIFE, with inoculants based in genus and species of plant growth promoting bacteria (PGPB). The aim of this research was to analyze G. max response to Azospirillum lipoferum and Rhizobium etli at 50% dose of NIFE. In that sense experimental was conducting by 5 treatments with NIFE at 100% and 50% doses for G. max inoculated with PGPB, response was based on its phenology: plant height (PH) and root length (RL) and its biomass: shoot fresh weight (SFW), root fresh weight (RFW), shoot dry weight (SDW), root dry weight (RDW). Experimental data were analyzed by ANOVA and Tukey HSD p<0.05%. Results indicated a positive respond of G. max with A. lipoferum and R. etli at seedling level was registered 0.90 g of SDW, this numerical value was statistically different than 0.16 g of SDW of G. max not inoculating, fed with mineral solution with 100% of NIFE dose, used as relative control (RC). At level of flowering G. max responded to A. lipoferum and R. etli registered 3.17 g of RFW this numerical value was statistically different compared to 1.79 g of RFW of G. max or RC. This data suggests that the positive respond of G. max was due to both PGPB able to transform radical exudates in phytohormones to improve radical absorption of N and optimize NIFE reduced at 50% dose, showing health growing and at the same preventing soil`s lost productivity.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align=right><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Nota de Investigaci&oacute;n</b></font></p>     <p align=right><b><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">&nbsp;</font></b></p>     <p align=center><b><font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Respuesta de <i>Glycine max</i> a <i>Azospirillum lipoferum </i>y<i> Rhizobium etli</i> a dosis 50 % de fertilizante nitrogenado</font></b></p>     <p align=center>&nbsp;</p>     <p align=center><b><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Response of <i>Glycine max</i> to <i>Azospirillum lipoferum</i> y <i>Rhizobium etli</i> at 50% dose of nitrogen fertilizer</font></b></p>     <p align=center>&nbsp;</p>     <p align=center>&nbsp;</p>     <p align=center><b><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Santoyo-Pizano Gustavo<sup>1</sup>, Ignacio-Cruz Juan Luis<sup>1</sup>, Vargas-Hernández Martha Elizabeth<sup>1</sup>, </font></b> <b><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Gallegos-Morales Gabriel<sup>2</sup>, Sánchez-Yáñez Juan Manuel<sup>1</sup>*</font></b></p>      <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><sup>1</sup></b>Universidad Michoacana de San Nicol&aacute;s de Hidalgo, Francisco J. Mujica   S/N, Col. Felicitas del Rio C.P. 58000, Morelia, Mich., M&eacute;xico. Laboratorio   de Microbiolog&iacute;a Ambiental, Instituto de Investigaciones Qu&iacute;mico Biol&oacute;gicas,   Ed-B3 C.U.</font>    <br>   <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><sup>2</sup></b>Universidad   Aut&oacute;noma Agraria Antonio Narro. Departamento de Parasitolog&iacute;a. Calzada   Antonio Narro N&uacute;m. 1923. Buenavista, Saltillo, Coahuila de Zaragoza, M&eacute;xico.   C. P. 25315. Tel: (844) 411-03-26.</font> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">E-mail <a href="mailto:gabgalmor@yahoo.com.mx">gabgalmor@yahoo.com.mx</a></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>*Direcci&oacute;n de contacto</b>:</font> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Universidad Michoacana de San Nicol&aacute;s de Hidalgo,   Francisco J. Mujica S/N, Col. Felicitas del Rio C.P. 58000, Morelia, Mich.,   M&eacute;xico. Laboratorio de Microbiolog&iacute;a Ambiental, Instituto de Investigaciones Qu&iacute;mico Biol&oacute;gicas, Ed-B3 C.U.</font> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Tel: (+52) (443) 322 3500</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Juan Manuel S&aacute;nchez-Y&aacute;&ntilde;ez<sup>1</sup></b></font> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">E-mail address&nbsp;: <a href="mailto:syanez@umich.mx">syanez@umich.mx</a> </font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Historial del art&iacute;culo.