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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Existencia y supervivencia de esporas de variedades de Bacillus thuringiesis en granos de almacén]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Universidad Autónoma de Nuevo León Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia Microbiología y Micología Veterinaria]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Genus Bacillus thuringiensis (Bt) synthesized spores and crystals toxic to pest-insects in agriculture. Bt is comospolitan then possible to isolate some subspecies or varieties from warehouse. The aims of study were: i) to isolate Bt varieties from grain at werehouse ii) to evaluate Bt toxicity on Spodoptera frugiperda and Shitophilus zeamaisese iii) to analyze Bt spores persistence in Zea mays grains at werehouse compared to same Bt on grains exposed to sun radiation. Results showed that at werehouse were recovered more than one variety of Bt spores. According to each isolate Bt1 o Bt2 were toxic to S. frugiperda or S. zeamaisese. One those Bt belong to var morrisoni. At werehouse these spores on Z. mays grains surviving more time, while the same spores exposed to boicide sun radiation they died.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align=right><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>ART&Iacute;CULO ORIGINAL</b></font></p>      <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><sup>&nbsp;</sup></b></font></p>      <p align="center"><font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Existencia y supervivencia de esporas de variedades de <i>Bacillus thuringiesis</i> en granos de almacén</b></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align=center><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Presence survival spores of <i>Bacillus thuringiensis </i>varieties in grain warehouse</b></font></p>     <p align=center>&nbsp;</p>     <p align=center>&nbsp;</p>     <p align=center><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Sánchez-Yáñez Juan Manuel<sup>1</sup>*, García-Ortiz Vanessa Ruby<sup>1</sup>, Ulibarri Gérard<sup>2</sup>, </b></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Hernández-Escareño Jesús Jaime<sup>3</sup></b> </font></p>      <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><sup>1</sup>Microbiolog&iacute;a Ambiental. Ed B-3, Instituto de Investigaciones Qu&iacute;mico Biol&oacute;gicas, Universidad Michoacana de San   Nicol&aacute;s de Hidalgo, Francisco J. Mujica s/n. Col. Felicitas del Rio, CP 58000,   Morelia, Michoac&aacute;n, M&eacute;xico.</font>    <br>   <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><sup>2</sup>Department of Chemistry and Biochemistry. Laurentian   University 935 Ramsey Lake Rd. Sudbury, Ontario P3E2C6, Canad&aacute;.</font>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>   <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><sup>3</sup>Microbiolog&iacute;a y Micolog&iacute;a Veterinaria, Facultad de   Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad Aut&oacute;noma de Nuevo Le&oacute;n, Campus   de Ciencias Agropecuarias, Av Fco Villa S/N Col Ex &ndash;Hacienda, &ldquo;El Canada   Escobedo, NL, M&eacute;xico. </font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>*Direcci&oacute;n de contacto:</b> Microbiolog&iacute;a y Micolog&iacute;a Veterinaria, Facultad de   Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad Aut&oacute;noma de Nuevo Le&oacute;n, Campus   de Ciencias Agropecuarias, Av Fco Villa S/N Col Ex &ndash;Hacienda, &ldquo;El Canada&rdquo;, Escobedo, NL, M&eacute;xico. </font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">J&eacute;sus Jaime Hernandez-Escare&ntilde;o</font>    <br> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">E-mail address&nbsp;: <a href="mailto:jjescareno@hotmail.com">jjescareno@hotmail.com</a></font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Historial del art&iacute;culo.</b></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>&nbsp;</b></font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Recibido enero, 2016.</font>    <br> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Devuelto mayo 2016</font>    <br> <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Aceptado julio, 2016.</font>    <br>   <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Disponible en l&iacute;nea, agosto, 2016.</font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">&nbsp;</p> <hr noshade>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El g&eacute;nero de <i>Bacillus   thuringiensis (Bt)</i> sintetiza esporas y cristales t&oacute;xicos para insectos-plaga   agr&iacute;colas. La especie de <i>Bt </i>es cosmopolita, por lo que es posible   aislar subespecies de granos almacenados dado que las esporas persisten por m&aacute;s   tiempo ah&iacute; que en la intemperie. Los objetivos del trabajo fueron: i) aislar   subespecies de<i> Bt</i> de granos almacenados ii) evaluar la toxicidad de   esos <i>Bt</i> en<i> Spodoptera frugiperda y Shitophilus zeamaisese</i> iii)   analizar la persistencia de esas esporas en granos de<i> Zea mays</i> almacenados y expuestos al ambiente abierto. Los resultados indican que existen   esporas de subespecies de <i>Bt </i>en granos almacenados. De acuerdo con el   aislado <i>Bt1 o Bt2 </i>fueron t&oacute;xicos para <i>S. frugiperda y S. zeamaisese. </i>Se sugiere que una de esos <i>Bt</i> fue la var <i>morrisoni</i>. Esas   esporas en granos de<i> Z. mays</i> almacenado superviveron m&aacute;s   tiempo, que las expuestas a la radiaci&oacute;n solar, eliminadas por radiaci&oacute;n solar   biocida.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Palabras clave:</b> Esporas, subespecies, supervivencia, efecto solar, biocida.</font></p> <hr noshade>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Abstract</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Genus <i>Bacillus   thuringiensis</i> (<i>Bt</i>) synthesized spores and crystals toxic to   pest-insects in agriculture. <i>Bt</i> is comospolitan then possible to   isolate some subspecies or varieties from warehouse. The aims of study were:   i) to isolate&nbsp; <i>Bt </i>varieties from grain at werehouse ii) to evaluate <i>Bt</i> toxicity&nbsp; on<i> Spodoptera frugiperda </i>and<i> Shitophilus zeamaisese </i>iii)   to analyze<i> Bt</i> spores persistence in <i>Zea mays </i>grains at   werehouse compared to same <i>Bt </i>on grains exposed to sun   radiation. Results showed that at werehouse were recovered more than one   variety of <i>Bt </i>spores. According to each isolate <i>Bt1 o Bt2 </i>were   toxic to <i>S. frugiperda</i> or<i> S. zeamaisese.