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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Evaluación de la adición de bacterias lipolíticas autóctonas para estimular a escala de laboratorio la biodegradación de efluentes grasos de una industria aceitera]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The presence of lipids in the composition of wastewater can alter the proper functioning of the systems arranged for treatment In this sense, the present work evaluates the efficiency of 3 lipase producing bacteria, in reducing the fat / oil concentrations present in the wastewater of the oil industry from which they were isolated. Therefore, the conditions that allow the best development of the bacterial population (antagonism, respiration, pH and pH regulating salts) were studied, in addition to studying the incidence of different concentrations (V / V) of suspensions of the bacteria studied (1 %, 2.5% and 5%), together with different concentrations of calcium chloride (Cl2Ca) (0%, 1%, 2.5% and 5%). It was found that the best results (34 mg / L - own follow-up; 18.5 mg / L - test by third party) are the product of the aggregate of the bacterial inoculum of concentration 2.5% (V / V) in conjunction with C12Ca at 5 % (V / V), formed by a combination between the bacteria suspected of being Pseudomona Sp. And Corynebacterium Sp., Added to a sample of fatty effluent with pH 7 regulated with sodium carbonate, in 15 days of treatment with assisted aeration . It is concluded that the Bacteria studied show a promising potential for its implementation in wastewater treatment systems from the oil industry.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Art&iacute;culo Cient&iacute;fico</b></font></p>     <p align="right">&nbsp;</p>     <p align="center"><b><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="4">Evaluación de la adición de bacterias lipolíticas autóctonas para estimular a escala de laboratorio la biodegradación de efluentes grasos de una industria</font> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="4">aceitera</font></b></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><b><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"><i>Evaluation of the addition of automatic lipolytic bacteria to stimulate laboratory scale biodegradation of fat effluents of an oil industry</i></font></b></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><b><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Mendoza Grájeda D.Y.<sup>1</sup>, Lopez Terrazas M.<sup>2</sup>, Montaño Suarez A.M.<sup>3</sup></font></b></p>     <p align="center"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><sup>1</sup> Laboratorio Académico y de Investigación de Ingeniería Ambiental, Facultad de Ciencias Exactas y Tecnología (FCET), <sup>    <br> 2</sup> Laboratorio de Investigación de Microbiología Ambiental y Biotecnología (LIMAB), Facultad de Ciencias Agrícolas (FCA), (U.A.G.R.M.). Santa Cruz, Bolivia.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><a href="mailto:yerymgrajeda04 04 95@gmail.com">yerymgrajeda04 04 95@gmail.com</a></font></p>     <p align="center"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Recibido: 4 de febrero 2020    <br> Aceptado: 18 de febrero 2020</font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center">&nbsp;</p> <hr align="JUSTIFY" noshade>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Resumen: </b>La presencia de lípidos en la composición de las aguas residuales puede alterar el correcto funcionamiento de los sistemas dispuestos para su tratamiento. En este sentido, el presente trabajo evalúa la eficiencia de 3 bacterias productoras de lipasa, en la reducción de las concentraciones de grasas/aceites presentes en las aguas residuales de la industria aceitera de donde fueron aislados. Por consiguiente, se estudió las condiciones que permitan el mejor desarrollo de la población bacteriana (antagonismo, respiración, pH y sales reguladoras de pH), además de estudiar la incidencia de diferentes concentraciones (V/V) de suspensiones de las bacterias estudiadas (1%, 2,5% y 5%), en conjunto con diferentes concentraciones de Cloruro de calcio (Cl<sub>2</sub>Ca) (0%, 1%, 2,5% y 5%). Se comprobó que los mejores resultados (34 mg/L - seguimiento propio; 18,5 mg/L - prueba por tercero) son producto del agregado del inóculo bacteriano de concentración 2,5% (V/V) en conjunto con Cl<sub>2</sub>Ca al 5% (V/V), formado por una combinación entre las bacterias sospechosas de ser: <i>Pseudomona Sp. </i>y <i>Corynebacterium Sp., </i>agregado a una muestra de efluente graso con pH 7 regulado con carbonato de sodio, en 15 días de tratamiento con aireación asistida. Se concluye que las Bacterias estudiadas evidencian un potencial promisorio para su implementación en sistemas de tratamiento de aguas residuales procedentes de la industria aceitera.