</b></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>&nbsp;</b></font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Recibido febrero,   2018.</font>    <br>   <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Devuelto junio 2018</font>    <br>   <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Aceptado junio, 2018.</font>    <br>   <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Disponible en l&iacute;nea,   agosto, 2018.</font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center">&nbsp;</p> <hr align="JUSTIFY" noshade>     <p align=center><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Resumen</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La producci&oacute;n de <i>Glycine   max</i> (soya) requiere fertilizante nitrogenado (FENI), como el NH<sub>4</sub>NO<sub>3</sub> (nitrato de amonio) para suplir la demanda de N (nitr&oacute;geno), el cual aplicado   en exceso provoca p&eacute;rdida de productividad del suelo. Una alternativa de   soluci&oacute;n para este problema es la reducci&oacute;n y optimizaci&oacute;n de la dosis de   FENI, mediante g&eacute;neros y especies de bacterias promotoras de crecimiento   vegetal (BAPOCEVE) como: <i>Azospirillum lipoferum</i> y <i>Rhizobium etli.</i> El objetivo de esta investigaci&oacute;n fue analizar la respuesta de <i>G. max</i> a la inoculaci&oacute;n con <i>A. lipoferum</i> y <i>R. etli</i> a la dosis 50% del   FENI. El ensayo se realiz&oacute; en un invernadero, bajo un dise&ntilde;o experimental con 5 tratamientos mediante las variables-respuesta: fenolog&iacute;a de la parte   a&eacute;rea y radical, altura de planta (AP), longitud de ra&iacute;z (LR) y de la   biomasa, peso fresco y seco a&eacute;reo/radical (PFA/PFR)/(PSA/PSR) a pl&aacute;ntula y   floraci&oacute;n. Los datos experimentales se analizaron   por ANOVA/Tukey HSD p&lt;0.05%. Los resultados mostraron a nivel de   pl&aacute;ntula una respuesta de <i>G. max </i>a la doble acci&oacute;n con <i>A. lipoferum </i>y<i> R. etli</i> al 50% del FENI con 0.90 g   de PSA, valor num&eacute;rico estad&iacute;sticamente diferente comparado con los 0.16 g de   PSA de <i>G. max </i>sin inocular   alimentada con una soluci&oacute;n mineral y el FENI al 100% o control relativo   (CR). A floraci&oacute;n <i>G. max </i>con ambos g&eacute;neros de BAPOCEVE se registr&oacute; 3.17 g   de PSR, valor num&eacute;rico estad&iacute;sticamente diferente a los 1.79 g de PSR de <i>G. max</i> usado como CR. Lo anterior sugiere   que <i>G. max</i> tratado con <i>A. lipoferum </i>y<i> R. etli </i>convirtieron   sus exudados radicales en fitohormonas, para mejorar la absorci&oacute;n radical del N y optimizar   el FENI a la dosis 50%, con un sano crecimiento y   evitar al mismo tiempo la p&eacute;rdida de productividad del suelo.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Palabras clave:</b> Suelo, FENI, <i>Glycine max, Azospirillum lipoferum, Rhizobium etli</i>, exudados radicales, fitohormonas. </font></p> <hr align="JUSTIFY" noshade>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Abstract</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">The   production of <i>Glycine max</i> (soybean) demands nitrogenous fertilizer   (NIFE), as a NH<sub>4</sub>NO<sub>3</sub> (ammonium nitrate) to supply its N   demand, which when is applied in excess causes lost soil`s productivity. An   alternative for this problem is to reduce and to optimize NIFE, with   inoculants based in genus and species of plant growth promoting bacteria   (PGPB). The aim of this research was to analyze <i>G. max </i>response to <i>Azospirillum     lipoferum</i> and <i>Rhizobium etli</i> at 50% dose of NIFE. In that sense   experimental was conducting by 5 treatments with NIFE at 100% and 50% doses   for <i>G. max</i> inoculated with PGPB, response was based on its phenology:   plant height (PH) and root length (RL) and its biomass: shoot fresh weight   (SFW), root fresh weight (RFW), shoot dry weight (SDW), root dry weight   (RDW). Experimental data were analyzed by ANOVA and Tukey HSD p&lt;0.05%.   