</i> One those <i>Bt</i> belong to var <i>morrisoni. </i>At werehouse these spores on <i>Z. mays</i> grains surviving more time, while&nbsp;&nbsp; the same spores exposed to boicide sun   radiation they died.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Key words:</b> Spores, subspecies, survival, biocide sun radiation.</font></p> <hr noshade>     <p align=justify>&nbsp;</p>     <p align=justify>&nbsp;</p>     <p align=justify><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Introducción</b></font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>&nbsp;</b></font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los insectos-plaga (IP)   son uno de los principales factores que limitan la producción agrícola. Atacan   los cultivos vegetales (CV) desde su siembra a la cosecha e incluso como granos   en su almacenamiento. Lo anterior obligó a que en el siglo XX se empleara en forma   intensa el Diclorodifenildicloroetano (DDE) y otros organoclorados durante el   ciclo completo de CV para protegerlos del ataque de los IP, desde su etapa de   huevecillo hasta el adulto (Rowe <i>et al</i>. 1987, Dumalge 1970). La   aplicación de plaguicidas químicos protege CV, pero en los IP alrededor de 500   especies se indujo resistencia genética. En consecuencia a finales de los años   80 se reportan numerosos casos de tolerancia a una o más tipos de insecticidas   (Georghio 1990, Herrero <i>et al.</i> 2001a, Sánchez-Yáñez &amp; Peña-Cabriales   2000). Mi entras los plaguicidas contaminan el agua, el aire y el suelo y su   espectro biocida puede incluir insectos benéficos (Martin &amp; Travers 1989,   Lambert &amp; Peferoen 1992). Otra alternativa para el control de IP, es el   microbiológico con ventajas sobre el químico por su especificidad, e inocuidad   a humanos, animales o plantas y de un relativo bajo costo (Herrero <i>et al</i>.   2001b, Lightwood <i>et al.</i> 2000).Un ejemplo de bioplaguicida es el género   de bacteria entomotóxica y/o entomopatógeno <i>Bacillus </i>cuyas especies son:   <i>B. thuringensis (Bt), B. popilliae, B</i>. <i>larvae </i>y <i>B. sphaericus     (</i>de Maagd<i> et al. 2000, </i>Pinnock<i> et al. </i>1971<i>, </i>Kaelin<i>     et al. </i>1994<i>) Bt </i>se aplica comercialmente desde la mitad del siglo XX (Kiselek1974, Lambert &amp; Peferoen 1992, Luna-Olvera &amp; Peña-Cabriales 1993). <i>Bt</i> durante su esporulación genera un cristal o cuerpo paraesporal, también conocido como &#948;-endotoxina, tóxica para IP de los órdenes: díptera, coleóptera y lepidóptera e inclusive nematodos fitoparasitos (Rowe <i>et al</i>. 1987, Moir &amp; Smith 1990, Schnepf <i>et al.</i> 1998, Tabashnik <i>et al.</i> 2000). El bioplaguicida basado en <i>Bt</i> es clave en la reducción de la aplicación de plaguicidas químicos y evitar la contaminación ambiental como práctica agrícola de protección de los CV (Pinnock <i>et al</i>. 1974, Ignoffo &amp; Garcia 1978, Griego &amp; Spence 1978). Al respecto al menos el 80% del mercado de bioinsecticidas lo cubren productos de <i>Bt, </i>normalmente se emplean como primera elección en el manejo integral de IP, (Rowe <i>et al</i>. 1987, Lambert &amp; Peferoen 1992, Wirth <i>et al</i>. 2001).Un problema de la aplicación de <i>Bt </i>es la breve persistencia de sus esporas en el ambiente abierto (Sánchez-Yáñez &amp; Peña-Cabriales 2000, Pinnock<i> et al. </i>1974, Ignoffo &amp; Garcia 1978, Benoit <i>et al</i>. 1990) debido a que el cristal entomotóxico se sintetiza con parte de la pro-teína, le da resistencia a la radiación solar, le brinda protección mecánica, tolerancia a sustancias químicas del tipo de los biocidas en consecuencia la exposición del complejo espora/cristal a la luz, causa la desnaturalización del cristal y muerte de la espora (Kiselek 1974, Luna-Olveda &amp; Peña-Cabriales 1993 , De Amorin <i>et al</i>. 2001).A pesar de ello, las esporas de<i> Bt </i>se recuperan con relativa facilidad de un amplio número de nichos ecológicos (Moir &amp; Smith 2009, Martin &amp; Travers 1989, Sayyed <i>et al</i>. 2000) Es posible detectar esporas de <i>Bt</i> en función de la fu ente de aislamiento: agua, suelo, filoplano de plantas, larvas de insectos enfermas, productos almacena dos y alimentos balanceados para animales de granja (Martin &amp; Travers 1989, Meadows <i>et al</i>. 1992, Smith &amp; Couche 1991). Sin embargo, si existe diferencia entre la frecuencia de aislamiento de las sub especies de<i> Bt </i>y las esporas de un ambiente en específico, entre de uno abierto y/o cerrado como el al macén de granos ahí superviven por más tiempo (Lambert &amp; Peferoen 1992, Dumalge 1970, Itoua-Apoyolo <i>et al</i>. 1995) en especial del suelo (Martin &amp; Travers 1989, Meadows<i> et al</i>. 1992, Smith &amp; Cou che 1991). Por lo general la supervivencia de las esporas de <i>Bt,</i> depende del ambiente específico de ubicación (Rowe <i>et al</i>. 1987, Sánchez-Yáñez &amp; Pe-ña-Cabriales 2000, Audtho <i>et al</i>. 1999, Kalfon &amp; Barjac 1985. Al respecto se reporta que la persistencia de las esporas de <i>Bt</i> aplicadas foliarmente, fue limitada en hojas o filosfera de <i>Phaseolus vulgaris</i> y <i>Zea mays,</i> en las que registró un tiempo viable que no fue mayor de 72 h, resultado de la actividad biocida de la radiación solar (Sánchez-Yánez &amp; Peña-Cabriales 2000, Meadows <i>et al</i>. 1992). En contraste en alimentos balanceados para animales o granos almacenados, se reportó una supervivencia de sema nas, con un porcentaje del 7% de recuperación de las esporas de <i>(</i>Rowe<i> et al.</i> 1987<i>, </i>Martin<i> &amp; </i>Travers 1989<i>, </i>Dumalge 1970, Itoua-Apoyolo<i> et al. </i>1995). Un ejemplo de lo anterior son las hojas de <a href="https://es.wikipedia.org/wiki/Nicotiana_tabacum" title="Nicotiana tabacum" target="_blank"><i>Nicotiana tabacum</i></a> en almacén, de las que se aisló un porcentaje similar de esporas de <i>Bt</i> detectadas en semillas almacenadas (Kaelin <i>et al.</i> 1994, Sayyed <i>et al</i>. 2000, Hua <i>et</i> <i>al</i>. 2001, De Amorin <i>et al</i>. 1991). Lo que apoya la mayor probabilidad de recuperación de estas formas de resistencia de <i>Bt </i>en almacén en un ambiente protegido de la radiación solar (Benoit <i>et al.