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Palabras clave: </b>efluentes grasos, tratamiento, lipasas, cloruro de calcio, aireación.</font></p> <hr align="JUSTIFY" noshade>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b><i>Abstract: </i></b>The presence of lipids in the composition of wastewater can alter the proper functioning of the systems arranged for treatment In this sense, the present work evaluates the efficiency of 3 lipase producing bacteria, in reducing the fat / oil concentrations present in the wastewater of the oil industry from which they were isolated. Therefore, the conditions that allow the best development of the bacterial population (antagonism, respiration, pH and pH regulating salts) were</font> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">studied, in addition to studying the incidence of different concentrations (V / V) of suspensions of the bacteria studied (1 %, 2.5% and 5%), together with different concentrations of calcium chloride (Cl<sub>2</sub>Ca) (0%, 1%, 2.5% and 5%). It was found that the best results (34 mg / L - own follow-up; 18.5 mg / L - test by third party) are the product of the aggregate of the bacterial inoculum of concentration 2.5% (V / V) in conjunction with C12Ca at 5 % (V / V), formed by a combination between the bacteria suspected of being Pseudomona Sp. And Corynebacterium Sp., Added to a sample of fatty effluent with pH 7 regulated with sodium carbonate, in 15 days of treatment with assisted aeration . It is concluded that the Bacteria studied show a promising potential for its implementation in wastewater treatment systems from the oil industry.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b><i>Keywords: </i></b><i>fatty effluents, treatment, lipases, calcium chloride, aeration.</i></font></p> <hr align="JUSTIFY" noshade>     <p align="justify">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"><b>1&nbsp; &nbsp; &nbsp; INTRODUCCIÓN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La conservación de recursos naturales ha cobrado gran importancia a nivel mundial, ocasionando en la sociedad la necesidad de buscar soluciones ambientalmente amigables, basadas en la máxima seguridad, el mínimo impacto ambiental y en la medida de lo posible, en la reducción de la generación de derivados, cuyo tratamiento o disposición aumenta los costos de tratamiento. Por lo expuesto, los tratamientos biológicos se han identificado como procesos capaces de cumplir los criterios mencionados, pudiendo reducir las concentraciones de contaminantes generalmente orgánicos, mediante la acción catalizadora de microorganismos.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Sin embargo, las limitaciones de los tratamientos biológicos están relacionadas con la biodegradabilidad del contaminante a tratar y la presencia de compuestos inhibitorios o tóxicos para el cultivo biológico. En este sentido, la presencia de compuestos grasos en la composición de los efluentes presenta estos efectos, dado que la estructura de dichos compuestos dificulta su degradación por microorganismos no adaptados a su presencia, sumado a que favorecen la aparición de zonas anóxicas, debido a que la oxidación de estos compuestos consumen importantes cantidades del oxígeno disuelto presente en los reactores biológicos, además de generar productos altamente tóxicos debido al proceso de peroxidación lipídica. Por otra parte, la presencia de compuestos grasos ocasiona la obstrucción de los conductos que poseen los sistemas de tratamiento y ocasiona la flotación de lodos, dificultando la deshidratación de los mismos por medios mecánicos, debido a sus propiedades tixotrópicas (Teqma, 2019).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En este sentido, se han identificado organismos capaces de aprovechar como sustratos o fuentes de energía para la realización de sus funciones vitales, las grasas y aceites presentes en los efluentes, mediante la generación de lipasa (hidrolasas de éster de glicerol, EC 3.1.1.3), enzimas que catalizan la hidrólisis de los enlaces éster carboxílico presentes en las grasas, liberando ácidos orgánicos y glicerol en el proceso. Es decir, la aplicación de estos organismos en el tratamiento de aguas</font> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">residuales, aumentaría la eficiencia de la remoción de grasas y aceites en estos sistemas, buscando reducir los problemas operativos mencionados anteriormente (Aceves, A. E. &amp; Castañeda, L.M., 2012) (Leal, Cammarota, Freire &amp; Sant Anna,</font> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">2002).