Results indicated a positive respond of <i>G. max</i> with <i>A. lipoferum</i> and <i>R. etli</i> at seedling level was registered 0.90 g of SDW, this   numerical value was statistically different than 0.16 g of SDW of <i>G. max</i> not inoculating, fed with mineral solution with 100% of NIFE dose, used as   relative control (RC). At level of flowering <i>G. max</i> responded to<i> A.     lipoferum </i>and<i> R. etli</i>&nbsp; registered 3.17 g of RFW this numerical   value was statistically different compared to 1.79 g of RFW of <i>G. max</i> or RC. This data suggests that the positive respond of <i>G. max</i> was due   to both PGPB able to transform radical exudates in phytohormones to improve   radical absorption of N and optimize NIFE reduced at 50% dose, showing health   growing and at the same preventing soil`s lost productivity.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Key words:</b> Soil, NIFE, <i>Glycine max,</i> <i>Azospirillum   lipoferum,</i> <i>Rhizobium etli</i>, root exudates, phytohormones.</font></p> <hr align="JUSTIFY" noshade>     <p align=justify><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>&nbsp;</b><br clear=all> </font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>&nbsp;</b></font></p>      <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Introducción</b></font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La leguminosa <i>Glycine max</i> (soya), tiene un alto valor nutricional, en México la zona relacionada, su producción anual asciende a 400000 ton/ha (SIAP-SAGARPA 2016), generando una demanda de N (nitrógeno) como fertilizante nitrogenado (FENI), NH<sub>4</sub>NO<sub>3</sub> (nitrato de amonio), aplicado en exceso provoca la rápida degradación de la materia orgánica del suelo, con la consecuente disminución de la productividad (Isbell <i>et al</i>. 2013). En el suelo una alternativa de solución que evite la hiperfertilización nitrogenada, es la inoculación de <i>G. max</i> con géneros de bacterias o microorganismos promotores de crecimiento vegetal (BAPOCEVE) o MICROCEVE) (Armenta-Bojórquez <i>et al</i>. 2010): como el género fijador simbiótico de N<sub>2</sub>: <i>Bradyrhizobium japonicum</i> que en <i>G. max</i> permite un crecimiento sano a dosis regulada de FENI, no obstante, en función del origen de <i>B. japonicum</i> se inducen nódulos, que no son necesariamente eficaces para incorporar el N<sub>2</sub> como una fuente sustituta del FENI, para asegurar un sano crecimiento de <i>G. max</i>, en cuyo caso se recomienda inocular un <i>Rhizobium etli</i> del grupo conocido como de inoculación cruzada en las leguminosas, y que también puede ser benéfico para <i>G. max</i>, en combinación con un fijador libre de N<sub>2</sub> libre como: <i>Azospirillum lipoferum</i> (Loredo-Osti <i>et al</i>. 2004) u otra clase de MICROCEVE, como es el caso de géneros y especies de hongos micorrizicos </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">versículo arbusculares (HMVA) que favorezcan una mayor absorción del FENI, e incluso del fertilizante del fosforo (P) como PO<sub>4</sub><sup>-3 </sup>(FEPO) en especial cuando se reduce al 50%, puesto que los exudados radicales de <i>G. max</i> contienen suficientes fuentes de C (carbono) y N orgánico, que pueden ser transformados en sustancias promotoras de crecimiento vegetal (SUPOCEVE) o fitohormonas (Matiru &amp; Dakora 2004), compuestos que inducen una mayor absorción radical del N y con ello la optimización del FENI y/o FEPO reducido al 50%, sin afectar el sano crecimiento vegetal. Con base en lo anterior se han realizado investigaciones para mejorar la producción de <i>G. max</i> mediante el empleo de inoculantes a base de BAPOCEVE o MICROCEVE, bajo un esquema de agricultura sustentable, que explota el recurso suelo como el vegetal sin prejuicio de ambos o del ambiente (Armenta-Bojórquez <i>et al</i>. 