</i> 1990, Griego &amp; Spence 1978), que de un abierto como cuando el complejo espora/cristal se asperja en hojas y granos de plantas expuestas directamente a esa radiación (Luna-Olveda &amp; Peña-Cabriales 1993, Smith &amp; Couche 1991) En el ambiente de almacén de granos se sospecha la existencia de esporas de <i>Bt </i>de más de una variedad, serotipo o sub especie, siendo que principalmente son esos sitios cerrados donde se han reportado epizootias en IP causadas por <i>Bt, </i>lo sugiere que debido al número de esporas viables de la bacteria que son suficientemente, para causar una intoxicación e infestación masiva de los IP (Rowe <i>et al</i>. 1987, De Amorin <i>et al.</i> 2001, Wirth <i>et al.</i> 2001, Dumalge <i>et al</i>. 1990). Con base en lo anterior los objetivos de este trabajo fueron: <i>i</i>) detectar esporas de más de una subespecie de <i>Bt </i>en granos de almacén <i>ii</i>) evaluar la toxicidad de esos <i>Bt</i> en<i> Spodoptera frugiperda y Shitophilus zeamais </i>iii) analizar la persistencia de esporas de <i>Bt</i> en grano de <i>Zea mays </i>en ambiente de almacén y expuestos a la intemperie.</font></p>      <p align="justify">&nbsp;</p>      <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Materiales y métodos</b></font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>Origen de las muestras</i>. Se colectaron 84 diferentes muestras de granos de almacén y residuos con diferente tiempo de almacenamiento de los mercados de San Juan, Independencia y Vasco de Quiroga localizados en la Ciudad de Morelia, estado de Michoacán, México.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>Recuperación de las esporas de Bacillus thuringiensis.</i> Para el aislamiento de las esporas de <i>Bt</i> se suspendió 1.0 g/de granos o residuos en tubos de 18X150 mm con 10.0 mL de NaCl 0.85% p/v (solución salina y detergente comercial al 0.001%), los tubos se agitaron/5.0 min en un vórtex (Thermolyne). Los granos con daño por insectos se trituraron y posteriormente con los granos enteros se pasteurizaron a 65 °C/13 min, e inmediatamente se enfriaron durante 7 min en baño de hielo. Para aumentar la posibilidad de la recuperación de esporas de esas muestras se tomó 0.1 mL del pasteurizado y se inoculó en tubos con 10.0 mL de caldo nutritivo (Bioxon) g/L: peptona gelatina 5.0, extracto de carne de res 3.0 pH 6.9, luego se incubo por 24 h, y resembraron por estría en cajas con agar nutritivo (Bioxon) g/L: peptona gelatina 5.0, extracto de carne de res 3.0, agar 15.0, pH 6.9, las cajas con agar nutritivo se incubaron a 30 °C/72 h. Para buscar las colonias típicas de <i>Bt </i>y por microscopia de la luz detectar su cristal y espora característicos (Audtho <i>et al.</i> 1999, Sayyed <i>et al</i>. 2000). </font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>Conservación de las esporas de Bacillus thuringiensis</i>. Los aislados de <i>Bt </i>se resembraron en caldo nutritivo, se incubaron a 30 °C por 72 h, se suspendieron en NaCl 0.85% (solución salina), se mezclaron en turba estéril (121 °C por 2 h) en viales 4 mL con tapón de rosca, se mantuvieron en refrigeración a 10 °C para mantener la viabilidad de esas esporas (Luna-Olvera &amp; Peña-Cabriales 1993, Sánchez-Yáñez 2007). </font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>Microscopia electrónica de los aislados de Bacillus thuringiensis</i>. Para la observación de las esporas y cristales producidos por <i>Bt1 y Bt2 </i>(código usado para su identificación) de los aislados de los granos y residuos almacenados. Se utilizó el microscopio electrónico de barrido (MEB) JEOL Modelo JSM 6400, del Instituto de Investigaciones Metalúrgicas (IIM) de la Universidad Michoacana San Nicolás de Hidalgo (UMSNH), Morelia, Mich, México. Para ello se tomó una asada de cada <i>Bt </i>y se fijó en una placa metálica (1 x 1 cm), luego las placas se sumergieron en glutaraldéhido/45 min., y se deshidrataron en alcohol absoluto para la observación al MEB, se recubrieron con una capa de oro, y se tomaron las microfotografías 5000 y 10000 magnificaciones (Itoua-Apoyolo <i>et al</i>. 1995, Schnepf <i>et al.</i> 1998)</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>Marcaje de los aislados y cepa de HD-1 de Bacillus thuringiensis.</i> La persistencia de las esporas en los granos de <i>Zea mayz</i> en almacén y a la intemperie se seleccionó <i>Bt2</i>, por su abundancia y como comparación se usó la cepa comercial de <i>Bt</i> HD-1(usada como referencia por ser una cepa standard para medir la toxicidad de las esporas/cristales de otras variedades de <i>Bt,</i> respecto a diversas órdenes de insectos). Se diseñaron tres medios de cultivo selectivos para la recuperación de las esporas de <i>Bt</i> con base a su patrón de susceptibilidad a los antibióticos de un Multidisco<sup>*MR</sup> Gram positivo (Sanofi). La cepa HD-1 con resistencia a ampicilina en AN, agregada estéril por filtración con membrana millipore (Gelman, Co) en concentración de 1500 µg/mL (Lakeside), para recuperar <i>Bt1</i> al AN se adiciono ampicilina 850 µg/mL (Lakeside), para recuperar Bt<i>2</i> al AN se agregó 750 µg/mL del mismo antibiótico en la forma señalada. Para inhibir el crecimiento de hongos en el AN se usaron 100 U/mL de nistatina (Sánchez -Yáñez &amp; Peña-Cabriales 2000; Ignoffo &amp; Garcia 1978).</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>Producción y recuperación del complejo espora/ cristal de Bacillus thuringiensis.</i> Para la fermentación del complejo espora/cristal del aislado: <i>Bt1 </i>y <i>Bt2 </i>individualmente se crecieron en caldo soya trip ticasa o CST (Bioxon) e incubaron a 30 °C  por 96 h para observar al microscopio el 95% de las esporas/cristales. El CST se centrífugo a 10000 rpm por 10 min, finalmente, el complejo espora-cristal de cada aislado se recuperó por el método de coprecipitación lactosa-acetona (Dumalge 1970, Dumalge <i>et al</i>. 1990).</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>Supervivencia de esporas de Bacillus thuringiensis en granos de almacén y expuestos al ambiente.</i> Las esporas y cristales de <i>Bt1,</i> <i>Bt2 </i>y <i>HD-1, </i>se ajustaron a 4.0 x 10<sup>6</sup> esporas/semilla, se asperjaron en 300 granos de <i>Z. mays.