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Con base a lo mencionado, se han realizado investigaciones donde se demuestra que la adición de microorganismos productores de lipasa, tienen un efecto positivo en la reducción de las concentraciones de grasas y aceites presentes en aguas residuales, esto en condiciones de pH que rondan la neutralidad (6, 7 y 8) en un rango de temperatura de 30 a 40 &deg;C; además de incidir sobre las concentraciones de DQO y DBO. A su vez, dicha eficiencia puede verse incrementada, ante el agregado de los microorganismos en conjunto con una solución mínima de sales suplementada con cloruro de calcio, siendo la presencia de este ion metálico un estimulante para la producción de la enzima (Wakelin, N.G. &amp; Forster, C.F., 1997) (Mongkolthanaruk, W. &amp; Dharmsthiti, S., 2002) (González, D. et al., 2012) (Bovio, P., 2013) (Huané &amp; Rivera, 2014) (Pazmiño, Y., 2016).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Por tanto, la utilización de microorganismos productores de lipasa capaces de reducir las concentraciones de grasas y aceites, se presenta como una alternativa de tratamiento viable, siempre que se le brinde las condiciones de crecimiento a los microorganismos de interés (Mendoza CLI citado en Huané &amp; Rivera, 2014). En este sentido, la utilización de microorganismos autóctonos, aislados de las mismas aguas residuales donde se implementará el tratamiento enzimático, ofrece mayores ventajas que la utilización de microorganismos ajenos al medio, debido al proceso de adaptación que estos deben realizar, para con las características y condiciones especiales que los efluentes presentan (Alcarraz, M. 2014).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Considerando lo mencionado previamente, el presente trabajo busca evaluar la eficiencia de la adición de tres bacterias productoras de lipasa, en la reducción de las concentraciones de grasas y aceites presentes en las aguas residuales de la industria aceitera de donde fueron aisladas.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"><b>2&nbsp; &nbsp; &nbsp; Materiales y método</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>2.1      Colección y mantenimiento de microorganismos evaluados</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Los microorganismos estudiados en este trabajo fueron 3 bacterias aisladas a partir de muestras de aguas residuales de una industria aceitera, las cuales fueron seleccionadas por poseer actividad lipolítica. El aislamiento de los microorganismos y la identificación, tanto de las bacterias como la actividad lipolítica de las mismas, constituye la realización del trabajo de Grado - Tesis de investigación realizado por Flores, A.L., (2019).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Dada las características de las pruebas de identificación realizadas y la especificidad necesaria para determinar a qué especie pertenecen las bacterias estudiadas, Flores, A.L., (2019) presume que las bacterias de referencia pertenecen a los géneros descritos en la <a href="#t1">tabla 1</a>.</font></p>     <p align="center"><a name="t1"></a><img src="/img/revistas/ran/v9n4/a09_tabla_01.gif" width="444" height="143"></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>2.2</b>&nbsp; &nbsp; &nbsp; <b>Confirmación de actividad lipolítica</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Para confirmar de manera cualitativa la actividad lipolítica de las cepas de referencia, se sembraron por duplicado en agar Tributirina, un compuesto oleoso de cadena corta (C<sub>4</sub> &lt; 10 átomos de carbono), dividiendo en dos el área de las placas, sembrando por estriado una mitad y formando 3 líneas paralelas en la otra. En placas diferentes, cada bacteria se sembró colocando de manera equidistante 4 discos de papel filtro estéril (diámetro 0,6 cm.) previamente sumergidos en suspensiones bacterianas con una turbidez similar al 0,5 en la escala de McFarland. Se observó el desarrollo de las bacterias y la presencia de halo de lipólisis formado a 35,5 &deg;C en un tiempo de 24 horas.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>2.3</b>&nbsp; &nbsp; &nbsp; <b>Prueba de antagonismo</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La evaluación se realizó el fin de observar si las bacterias de referencia tenían la capacidad de poder desarrollarse en un mismo medio, realizando la prueba de inhibición por sensi-discos (Pérez, R., González, T. &amp; Muñoz, J., 2015).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En cajas Petri con agar R2A se realizaron frotis de suspensiones de las bacterias estudiadas, colocando de manera equidistante entre sí, discos de papel filtro sumergidos previamente en la suspensión de cada bacteria estudiada, luego se llevó a incubar durante 24 horas a 35,5 &deg;C.