2010). Como lo prueban las siguientes investigaciones: Uhrich &amp; Benintende 2005 analizaron la respuesta positiva de <i>G. max</i> a <i>B. japonicum</i> y <i>Azospirillum brasilense</i> a nivel de campo. Los resultados mostraron un incremento de un 29% en el peso seco radical (PSR), en comparación con <i>G. max</i> sin inocular con BAPOCEVE a la dosis de FENI al 100% o control relativo (CR). De la misma Hernández 2008 reporto la respuesta positiva de <i>G. max</i> a la inoculación con <i>Glomus hoi like</i> y <i>B. japonicum</i> a dosis reducida de FENI y FEPO. Los resultados mostraron que ambos microorganismos mejoraron absorción del N y P, con un rendimiento mayor al comparado con <i>G. max</i> sin inocular y con las dosis recomendada de N y P. Mientras que Benintende <i>et al</i>. 2010 reportaron la respuesta positiva de <i>G. max</i> a <i>B. japonicum</i> y <i>A. brasilense</i> a dosis regulada de FENI. Los resultados mostraron <i>G. max</i> con ambas BAPOCEVE incrementaron hasta un 30% de crecimiento vegetativo, en contraste con <i>G. max</i> sin inocular usado como CR a la dosis 100% del FENI. En tanto que Corbera-Gorotiza &amp; Nápoles-García 2013 reportaron la respuesta positiva de <i>G. max</i> tratado con <i>Bradyrhizobium elkanii</i> y un HMVA a dosis regulada del FENI y FEPO. Encontraron un incremento en el rendimiento de <i>G. max</i> inoculado con los MICROCEVE comparado con <i>G. max</i> alimentada exclusivamente con la dosis recomendada del FENI y FEPO. Sin embargo los HMVA tienen algunos inconvenientes para la inoculación de semillas de <i>G. max</i>, debido a que pierden rápidamente la viabilidad contra factores bióticos y abióticos. Por lo anterior podría ser más útil emplear géneros y especies de BAPOCEVE, con especial resistencia a factores ambientales que limitan la actividad positiva de otro de MICROCEVE como los HMVA, para la eficaz absorción y optimización radical del FENI en específico cuando se reduce al 50% de acuerdo con la literatura disponible (Uhrich &amp; Benintende 2005, Hernández 2008). Por lo que el objetivo de este trabajo fue analizar la respuesta de <i>Glycine max</i> a, <i>A. lipoferum,</i> <i>Azospirillum lipoferum</i> y <i>Rhizobium etli</i> a la dosis 50% de FENI.</font></p>      <p align="justify">&nbsp;</p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Materiales y métodos</b></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>&nbsp;</b></font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El experimento se realizó en el invernadero de 10 x 4 m<sup>2 </sup>del Laboratorio de Microbiología Ambiental del Instituto de Investigaciones Químico Biológicas de la UMSNH, Morelia, Mich, México. La temperatura promedio fue de 23.2 °C, luminosidad de 450 &#956;mol·m<sup>-2</sup>·s<sup>-1</sup>, humedad relativa de 67%, se regulo mediante un sistema automático de control ambos factores ambientales (Matallana &amp; Montero 2001). Para este ensayo se utilizó un suelo arcilloso de tipo Vertisol con un historial de 20 año en producción de trigo/garbanzo un pobre en materia orgánica y N mineral, que se solarizó para minimizar el problema de plagas y enfermedades, posteriormente se tamizó con una malla del No 20 y en el invernadero se usaron insecticidas a base de extracto vegetales de canela y ajo para el control fitosanitario (Duke 1990).</font></p>      <p align="center"><a name="f1"></a><img src="/img/revistas/jsars/v9n2/a05_figura_01.gif" width="278" height="371"></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Las semillas de <i>G. max</i> fueron donadas por la Secretaria y Agricultura y Recursos Hidráulicos (SIAP-SAGARPA 2016), estas semillas se desinfectaron con NaClO (Hipoclorito de sodio) al 3% (v/v) por 5 min y se enjuagaron 6 veces con agua estéril, después se desinfectaron con alcohol al 70% (v/v) por 5 min y se lavaron 5 veces con agua estéril (García-González <i>et al</i>. 