</i> Estos granos se colocaron en costales de polipropileno de 150 x 100 cm, para si-mular la forma como se conserva en almacén, los costales se introdujeron en un espacio similar al am-biente de un almacén condiciones micro climáticas promedio fueron: temperatura de 20 °C humedad re lativa del 10%. Para registrar el tiempo de supervivencia de las esporas, se analizaron 100.0 g de c/grano a intervalos de 24 h por la técnica de cuenta viable en placa, para facilitar la disgregación de las esporas unidas a los granos, la solución salina se sustituyó por una de triptona (Difco) al 0.1 %  y 10 ppm de N-laurilsarocosine sodium salt o LSD (Sigma). Luego se determinó la densidad de la población de <i>Bt </i>en granos con y sin pasteurización. Además, en el <i>Z. mays </i>asperjado se expuso al ambiente abierto (intemperie) para registrar el efecto de la radiación solar sobre el tiempo de supervivencia de esas esporas de <i>Bt</i> a intervalos de 12 h, se tomaron 100.0 g de este grano de la manera descrita con los almacenados (Sánchez-Yáñez 2007, Itoua-Apoyolo <i>et al</i>. 1995)</font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>Análisis estadístico. S</i>e realizó con una prueba estadística t-Student comparación de medias de Tukey para analizar la persistencia esporas de<i> Bt </i>en los granos de <i>Z. mays</i> en ambiente de almacén  así como en la intemperie (Sáncrez-Yáñez &amp; Peña-Cabriales 2000, Sáncrez-Yáñez 2007).</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Resultados</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En la <a href="#f1">figura 1</a> se muestra la microfotografía electrónica de barrido de las esporas y   cristales amorfos o los diferentes tipos de &#948;-endotoxina sintetizados por <i>Bt2</i> producidos en un cultivo de 96 h de incubación (Rowe<i>   et al.</i> 1987, Schnepf<i> et al</i>. 1998, Dumalge <i>et al</i>. 1990). </font></p>     <p align="justify"><a name="f1"></a></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/jsars/v7n2/a02_figura_01.jpg" width="491" height="387"></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En la <a href="#f2">figura 2</a> se muestra   una magnificación del cristal sintetizado por <i>Bt1, </i>recuperado de granos   en almacén. En ella se observan cristales rectangulares cúbicos e incluso   amorfos, evidencia que sugiere que en los granos en almacén podría existir más   de una variedad de <i>Bt </i>distinta a la <i>morrisoni, </i>como la <i>kurstaki     </i>que normalmente no se recupera de ambientes distintos a la de los granos almacenados (Martin &amp; Travers 1989, Meadows <i>et       al</i>. 1992).</font></p>     <p align="justify"><a name="f2"></a></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/jsars/v7n2/a02_figura_02.jpg" width="469" height="379"></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La <a href="#t1">tabla 1</a> muestra el análisis bacteriológico de 84 diferentes granos y sus residuos obtenidos de almacenes para su conservación, usados como fuente de aislamiento de los <i>Bt, </i>observados al microscopio electrónico de barrido se detectaron dos tipos morfológicos de cristales como se muestra en las microfotografías al MEB señaladas en la <a href="#f1">figura 1</a>, con cristales bipiramidales típicos de algunas variedades de <i>Bt2 </i>que intoxican lepidópteros como la subespecie<i> kurstaki</i> (Rowe <i>et al</i>. 1987, Herrero <i>et al</i>. 2001a) mientras que en la <a href="#f2">figura 2</a> se observan el complejo espora-cristal que generalmente son similares a lo reportado para <i>Bt </i>recuperados de ambientes cerrados como lassubespecie<i> morrisoni </i>de<i> Bt</i> (Martin &amp; Travers 1989, Meadows <i>et al</i>. 1992)</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><a name="t1"></a></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/jsars/v7n2/a02_tabla_01.gif" width="772" height="226"></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En la <a href="#f3">figura 3</a> se muestra   que <i>Bt1 </i>y <i>Bt2 </i>cultivados en CST generaron complejo espora   cristales que causaron un 100% de mortalidad en<i> S.</i> <i>frugiperda </i>que   corresponde a <i>Bt </i>var. <i>kurstaki </i>(Itoua-Apoyolo <i>et al</i>. 1995,   Audtho <i>et al</i>. 1999).</font></p>      <p align="justify"><a name="f3"></a></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/jsars/v7n2/a02_figura_03.gif" width="713" height="438"></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En tanto que ambos <i>Bt</i> reproducidos en CN sintetizaron un complejo espora cristales menos tóxicos   contra <i>S.</i> <i>frugiperda </i>con un 60% de mortalidad, algo   similar se observó cuando estos aislados se crecieron en CSTL, <i>Bt1 </i>produjo   el complejo espora/cristal de baja toxicidad contra <i>S</i>. <i>frugiperda </i>con   un 40% de mortalidad. Mientras que <i>Bt2 </i>mantuvo el 60% en el mismo   lepidóptero, resultado de la composición química del medio de reproducción   (Rausell <i>et al</i>. 2000, Schnepf <i>et al.</i> 1998, Dumalge <i>et al</i>. 1990).</font></p>  <font size="2">     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En la <a href="#f4">figura 4</a> se presenta   como el complejo espora-cristal de <i>Bt1 </i>fue tóxico para <i>Shitophilus     zeamaise </i>en función de la composición química del medio de cultivo en el   que se reprodujo (Dumalge 1970, Klanfon &amp; De Barjac 1985, Sayyed <i>et al.</i>   2000, mientras que en el CN el por ciento de mortalidad fue del 30%, cuando <i>Bt1     </i>se creció en CST tuvo toxicidad del 18%; en contraste al cultivado en CSTL no causó ninguna mortalidad en larvas de <i>S. zeamais</i>e.</font></p>     <p align="justify"><a name="f4"></a></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/jsars/v7n2/a02_figura_04.gif" width="776" height="509"></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Estos resultados apoyan   que de acuerdo con la toxicidad del complejo esporas/cristales son específicos   para determinados ordenes de IP (Rowe <i>et al.</i> 1987, Schnepf <i>et al</i>.   1998, Dumalge <i>et al</i>. 1990), e indican que se trata de una variedad de <i>Bt     </i>diferente a <i>kurstaki </i>(Rowe <i>et al</i>. 1987, Georghiou 1990, Maagd   <i>et al</i>. 2000) y que se mostró en las microfotografías electrónicas   de barrido, está subespecie sintetiza un tipo de cristal no romboide típico, el   más conocido para <i>Bt</i> var.<i> kurstaki </i>(Herrero <i>et al</i>. 2001a, Herrero <i>et al</i>. 2001b, Tabashnik <i>et al.</i> 2000).