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Se tomó como control el tamaño de las colonias en relación a un blanco, el cual fue sembrado en el mismo medio de cultivo (Agar R2A) sin la realización del frotis; y la presencia de un halo alrededor de la colonia a ser inhibida, lo que indicaría competencia o inhibición entre las bacterias sembradas. La colocación de las bacterias se realizó según lo detallado en la <a href="#t2">Tabla 2</a>.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="t2"></a><img src="/img/revistas/ran/v9n4/a09_tabla_02.gif" width="508" height="249"></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Según la codificación (X - Y), &quot;X&quot; representa el inhibidor (bacterias sembrada con el disco estéril) y &quot;Y&quot; representa la bacteria a ser inhibida (sembrada en frotis). Todos los tratamientos contaron con 4 reiteraciones, dando lugar a un total de 24 unidades experimentales, cada tratamiento con su respectivo par de blancos.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>2.4</b>&nbsp; &nbsp; &nbsp; <b>Prueba de respiración bacteriana</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Se realizó siembra por extensión en placa, por duplicado de las diluciones 10<sup>-2 </sup>y 10<sup>-3</sup> de las suspensiones de las bacterias de referencia (0,5 en la escala de McFarland), vertiendo 100 &#956;l de las mismas en placas Petri con Agar R2A, para luego cubrir la muestra con una capa de agar R2A, para limitar el libre contacto de oxígeno con los microorganismos de la muestra. Pasadas 24 horas a 35,5 &deg;C se observa el desarrollo del número de unidades formadoras de colonias (UFC), en relación al crecimiento presentado en un blanco, el cual fue sembrado mediante siembra por extensión.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>2.5</b>&nbsp; &nbsp; &nbsp; <b>Selección de compuesto regulador de pH menos agresivo</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Esta operación se realizó para observar cómo se comportaban las bacterias de referencia en un medio con un pH neutro, ligeramente ácido y ligeramente básico. Además de evaluar la influencia que 3 reguladores de pH (Bicarbonato de sodio, Carbonato de sodio e Hidróxido de sodio) tendrían sobre el desarrollo de la población bacteriana (Pazmiño, Y., 2016).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Se realizaron diluciones seriadas hasta la dilución 10<sup>-5</sup> de las bacterias de referencia, mismas que fueron sembradas en profundidad en agar R2A, cuyo pH fue regulado a un valor de 5 con ácido clorhídrico (HCl - 0,1 N), para luego elevar este valor según lo descrito en la <a href="#t3">Tabla 3</a> con soluciones al 5% de Bicarbonato de sodio (BS), Carbonato de sodio (CS) e Hidróxido de sodio (HS); se llevó a incubación por 24 horas a 35,5 &deg;C, para realizar el conteo de las unidades formadoras de colonias (UFC), pasado el tiempo de incubación.</font></p>     <p align="center"><a name="t3"></a><img src="/img/revistas/ran/v9n4/a09_tabla_03.gif" width="480" height="231"></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Cada tratamiento se repitió una vez por cada bacteria, realizando la siembra de las mismas hasta la dilución 10<sup>-5</sup> con 2 reiteraciones de cada tratamiento.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>2.6&nbsp; &nbsp; &nbsp;Determinación de las condiciones óptimas para actividad lipolítica</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Se estimó la producción de enzimas lipasa mediante la titulación de la muestra con NaOH (0,05 N) en presencia del indicador fenolftaleína, lo que provoca el cambio de un pH neutro o ligeramente acido a uno básico (Tembhurkar, V.R., Kulkarm, M.B. &amp; Peshwe, S.A., 2012).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En 9 ml de caldo Luria Bertani (LB) suplementado con aceite de oliva (1%) como fuente de carbono principal, medio de cultivo previamente esterilizado, se añadió 1 ml de medio mínimo mineral estéril ((KH<sub>2</sub>PO<sub>4</sub>— 0.6 mg.ml<sup>-1</sup><i>; </i>MgSO<sub>4</sub> — 40 &#956;g.ml<sup>-1</sup>; Na<sub>2</sub>HPO<sub>4</sub> -1.5 mg.ml<sup>-1</sup><i>; </i>FeSO<sub>4</sub> - 4 &#956;g.ml<sup>-1</sup>), combinación en la que se agregó los tratamientos señalados en la <a href="#t4">tabla 4</a>. Para luego incubar las muestras durante 3 días y proceder a neutralizar la actividad enzimática de las mismas, al combinar la muestra incubada con alcohol del 96% en una relación 1:1. Posteriormente se tituló la muestra con NaOH al 0,05 N en presencia de fenolftaleína (0,5%), señalando como punto final de la reacción el viraje de color a rosado de la muestra por más de 30 segundos, midiendo el pH final después de la titulación; como segundo testigo. Todos los tratamientos se realizaron considerando 3 reiteraciones</font></p>     <p align="center"><a name="t4"></a><img src="/img/revistas/ran/v9n4/a09_tabla_04.gif" width="577" height="512"></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><a name="t5"></a><img src="/img/revistas/ran/v9n4/a09_tabla_05.gif" width="601" height="281"></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Después de conocer el volumen de NaOH necesario para neutralizar la muestra, con los valores obtenidos de la misma (volumen y normalidad del NaOH), se procede a calcular la cantidad de enzima producida en cada unidad experimental. Definiendo una unidad de lipasa, como la cantidad de lipasa requerida para liberar una &mu;M de ácido graso por unidad de tiempo (una hora) bajo las condiciones de ensayo.