2005). Posteriormente en bolsa de plástico de 250 g las semillas de <i>G. max</i> se inocularon con 2.0 mL de <i>A. lipoferum</i>, <i>R. etli </i>de manera individual y/o en mezcla, ambos casos se dejaron por 24 h. <i>A. lipoferum </i>se aisló de raíces de <i>Zea mays var mexicana </i>(teocintle) en agar NFM (nitrogen free medium) (Döbereiner &amp; Day 1974) mientras que <i>R. etli</i> se recuperó de nódulos de <i>Medicago</i> sp en agar manitol rojo congo (Peña-Cabriales &amp; Alexander 1981, Sánchez-Yáñez 2007). Ambos géneros de BAPOCEVE pertenecen a la colección del laboratorio de Microbiología Ambiental del IIQB-UMSNH, en Morelia, Mich, México. Para este ensayo se seleccionó un 1 kg de suelo degradado y compactado con un historial agrícola de 20 años de cultivo intensivo de gramíneas (maíz-trigo, maíz-cebada), de textura arcillosa con un bajo contenido de materia orgánica de 1.5% y pobre N-orgánico pobre con 39 kg/ha, con un pH 6.7 (ligeramente acido), ubicado a los 19° 39´27´´ de latitud norte y 101° 19´ 59´ de longitud oeste, con temperatura media anual de 17.3 °C y precipitación anual de 796.4 mm, en un terreno agrícola denominado “La Cajita” de la Tenencia Zapata del Municipio de Morelia, Mich., México, ubicado en el km 5 de la carretera Morelia-Pátzcuaro. Este kg de suelo se colocó en la parte superior del sistema hidropónico conocido como jarra de Leonard mostrado en la figura 1, ahí se sembraron 4 semillas de <i>G. max</i>, mientras que el agua, o la SOMI con el FENI reducido al 50%, que se colocó en la parte inferior, ambas partes se conectaron por una tira de algodón de 15.0 cm. La SOMI con el FENI  para alimentar <i>G. max</i> se preparó con la siguiente composición química (g/L): NH<sub>4</sub>NO<sub>3</sub> 12.0, KH<sub>2</sub>PO<sub>4</sub> 3.0, K<sub>2</sub>HPO<sub>4</sub> 3.5, MgSO<sub>4</sub> 1.5, CaCl<sub>2</sub> 0.1, FeSO<sub>4</sub> 0.5 mL/L, y un 1.0 ml/L de la solución de oligoelementos: (g/L), <a href="http://es.wikipedia.org/wiki/Hidr%C3%B3geno" title=Hidrógeno target="_blank">H</a><sub>3</sub><a href="http://es.wikipedia.org/wiki/Boro" title=Boro target="_blank">B</a><a href="http://es.wikipedia.org/wiki/Ox%C3%ADgeno" title=Oxígeno target="_blank">O</a><sub>3 </sub>2.86, ZnSO<sub>4 </sub>7H<sub>2</sub>O 0.22, MnCl<sub>2</sub> 7H<sub>2</sub>O 1.81, K<sub>2</sub>MnO<sub>4 </sub>0.09, a pH  ajustado a 7.0, en agua destilada, mientras que el NH<sub>4</sub>NO<sub>3</sub> o FENI se redujo al 50% equivalente a 6 g/L (García-González <i>et al</i>. 2005).</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En la     <a href="#t1">Tabla 1</a> se indica el diseño experimental con 5 tratamientos y 7 repeticiones para analizar la respuesta de <i>G. max</i> a la inoculación con <i>A. lipoferum </i>y<i> R. etli</i> a nivel de plántula y floración con la dosis del FENI reducido al 50%, mediante las variables-respuesta basados en la fenología: la altura de planta (AP), longitud de raíz (LR), y en la biomasa: el peso fresco aéreo (PFA) y radical (PFR), para el peso seco aéreo (PSA) y radical (PSR), <i>G. </i>max se secó en horno a 40 °C/48 h (Sánchez-Yáñez 2007). Los datos experimentales fueron sometidos al análisis de varianza ANOVA mediante la prueba comparativa de medias de Tukey HSD P&lt;0.05% (García-Villalpando <i>et al</i>. 2001).</font></p>      <p align="center"><a name="t1"></a><img src="/img/revistas/jsars/v9n2/a05_tabla_01.gif" width="701" height="198"></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Resultados</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En la <a href="#t2">Tabla 2</a>, se muestra la respuesta de <i>G. max</i> la doble inoculación con <i>A. lipoferum, R. etli </i>a dosis 50% a nivel de plántula, que alcanzó 38.7 cm de altura de planta (AP) y 42.2 cm de longitud radical (LR); ambos valores numéricos fueron estadísticamente diferentes comparados con los 30.1 cm de AP y los 15.7 cm de LR en <i>G. max </i>sin inocular alimentada con la dosis 100% del FENI, referido como CR. En relación a la biomasa de <i>G. max </i>inoculada con la mezcla de amabas BAPOCEVE registró 5.62 g de PFA y 1.96 g de PFR; estos valores numéricos tuvieron diferencia estadística respecto a los 1.26 g de PFA y 0.66 g de PFR en <i>G. max </i>usado como CR. En tanto que <i>G. max </i>con <i>A. lipoferum </i>y <i>R. etli </i>registro 1.80 g de PSA y 