</font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><br clear=all>    </font><font size="2"></font></p> </font><font size="2">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La <a href="#t2">tabla 2</a> se presenta el   tiempo de supervivencia de las esporas de <i>Bt2</i> y <i>Bt</i> var. <i>kurstaki</i>   HD-1 en granos de <i>Z. mays</i> almacenados a temperatura promedio de 20 °C±1   y humedad relativa del 10%. Mientras que a la intemperie la temperatura mínima   fue 10 °C a las 5 AM, de 25 °C a las 12 AM, de 35 °C a las 16 pm, con una   humedad relativa de 40%, entre las17-19 pm y del 30% en el resto del tiempo. Se   observó que las esporas de <i>Bt1 </i>y <i>Bt2</i> así como las HD-1 fueron   viables más tiempo cuando los granos de <i>Z. mays</i> se almacenaron por más   de 21 días, (en la tabla se omitió la relación de la supervivencia de las   esporas de <i>Bt1 </i>en almacén, porque no fue estadísticamente diferente a lo   registrado con<i> Bt2</i>)<i>.</i> En evidente contraste con el menor tiempo de   supervivencia de las esporas de <i>Bt </i>expuestas a la radiación solar responsable   del efecto biocida, ya que a los 18 días posteriores del inicio del ensayo ya   no se detectaron esporas viables de <i>Bt</i> en ningún caso (Sánchez-Yáñez &amp; Peña-Cabriales 2000, Griego &amp; Spence 1978).</font></p>     <p align="justify"><a name="t2"></a></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/jsars/v7n2/a02_tabla_02.gif" width="800" height="510"></p> </font>    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En la <a href="#t3">tabla 3</a> se muestra   el perfil bioquímico complementario usado en la identificación de los <i>Bt </i>de   granos de almacén como la subespecie <i>morrisoni, </i>con diferencia en   la capacidad de hidrolisis de caseína, en los aislados de <i>Bt </i>de esta   investigación, este dato fisiológico al igual que la toxicidad de los cristales   contra <i>S. zeamais,</i> y el tipo morfológico de cristales   observados, en los medios de cultivo usados en la generación del complejo   espora/cristal, y reafirma que se trata de una variedad de Bt diferente a <i>kurstaki</i> (Dumalge <i>et al.</i> 1990).</font></p>     <p align="justify"><a name="t3"></a></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/jsars/v7n2/a02_tabla_03.gif" width="748" height="278"></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En la <a href="#f5">figura 5</a> se muestra   el gel de agarosa con los plásmidos de <i>Bt </i>aislados de granos en almacén,   de acuerdo con el método de extracción de ADN extra cromosómico (Kieser 1984),   después de que <i>Bt </i>se cultivó en CN con naranja de acridina y el SDS para   la eliminación de los plásmidos para luego repetir la extracción del ADN   (Kieser 1984). Resultado de este ensayo estos plásmidos ya no se detectaron,   aunque <i>Bt </i>creció normalmente en CN, además de que no formaron los   típicos cristales. Con lo que se demostró que la síntesis de estos plásmidos y   cristales estaban directamente relacionados, como la señala literatura para las   subespecies o variedades de <i>Bt </i>(Hua <i>et al</i>. 2001, De Amorin et al. 2001, Griego &amp; Spence 1978).</font></p>     <p align="justify"><a name="f5"></a></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/jsars/v7n2/a02_figura_05.jpg" width="478" height="517"></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Discusión</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">De acuerdo con lo reportado con los resultados mostrados basados en la morfología ultramicroscópica de los cristales de<i> Bt, </i>la toxicidad del complejo espora/cristal contra <i>S. frugiperda</i> y <i>S. zeamais,</i> el per fil bioquímico, sugiere la existencia de una subespecie de <i>Bt </i>var<i>. morrisoni</i> en granos almacenados. Con el bioensayo horizontal se probó que <i>Bt1 </i>causo una mortalidad de un 90% en <i>S. frugiperda </i>un IP de cultivos agrícolas en campo abierto (Lightwood <i>et al</i>. 2000, Kaelin <i>et al</i>. 1994), al MEB la morfología de sus cristales sugiere que <i>Bt1 </i> pertenece a la var <i>kurstaki </i>(de Maagd <i>et al</i>. 2000, Schnepf <i>et al</i>. 1998) . Similar a lo reportado para <i>Bt </i>subespecie<i> morrisoni</i> (Rowe <i>et al.</i> 1987, Herrero <i>et al</i>. 2001a, Herrero <i>et al</i>. 2001b). Es probable que el movimiento de los granos desde el campo hasta el almacén haya facilitado su contaminación con esporas de <i>Bt </i>subespecie<i> kurstaki </i>y la<i> morrisoni </i>a pesar de que ambas variedades sean distintas, su viabilidad es relativamente corta cuando se exponen a la luz, consecuencia de que parte de la proteína que se destina para el cristal se suprime de la cubierta de la espora, lo que la hace susceptibles a la acción biocida de la luz solar (Igno ffo &amp; Garcia 1978, Martin &amp; Travers 1989, Benoit <i>et al.</i> 1990, Griego &amp; Spence 1978), en especial cu ando no se almacenan, en contraste si los granos colectados evitan la luz solar, existe alguna evidencia de que podrían preservarse en un almacén desde semanas a meses (Rowe <i>et al.</i> 1987, Luna-Olvera &amp; Peña-Cabriales 1993), esta ruta es una forma de dispersión de las esporas (Lambert &amp; Peferoen 1992, Schnepf <i>et al</i>. 1998), la presencia de más de una subespecies de <i>Bt</i> en granos se ha hipotizado y depende del momento de almacenamiento independientemente del tipo y tamaño de los granos (Rowe <i>et al.</i> 1987, Klanfon &amp; De Barjac 1985). En esta investigación fue relativamente sencillo determinar el por ciento de aislamiento de las esporas de <i>Bt </i>a partir de los diversos granos, este porcentaje fue diferente o mayor al que se reporta en ambientes abiertos (expuestos a la luz solar) como el agua, el suelo o las hojas de plantas (Sánchez-Yáñez &amp; Peña-Cabriales 2000, Martin &amp; Travers 1989, Lambert &amp; Peferoen 1992, Luna-Olvera &amp; Peña-Cabriales-1993). Existe cierta tendencia a detectar el mayor porcentaje de recuperación de esporas de <i>Bt </i>en almacén (Meadows <i>et al.</i> 1992). Alguna información señala que granos recién cosechados expuestos a la luz directa del sol, contenían un número limitado o nulo de esporas viables de <i>Bt</i> (Pinnock <i>et al.</i> 1974, Ignoffo &amp; Garcia 1978, Griego &amp; Spence 1978), pero aquellos colectados y almacenados inmediatamente por más de 2 a 3 semanas, se les detectaron esporas viables de <i>Bt </i>(Meadows <i>et al</i>. 