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>2.7&nbsp; &nbsp; &nbsp;Evaluación aplicada de la eficiencia de degradación G/A</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Se evaluó si las combinaciones seleccionadas en las fases anteriores en conjunto con la aireación, tienen incidencia sobre las concentraciones de grasas y aceites (G/A) de una muestra de agua residual procedente de la industria aceitera de donde fueron aisladas las bacterias de referencia.</font></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/ran/v9n4/a09_tabla_06.gif" width="550" height="131"></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Se preparó el inóculo bacteriano con base a los mejores resultados obtenidos en el punto 2.6., siguiendo la relación descrita en la <a href="#t7">Tabla 7</a>, incubando el preparado por 24 horas, para luego agregar dicho preparado según lo detallado en la <a href="#t8">Tabla 8</a>.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="t7"></a><img src="/img/revistas/ran/v9n4/a09_tabla_07.gif" width="338" height="309"></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Se tomaron en consideración 4 tratamientos, seleccionados en relación al resultado en conjunto de las pruebas mencionadas anteriormente; cada tratamiento contó con 3 duplicados, dando un total de 12 unidades experimentales, cada una con 500 ml de agua residual de industria aceitera, cuyo pH fue regulado a un valor de 7 según los resultados obtenidos en el punto 2.5.; Todas las unidades experimentales se mantuvieron a temperatura ambiente, durante un periodo de incubación de 15 días, con aireación asistida a razón de un caudal de 3 L/min, para realizar la medición</font> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">de las concentraciones de grasas y aceites mediante destilación por rotavapor, luego del periodo de incubación.</font></p>     <p align="center"><a name="t8"></a><img src="/img/revistas/ran/v9n4/a09_tabla_08.gif" width="511" height="163"></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Donde:</font></p>     <blockquote>       <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>C1:</b> <i>Pseudomona </i>Sp. - Corynebacterium Sp. (IB2,5%-CC5%) </font></p>       <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>C2:</b> <i>Pseudomona </i>Sp. (IB2,5%-CC5%)</font></p> </blockquote>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>2.8&nbsp; &nbsp; &nbsp;Evaluación de resultados</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Para el análisis estadístico de las pruebas: Selección de compuesto regulador de pH menos agresivo y Determinación de las condiciones óptimas para actividad lipolítica se utilizó el diseño de bloques completamente aleatorizados con prueba Duncan para las comparaciones múltiples, luego de confirmar el normal comportamiento de los datos. Para el resto de las pruebas se realizó el análisis de varianza (ANOVA) de un factor, sometiendo los datos de dichas evaluaciones a la prueba estadística de Tukey, considerando una significativa estadística hasta el 5% de probabilidad para todas las pruebas. El análisis se realizó mediante el programa IBM SPSS Statistics 21.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"><b>3&nbsp; &nbsp; &nbsp; Resultados</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>3.1&nbsp; &nbsp; &nbsp;Confirmación de actividad lipolítica</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La técnica de siembra mediante estrías pudo comprobar que las bacterias estudiadas tienen la capacidad de desarrollarse y crecer en un medio suplementado con un sustrato específico como lo es la Tributirina.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La prueba en sensi-discos señala que las bacterias del género <i>Pseudomona </i>Sp. sembradas en el agar Tributirina, son las que presentan la mayor diferencia de tamaño respecto a sus pares sembrados en agar R2A, siendo las bacterias del genero <i>Bacillus </i>Sp., aquellas cuyos datos presentan un comportamiento anormal, presentando valores negativos lo que indica que en el agar de prueba tubo un mayor crecimiento que su respectivo blanco.