0.75 g de PSR ambos valores numéricos tuvieron con diferencia estadística comparado con los 0.63 g de PSA y 0.09g de PSR de <i>G. max</i> empleado como CR. </font></p>     <p align="center"><a name="t2"></a><img src="/img/revistas/jsars/v9n2/a05_tabla_02.gif" width="725" height="242"></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En la <a href="#t3">Tabla 3</a>, se muestra la respuesta de <i>G. max</i> a la inoculación con <i>A. lipoferum </i>y<i> R. etli </i>a la dosis 50% a floración, donde <i>G. max</i> alcanzó 44.7 cm de AP y 33.8 cm de LR, ambos valores numéricos tuvieron diferencia estadística comparado con los 39.3 cm de AP y 25.7 cm de LR de <i>G. max</i> sin inocular alimentada con la dosis 100% de FENI usado como CR</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="t3"></a><img src="/img/revistas/jsars/v9n2/a05_tabla_03.gif" width="717" height="246"></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En relación a la biomasa <i>G. max </i>inoculada con los dos géneros y especies de BAPOCEVE se registraron: 14.33 g de PFA y 12.49 g de PFR, ambos valores numéricos que tuvieron diferencia estadística comparados con los 9.54 g de PFA y 4.50 g PFR de <i>G. max </i>empleado como CR. En tanto que <i>G. max </i>inoculada con <i>A. lipoferum </i>y <i>R. etli </i>mientras que G. max con la doble inoculación con las BAPOCEVE registraron 3.90 g de PSA y 2.44 g de PSR ambos valores numéricos tuvieron diferencia estadística respecto a los 1.85 g de PSA y 1.04 en PSR de <i>G. max </i>referido como CR.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Discusión</b></font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los valores numéricos reportados en la <a href="#t2">Tabla 2</a> basados en los datos de la fenología y biomasa de <i>G. max </i>con <i>A. lipoferum </i>y/o <i>R. etli </i>a nivel plántula, sugieren que el incremento de la AP y LR<i>, </i>está asociado con el hecho de que los dos géneros y especies de BAPOCEVE empleados, tienen capacidad genética de convertir los exudados radicales de <i>G. max </i>como los ácidos orgánicos y aminoácidos del tipo del triptófano en SUPOCEVE o fitohormonas del tipo de la auxina, que mediante la inducción de la mitosis y cariocinesis del tejido radical, favorecen una acelerada y general proliferación de un elevado número de raíces laterales, para aumentar el área de exploración de esos pelos que mejoraron la mayor absorción de la raíz por el N, lo que consecuentemente optimizo el FENI reducido al 50% (Askary <i>et al. </i>2009, Benintende <i>et al</i>. 2010), en ese sentido se observó que el sistema radical de <i>G. max </i>fue más denso debido a la constante acción fitohormonal, derivada que tanto de <i>A. lipoferum</i>, como <i>R. etli </i>que poseen diferente capacidad genética en la conversión de los exudados de raíces, en una amplia variedad de fitohormonas, lo que  mantuvo el incremento gradual del peso fresco y seco de <i>G. max </i>con la doble inoculación con <i>A. lipoferum </i>y/o <i>R. etli</i>, que mostraron que este género bacteriano vive como endófito en las raíces de <i>G. max</i>, y que además también tienen la capacidad de convertir los metabolitos derivados de azucares de la fotosíntesis en SUPOCEVE, o fitohormonas del tipo auxina y giberelina, ambas mejoraron la absorción radical del N, y así,  lograr la máxima optimización del FENI reducido al 50% (Armenta-Bojórquez <i>et al. </i>2010). Lo que evita que el excedente de N, cause la perdida de la reserva de la materia orgánica y que en consecuencia se pierda la productividad del suelo (Alexander 1977, Isbell <i>et al</i>. 2013).