1992, Kaelin <i>et al</i>. 1994, Smith &amp; Couche 1991). Esto hace suponer que el periodo de cosecha de granos es crítico por el contacto con los insectos saprobios, los pájaros y sus desechos que transportan esporas de<i> Bt</i>  (Rowe <i>et al</i>. 1987, Luna-Olvera &amp; Peña-Cabriales 1993), y sugiere que el almacenamiento de los granos favorece la viabilidad y diversidad de subespecies de esporas de <i>Bt, </i>al igual que la baja humedad (Martin &amp; Travers 1989, Lambert &amp; Peferoen 1992). Aunque no se ha afirmado categóricamente también se hipotiza que en ausencia de luz solar la persistencia de las esporas es mayor que expuestas a la radiación solar (Benoit<i> et al</i>. 1990, Griego &amp; Spence 1978), además sugiere que los granos almacenados contienen esporas de diferentes subespecies de <i>Bt </i>(Rowe <i>et al</i>. 1987, Schnepf <i>et al.</i> 1998, Benoit <i>et al.</i> 1990). Este hecho se probó en la actual investigación, dado que se detectaron cristales con morfología: romboidales o bipiramidales y amorfos como se muestra en las microfotografías al MEB mostradas en las figuras 1 y 2 recuperados en diversos gra nos y los residuos, una características morfológica definida en las distintas subespecies de <i>Bt </i>(Herrero <i>et al</i>. 2001a, De Maagd <i>et al.</i> 2000, Meadows <i>et al.</i> 1992, Klanfon &amp; De Barjac 1985), al igual que en los lugares relacionados con la industria de alimentos para animales de granja (Kaelin <i>et al</i>. 1994, Dumalge 1970, Klanfon &amp; De Barjac 1985). Otra evidencia de la existencia de más de una subespecies de <i>Bt,</i> fueron bioensayos horizontales con <i>S. frugiperda y S. zeamaise</i> (Sayyed <i>et al</i>. 2000, Hua <i>et al.</i> 2001, Tabashnik <i>et al.</i> 2000, Wirth 2001) En principio porque <i>Bt </i>sintetiza una clase específica de cristales entomotóxicos acorde con las distintos órdenes de IP, por lo que la diferencia en la toxicidad de la &#948;-endotoxina es dependiente de la variedad de <i>Bt</i>, de su origen y el medio de cultivo que se usa para la síntesis de ese complejo espora-cristal. Este hecho se comprobó en el bioensayo horizontal realizado para <i>S. frugiperda y S. zeamais,</i> ahí los aislados de <i>Bt</i> en función de la composición química del medio de reproducción, en especial el CST, ahí generaron los complejos esporas/cristales tóxicos contra estos dos IP, a pesar de pertenecer a órdenes de insectos: lepidóptera y coleóptera, lo que apoyo la identificación de una subespecie de <i>Bt </i>diferente a la reportada para ambientes de almacén de granos como la var.<i> kurstaki</i> y/o las fábricas de alimentos de ganado y aves como la var. <i>Morrisoni </i>(Rowe <i>et al</i>. 1987, Martin &amp; Travers 1989, Lambert &amp; Peferoen 1992, Meadows <i>et al.</i> 1992). Finalmente comportamiento bioquímico de algunos de estos aislados fue similar al de la subespecie <i>morrisoni </i>de <i>Bt. </i>Mientras la otra fue análoga a la ampliamente distribuida en la naturaleza conocida como <i>kurstaki</i> (datos no mostrados) (Audtho <i>et al</i>. 1999, De Amorin <i>et al</i>. 2001, Guerchicoff <i>et al</i>. 2001). </font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Por otro lado, los resultados de este trabajo sugieren que es necesario investigar sobre la síntesis de esporas-cristales de los nuevos aislados de <i>Bt</i> recuperados de diversas fuentes como los granos y sus residuos en almacén, tanto en medios de cultivo artificiales como naturales (Klanfon &amp; De Barjac 1985, Sayyed <i>et al.</i> 2000, Dumalge 1990). Dado que 3 aislados de <i>Bt </i>de la subespecie <i>israelensis </i>reproducidos en 6 medios de cultivo en concentraciones variables de azúcares y proteínas genero la síntesis de esporas y cristales con diferente grado de toxicidad para mosquitos (Rowe <i>et al</i>. 1987, Georghiou 1990, Dumalge <i>et al</i>. 1990). </font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La viabilidad de las esporas de ambos aislados de <i>Bt</i> fue mayor en el almacén y restringida cuando <i>Z. mays </i>se expuso al ambiente abierto (Sánchez-Yáñez &amp; Peña-Cabriales 2000, Pinnock <i>et al.</i> 1974), la literatura al respecto indica que la muerte de las esporas fue causada por la acción germinada de la luz solar, asociada con la carencia de las pequeñas proteínas solubles en el ácido (PPSA) que forman parte de la cubierta de las esporas de <i>Bt;</i> estas PPSA proporcionan a las esporas tolerancia a la radiación solar (Ignoffo &amp; Garcia 1978, Benoit<i> et al.</i> 1990, Griego &amp; Spence 1978). Con base en lo anterior se justifica porque a nivel de campo en el eficaz control de un especifico IP; el complejo espora cristal deberá aplicarse exclusivamente cuando la mayor por ciento de los huevecillos del IP estén eclosionando, y darle un tiempo suficiente de consumo del material foliar con el complejo espora/cristal de <i>Bt;</i> principalmente durante las primeras horas del día y/o por la tarde cuando la radiación solar es menor que al mediodía (Lambert &amp; Perefon 1992), cuando la exposición del complejo espora/cristal a esa radiación destruye y desnaturalizan ambos (Sánchez-Yáñez &amp; Peña-Cabriales 2000, Ignoffo &amp; Garcia 1978). Lo anterior justifica el empleo de complejos espora/cristal encapsulados de <i>Bt,</i> que aumentan la eficacia del control biológico de IP agrícola, forestales y urbanos (Rowe <i>et al</i>. 1987, Rausell <i>et al</i>. 2000, Schnepf <i>et al</i>. 1998). </font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Con base a los resultados obtenidos en esta investigación se apoya que en  almacén de granos independientemente del tipo, origen y en especial  de la ausencia de luz, con mínima de humedad y baja actividad depredatoria de microorganismos que eliminen las esporas de <i>Bt; </i>se favorece la existencia y supervivencia de más de una variedad de <i>Bt</i>. La supervivencia de las posibles subespecies de las esporas de <i>Bt</i> en los granos de <i>Z. mays</i>, fue directamente dependiente de su exposición a la radiación solar, en contraste con la persistencia relativamente prolongada en los granos <i>Z. mays</i> almacenados. Estos resultados que apoyan innovadoras formas de aplicación de los complejos esporas/cristales de <i>Bt, </i>que toleran efectos letales de la radiación solar para mejorar la eficacia del control biológico de IP en el campo, en el bosque y en la ciudad que eviten la proliferación de insectos vectores transmisores de enfermedades como el dengue, el paludismo y el chikungunya; en lugar de los convencionales y contaminantes plaguicidas químicos de riesgo para la salud humana.