</font></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/ran/v9n4/a09_tabla_09.gif" width="420" height="163"></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">A su vez, la prueba de sensi-discos señaló que la Pseudomona Sp. es la única de las cepas estudiadas con capacidad de hidrolizar la tributirina, dado que esta bacteria fue la única que presento halo de aclaración alrededor de la colonia.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>3.2&nbsp; &nbsp; &nbsp;Prueba de antagonismo</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La bacteria del género <i>Corynebaterium </i>Sp. (representada como C) es la bacteria con mayor resistencia al desarrollo de sus pares bacterianos (<i>Pseudomona Sp. </i>y <i>Bacillus Sp.</i>) con las que fue sembrada, en contraste con las bacterias del género <i>Bacillus </i>Sp. (representada como B) la cual es fuertemente inhibida, principalmente por la <i>Pseudomona Sp. </i>(representada como A).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">A su vez, se observa que las bacterias de referencia tienen la capacidad de crecer en un mismo medio. Sin embargo, las combinaciones B-A (<i>Bacillus </i>Sp. - <i>Pseudomona </i>Sp.) y C-B (<i>Corynebacterium </i>Sp. - <i>Bacillus </i>Sp.) presentan halos de inhibición, característica no observada en sus contrapartes (A-B y B-C).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El tratamiento con código A-B (<i>Pseudomona </i>Sp. - <i>Bacillus </i>Sp.) resulta ser aquella con un mayor porcentaje de inhibición, comportándose de manera opuesta a su contraparte B-A (<i>Bacillus </i>Sp. — <i>Pseudomona </i>Sp.), la cual presenta un porcentaje de inhibición similar a la combinación C-A (<i>Corynebacterium </i>Sp. — <i>Pseudomona </i>Sp.).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><img src="/img/revistas/ran/v9n4/a09_tabla_10.gif" width="419" height="236"></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Donde:</font></p>     <blockquote>       <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>COD: </b>Combinación bacteriana </font></p>       <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>HALO: </b>Halo de inhibición</font></p>       <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>CS:</b> Crecimiento Simultaneo </font></p>       <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>%:</b> Porcentaje de Inhibición</font></p> </blockquote>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>3.3&nbsp; &nbsp; &nbsp;Prueba de respiración bacteriana</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Cuantificando el crecimiento de las Unidades Formadoras de Colonias (UFC/ml) nos damos cuenta que las bacterias de referencia (<i>Pseudomonas </i>Sp., <i>Bacillus </i>Sp. y <i>Corynebacterium </i>Sp.) si pueden desarrollarse en un medio con poco oxígeno, aunque la falta de éste, tiene incidencia en el crecimiento de la población bacteriana.</font></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/ran/v9n4/a09_tabla_11.gif" width="465" height="246"></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Donde:</font></p>     <blockquote>       <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>COND: </b>Condición</font></p>       <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>MC:</b> Microaerobia</font></p>       <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>AE:</b> Aerobia</font></p>       <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>CREC:</b> Crecimiento bacteriano</font></p> </blockquote>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En este sentido, el grado de incidencia de la presencia de oxigeno sobre las bacterias de referencia, en relación al blanco sembrado en condiciones normales, se presenta de menor a mayor grado en el siguiente orden:</font></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/ran/v9n4/a09_ecuacion_00.gif" width="569" height="25"></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>3.4&nbsp; &nbsp; &nbsp;Selección de compuesto regulador de pH menos agresivo</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Las varianzas del crecimiento bacteriano considerando solo el efecto de los tratamientos (<a href="#t12">Tabla 12</a>), son significativamente iguales. Sin embargo, se seleccionó al carbonato de sodio en la combinación PH7CS (pH 7 con carbonato de sodio) como el tratamiento a aplicar en la &quot;Evaluación aplicada de la eficiencia de degradación de G/A&quot;, toda vez que dicha combinación presenta el mayor crecimiento bacteriano (UFC/ml) de las bacterias de referencia a un pH neutro, seguido del pH 6.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="t12"></a><img src="/img/revistas/ran/v9n4/a09_tabla_12.gif" width="447" height="364"></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">&quot;Se muestran las medias de los grupos de subconjuntos homogéneos.</font></p>     <blockquote>       <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Basadas en las medias observadas.