</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Mientras que los resultados registrados en la <a href="#t3">Tabla 3</a> relacionados con fenología y biomasa de <i>G. max </i>tratada con ambos géneros de BAPOCEVE a floración, sugieren que <i>A. lipoferum </i>y <i>R. etli </i>mantuvieron e incrementaron la capacidad de transformar de manera continua y complementaria, que los compuestos orgánicos liberados en los exudados de la raíces de <i>G. max </i>transformaron en fitohormonas: auxina y citocinina indujeron la mayor elongación y formación de raíces laterales (Bécquer <i>et al. </i>2011), las que aumentaron la capacidad de absorber y optimizar el FENI reducido al 50%, puesto que el aspecto de las hojas y raíces de <i>G. max </i>no mostro ninguna deficiencia relacionada con la demanda de N (Loredo-Osti 2004, Uhrich &amp; Benintende 2005). Por lo anterior se concluye que <i>A. lipoferum </i>y/o <i>R. etli </i>géneros BAPOCEVE ejercieron un efecto positivo en el crecimiento de <i>G. max </i>mediante la optimización del FENI al 50%, debido a que ambas convierten los exudados radicales de <i>G. max </i>en SUPOCEVE: auxina, citocinina y giberelina para la maxima absorción radical del N del FENI a pesar de reducirlo al 50%. La mezcla de estos dos géneros y especies de BAPOCEVE son una opción para el cultivo de <i>G. max, </i>lo cual evita la hiperfertilización, sin riesgo de afectar en el sano crecimiento vegetal y si de prevenir deterioro del suelo.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Conflictos de intereses</b></font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los autores de este artículo, declaramos que no existe ningún conflicto de interés en la planificación, ejecución y redacción de la investigación realizada, como tampoco con aquellas personas e instituciones que la financiaron.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Agradecimientos</b></font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Al proyecto 2.7 (2018) apoyado por Coordinación de la Investigación Científica de la UMSNH, Morelia, Michoacán y BIONUTRA S.A. de C.V, Maravatío, Michoacán, México.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="3&ccedil;" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Literatura citada</b></font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Alexander M. Introduction to soil microbiology. 2<sup>ed</sup>, John Wiley and Sons Inc. New York; 1977. p. 100-50.</font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Armenta-Bojórquez AD, García-Gutiérrez C, Camacho-Báez JR, Apodaca-Sánchez MÁ, Gerardo-Montoya L, Nava-Pérez E. Biofertilizantes en el desarrollo agrícola de México. Ra Ximhai 2010; 6(1): 51-6.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=158402&pid=S2072-9294201800020000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Askary M, Mostajeran A, Amooaghaei R, Mostajeran M. Influence of the co-inoculation Azospirillum brasilense and Rhizobium meliloti plus 2, 4-D on grain yield and N, P, K content of Triticum aestivum (cv. Baccros and Mahdavi). Am Eurasian J Agric Environ Sci 2009; 5(3), 296-307.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=158403&pid=S2072-9294201800020000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Bécquer CJ, Salas B, Ávila U, Palmero LA, Nápoles JA, Ramos Y, et al. Efecto de la inoculación con rizobios procedentes de Alberta, Canadá, en sorgo (Sorghum bicolor L. Moench), en condiciones de campo. Pastos y Forrajes 2011; 34(3): 303-12.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=158404&pid=S2072-9294201800020000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Benintende S, Uhrich W, Herrera M, Gangge F, Sterren M, Benintende M. Comparación entre coinoculación con Bradyrhizobium japonicum y Azospirillum brasilense e inoculación simple con Bradyrhizobium japonicum en la nodulación, crecimiento y acumulación de N en el cultivo de soja. Agriscientia 2010; 27(2): 71-7.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=158405&pid=S2072-9294201800020000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Corbera-Gorotiza J, Nápoles-García MC. Efecto de la inoculación conjunta <i>Bradyrhizobium elkanii</i>-hongos MA y la aplicación de un bioestimulador del crecimiento vegetal en soya (<i>Glycine max</i> (L.). Merrill) cultivar INCASOY-27. CulTrop 2013; 34 (2):5-11.