</font></p>      <p align="justify">&nbsp;</p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Conflictos de intereses&nbsp;</b></font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Esta investigación no tiene conflictos de interés en relación con quien la realizo y apoyó.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Agradecimientos</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Al proyecto 2.7 (2016) de la CIC de la UMSNH. Al Instituto de Investigaciones Metalúrgicas-UMSNH por las facilidades del microscópico de ba­rrido y su técnico Francisco Solario. A Beatriz Noriega-Gam-boa por su paciencia en la elaboración de las figuras. A BIONUTRA, S.A. de CV, Maravatio, Mich, México.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>      <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Literatura citada</b></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Amador RAL, Boschini FC. Fenología productiva y nutricional de maíz para la producción de forrage. Agron Mesoam. 2000; 11(1): 171-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=153759&pid=S2072-9294201600020000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Audtho M, Valaitis AP, Alzate O, Dean DH. Production of chymotrypsin-resistant <i>Bacillus thuringiensis </i>Cry2Aa1 &#948;-endotoxin by protein engineering. Appl Environ Microbiol. 1999; 65 (10): 4601-5.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=153761&pid=S2072-9294201600020000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Benoit TG, Wilson GR, Bull DL, Aronson AI. Plasmid-associated sensitivity of <i>Bacillus thuringiensis</i> to UV light. Appl Environ Microbiol. 1990; 56(8): 2282-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=153763&pid=S2072-9294201600020000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">De Amorim GV, Whittome B, Shore B, Levin DB. Identification of <i>Bacillus thuringiensis </i>subsp. <i>kurstaki </i>strain HD1-like bacteria from environmental and human samples after aerial spraying of Victoria, British Columbia, Canada, with Foray 48B. Appl Environ Microbiol. 2001; 67(3): 1035-43.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=153765&pid=S2072-9294201600020000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">De Maagd RA, Weemen-Hendriks M, Stiekema W, Bosch D. <em>Bacillus thuringiensis</em> delta-endo to xin Cry1C domain III can function as a specificity determinant for <em>Spodoptera exigua</em> in different, but not all, Cry1-Cry1C hybrids. Appl Environ Microbiol. 2000; 66:1559-63.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=153767&pid=S2072-9294201600020000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Dulmage HT, Correa JA, Gallegos-Morales G. Potential for improved formulations of<i> Bacillus thuingiensis israelensis</i> through standardization and fermentation development. 199O. p. 110-133. /n.' H. de Barjac and D. J. Sutherland (eds.). Bacterial control of mosquitoes and black flies. Rutgers Univ. Press, New Brunswick, NJ.</font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Dulmage HT. Production of the spore-&#948;-endotoxin complex by variants of <i>Bacillus thuringiensis</i> in two fermentation media. J Invertebr Pathol. 1970; 16(3): 385-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=153770&pid=S2072-9294201600020000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Georghiou GP. Overview of insecticide resistance. ACS Symposium series. American Chemical Society (USA); 1990. p. 18-41.</font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Griego VM, Spence KD. Inactivation of     <i>Bacillus thuringiensis</i> spores by ultraviolet and visible light. Appl Environ Microbiol. 1978; 35(5): 906-10.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=153773&pid=S2072-9294201600020000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Guerchicoff A, Delécluse A, Rubinstein CP. The <i>Bacillus thuringiensis</i> cyt genes for hemolytic endotoxins constitute a gene family. Appl Environ Microbiol. 2001; 67(3): 1090-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=153775&pid=S2072-9294201600020000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Herrero S, Ferré J, Escriche B. Mannose Phosphate Isomerase Isoenzymes in P<i>lutella xylostella</i> Support Common Genetic Bases of Resistance to <i>Bacillus thuringiensis</i> Toxins in <i>Lepidopteran </i>Species. Appl Environ Microbiol. 2001a; 67(2): 979-81.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=153777&pid=S2072-9294201600020000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Herrero S, Oppert B, Ferré J. Different Mechanisms of Resistance to <i>Bacillus thuringiensis</i> Toxins in the Indian meal Moth. Appl Environ Microbiol. 2001b; 67(3): 1085-89.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=153779&pid=S2072-9294201600020000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Hua G, Masson L, Jurat-Fuentes JL, Schwab G, Adang MJ. Binding analyses of <i>Bacillus thuringiensis</i> Cry &#948;-endotoxins using brush border membrane vesicles of Ostrinia nubilalis. Appl Environ Microbiol. 2001; 67(2): 872-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=153781&pid=S2072-9294201600020000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Ignoffo CM, Garcia C. UV-photoinactivation of cells and spores of <i>Bacillus thuringiensis </i>and effects of peroxidase on inactivation. Environ Entomol. 1978; 7(2): 270-2.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=153783&pid=S2072-9294201600020000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Itoua-Apoyolo C, Drif L, Vassal JM, Debarjac H, Bossy JP, Leclant F, et al. Isolation of Multiple Subspecies of <i>Bacillus thuringiensis</i> from a Population of the European Sunflower Moth, <i>Homoeosoma nebulella</i>. Appl Environ Microbiol. 1995; 61(12): 4343-7.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=153785&pid=S2072-9294201600020000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Kaelin P, Morel P, Gadani F. Isolation of <i>Bacillus thuringiensis</i> from stored tobacco and <i>Lasioderma serricorne</i> (F.). Appl Environ Microbiol. 