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=158406&pid=S2072-9294201800020000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Döbereiner J, Day DJ. Associative symbiosis in tropical grasses of microorganisms and dinitrogen fixing site. In Newton W, Nyam CJ. eds. Proceedings of the 1st. International Symposium on Nitrogen Fixation. Washington State University Press. Pullman, USA; 1974. p. 518-39.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Duke SO. Natural pesticides from plants. p. 517-523. En: Janick, J. &amp; JE. Simon (Eds.). Advances in new crops. Timber Press. Portland, Oregon; 1990. p. 829.</font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">García-González MM, Farías-Rodríguez R, Peña-Cabriales JJ, Sánchez-Yáñez JM. Inoculación del trigo var. Pavón con <i>Azospirillum</i> spp. y <i>Azotobacter beijerinckii</i>. Terra Latinoam 2005; 23(1): 65-72.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=158409&pid=S2072-9294201800020000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">García-Villalpando JA, Castillo-Morales A, Ramírez-Guzmán ME, Rendón-Sánchez G, Larqué-Saavedra MU. Comparación de los procedimientos de Tukey, Duncan, Dunnett, HSU y B	echhofer para selección de medias. Agrociencia 2001; 35(1): 79-86.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=158410&pid=S2072-9294201800020000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Hernández AF. La coinoculación <i>Glomus</i> <i>hoi</i> like-<i>Bradyrhizobium japonicum</i> en la producción de soya (<i>Glycine max</i>) variedad Verónica para semilla. CulTrop 2008; 29(4): 41-5.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=158411&pid=S2072-9294201800020000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Isbell F, Reich PB, Tilman D, Hobbie SE, Polasky S, Binder S. Nutrient enrichment, biodiversity loss, and consequent declines in ecosystem productivity. Proc Natl Acad Sci USA 2013; 110(29): 11911-6.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=158412&pid=S2072-9294201800020000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Loredo-Osti C, López-Reyes L, Espinosa-Victoria D. Bacterias promotoras del crecimiento vegetal asociadas con gramíneas: Una revisión. Terra Latinoam 2004; 22(2), 225-39.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=158413&pid=S2072-9294201800020000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Matallana A, Montero J. Invernaderos Diseño construcción y ambientación. Ed. Mundi-prensa. Madrid, España; 2001. p. 209.</font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Matiru VN, Dakora FD. Potential use of rhizobial bacteria as promoters of plant growth for increased yield in landraces of African cereal crops. Afr J Biotechnol 2004; 3(1): 1-7.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=158415&pid=S2072-9294201800020000500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Peña-Cabriales JJ, Alexander M. Reservas de carbón: sobrevivencia de <i>Rhizobium.</i> Rev Latinoam Microbiol 1981; 23: 50-4.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=158416&pid=S2072-9294201800020000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Sánchez-Yáñez JM. Breve tratado de microbiología agrícola teoría y práctica. Instituto de Investigaciones Químico Biológicas, Universidad Michoacana de San Nicolás de Hidalgo, COSUSTENTA, SA de CV, Centro de Investigación y Desarrollo del Estado de Michoacán, Morelia, Mich. México; 2007. p. 130-3.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Secretaria de Agricultura Ganadería Desarrollo Rural Pesca y Alimentación. SIAP-SAGARP. Gobierno de la Republica; 2016. Mexico.<a href="http://www.gob.mx" target="_blank">www.gob.mx</a>.</font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Uhrich W, Benintende S. Aplicación de <i>Azospirillum brasilense</i> en cultivo de soja en co-inoculación con <i>Bradyrhizobium japonicum</i>. Rev Cient Agropecu 2005; 9(1):71-5.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=158419&pid=S2072-9294201800020000500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align=center><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>______________</b></font></p>      ]]></body><back>
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