1994; 60(1): 19-25.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=153787&pid=S2072-9294201600020000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Kieser T. Factors affecting the isolation of CCC DNA from S<i>treptomyces lividans</i> and <i>Escherichia coli</i>. Plasmid. 1984; 12(1): 19-36.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=153789&pid=S2072-9294201600020000200017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Kiselek EV. Survival of bacterial entomopathogens in tree crowns and in soil around the trunk. Vestn Selskokhoz Nauki (Moscow). 1974; 5: 68-71.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=153791&pid=S2072-9294201600020000200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Klanfon AR, De Barjac H. Screening of the insecticidal activity of <i>Bacillus thuringiensis</i> strains against the Egyptian cotton leaf worm <i>Spodoptera littoralis</i>. Entomophaga. 1985; 30(2): 177-86.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=153793&pid=S2072-9294201600020000200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Lambert B, Peferoen M. Insecticidal promise of <em>Bacillus thuringiensis.</em> Facts and mysteries about a successful biopesticide. BioScience. 1992; 42(2): 112-22.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=153795&pid=S2072-9294201600020000200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Lightwood DJ, Ellar DJ, Jarrett P. Role of Proteolysis in Determining Potency of <i>Bacillus thuringiensis </i>Cry1Ac &#948;-Endotoxin. Appl Environ Microbiol. 2000; 66(12): 5174-81.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=153797&pid=S2072-9294201600020000200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Luna-Olvera H, Peña-Cabriales J. Ecología de <i>Bacillus thuringiensis.</i> En Avances Recientes en la Biotecnología en<i> Bacillus thuringiensis</i>. Editores LJ Galán-Wong et al.1993. Universidad Autonóma de Nuevo León, Monterrey, N.L. México 1993: 179-85.</font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Martin PA, Travers RS. Worldwide abundance and distribution of <i>Bacillus thuringiensis </i>isolates. Appl Environ Microbiol. 1989; 55(10): 2437-42.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=153800&pid=S2072-9294201600020000200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Meadows MP, Ellis DJ, Butt J, Jarrett P, Burges HD. Distribution, frequency, and diversity of <i>Bacillus thuringiensis</i> in an animal feed mill. Appl Environ Microbiol. 1992; 58(4): 1344-50.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=153802&pid=S2072-9294201600020000200024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Moir A, Smith DA. The genetics of bacterial spore germination. Annu Rev Microbiol. 1990; 44(1): 531-53.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=153804&pid=S2072-9294201600020000200025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Pinnock DE, Brand RJ, Jackson KJ, Milstead JE. The field persistence of <i>Bacillus thuringiensis </i>spores. J Invertebr Pathol. 1974; 23(3): 341-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=153806&pid=S2072-9294201600020000200026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Rausell C, Martinez-Ramirez AC, García-Robles I, Real, MD. A binding site for <em>Bacillus thuringiensis</em> Cry1Ab toxin is lost during larval development in two forest pests. Appl Environ Microbiol. 2000; 66(4)<strong>: </strong>1553-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=153808&pid=S2072-9294201600020000200027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Rowe OE, Margaritis A, Dumalge HT. Bioprocess developments in the production of bioinsecticides by <i>Bacillus thuringiensis</i>. Crit Rev Biotechnol. 1987; 6(1): 87-127.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=153810&pid=S2072-9294201600020000200028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Sánchez-Yáñez J. Breve Tratado de Microbiología Agrícola Teoría y Práctica. Instituto de Investigaciones Químico Biológicas, Universidad Michoacana de San Nicolás de Hidalgo, COSUSTENTA, SA de CV, Centro de Investigación y Desarrollo del Estado de Michoacán, Morelia, Mich México. 2007: 130-3.</font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Sánchez-Yáñez JM, Peña-Cabriales J. Persistencia de esporas de <i>Bacillus thuringiensis</i> en hojas de maíz, de frijol y en el suelo. 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Genetic and Biochemical Approach for Characterization of Resistance to <i>Bacillus thuringiensis</i> Toxin Cry1Ac in a Field Population of the Diamondback Moth,<i> Plutella xylostella.</i> <cite>Appl Environ Microbiol.</cite> 2000; 66(4): 1509-16.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=153815&pid=S2072-9294201600020000200031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Schnepf E, Crickmore N, Van Rie J, Lereclus D, Baum J, Feitelson J, <i>et al. Bacillus thuringiensis </i>and its pesticidal crystal proteins. Microbiol Mol Biol Rev. 1998; 62(3): 775-806.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=153817&pid=S2072-9294201600020000200032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Smith RA, Couche GA. The phylloplane as a source of<i> Bacillus thuringiensis</i> variants. Appl Environ Microbiol. 1991; 57(1): 311-5.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=153819&pid=S2072-9294201600020000200033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Tabashnik BE, Liu YB, de Maagd RA, Dennehy TJ. Cross-resistance of pink bollworm (<i>Pectinophora gossypiella</i>) to <i>Bacillus thuringiensis</i> toxins. Appl Environ Microbiol. 2000; 66(10): 4582-4.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=153821&pid=S2072-9294201600020000200034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Wirth MC, Delécluse A, Walton WE. Lack of cross-resistance to Cry19A from <i>Bacillus thuringiensis </i>subsp. <i>jegathesan</i> in Culex quinquefasciatus (<i>Diptera: Culicidae</i>) resistant to Cry toxins from <i>Bacillus thuringiensis </i>subsp. <i>israelensis</i>. Appl Environ Microbiol. 2001; 67(4): 1956-18.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=153823&pid=S2072-9294201600020000200035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <p align=center><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>______________</b></font></p>     ]]></body>
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