</font></p>       <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El término de error es la media cuadrática</font></p>       <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">(Error) = 19862957870370,360.&quot;</font></p>       <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">a.&nbsp;Usa el tamaño muestral de la media armónica = 3,000</font></p>       <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">b.&nbsp;Alfa = 0,05.</font></p> </blockquote>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Respecto al crecimiento bacteriano considerando los bloques, la bacteria del género <i>Pseudomona </i>Sp., cuya media es significativamente diferente de sus pares bacterianos, es el microorganismo con mayor crecimiento (2,49E+07 UFC/ml), siendo este mucho mayor que el crecimiento presentado por las bacterias <i>Bacillus Sp. </i>(5,26E+05 UFC/ml) y <i>Corynebacterium </i>Sp. (4,23E+05 UFC/ml) respectivamente, debiendo señalar que las medias de estas últimas no son significativamente diferentes.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>3.5&nbsp; &nbsp; &nbsp;Determinación de las condiciones óptimas para actividad lipolítica</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La mayor producción de enzima a nivel de tratamiento proviene de la combinación IB2,5%CC5% (4,291 E-06 &#956;M), seguido de la combinación IB1%CC2,5% (3,953 E-06 &#956;M) y IB5%CC2,5% (3,559 E-06 &#956;M) respectivamente, observando que el porcentaje de inoculo agregado, por sí solo no tiene gran incidencia en la producción de la lipasa, dado que las combinaciones que presentan los valores de producción más altos, presentan concentraciones diferentes, sin mantener la hegemonía de una en particular. Lo que da a entender que la producción de enzima si se ve fomentado por la presencia de iones de calcio en el medio, puesto que se observa que las combinaciones que presentan mayor producción de lipasa, son las que cuentan con mayor porcentaje de cloruro de calcio.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Por otra parte, se hace mención que se consideraron las combinaciones de Pseudomona Sp. - Corynebacterium Sp. y Bacillus Sp. - Corynebacterium Sp., toda vez que dichas combinaciones demostraron poder crecer sin inhibirse.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En este sentido, la mayor producción de enzima se observa en la combinación <i>Pseudomona </i>Sp. - <i>Corynebacterium </i>Sp. (4,901E-06 &#956;M), seguido del bloque formado solo por la <i>Pseudomona Sp. </i>(3,794 E-06 &#956;M), pudiendo afirmar que la bacteria con mayor actividad lipolítica, es la bacteria <i>Pseudomona Sp.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Según lo expuesto previamente, se seleccionó la combinación IB2,5%CC5% (Inóculo bacteriano 2,5% y Cloruro de calcio 5%) como la combinación a ser implementada en la evaluación aplicada del tratamiento enzimático; trabajando a la par con las combinaciones bacterianas mencionadas previamente.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>3.6&nbsp; &nbsp; &nbsp;Evaluación aplicada de la eficiencia de degradación de grasas/aceites</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Como se observa en los datos registrados de la evaluación de G/A, los tratamientos que involucran la implementación del consorcio bacteriano <i>Pseudomona Sp. </i>y<i> Corynebacterium Sp. </i>presentan concentraciones de G/A mucho menores que el tratamiento formado únicamente por la <i>Pseudomona Sp.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En este sentido, las unidades experimentales con aireación poseen concentraciones de G/A menores que el blanco, siendo más evidente en el tratamiento P-C-CA, el cual presenta una concentración de 34 mg/l, equivalente a un 21,25% de la concentración inicial (78,75% eficiencia), mucho mayor que la combinación P-CA, la cual muestra una concentración de 124,67 mg/l, equivalente a un 22,08% de eficiencia. Por otro lado, los tratamientos sin aireación presentan concentraciones de G/A mayores al blanco; en el caso del tratamiento P-SA, casi triplica la concentración del blanco, observando una situación similar con el tratamiento P-C-SA.</font></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/ran/v9n4/a09_tabla_13.gif" width="499" height="237"></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Donde:</font></p>     <blockquote>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>BLANCO: </b>Muestra sin tratamiento</font></p>       <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>P-C-CA: </b><i>Pseudomona Sp. </i>— <i>Corynebacterium </i>Sp. — Con Aireación</font></p>       <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>P-CA: </b><i>Pseudomona Sp. </i>— Con Aireación</font></p>       <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>P-C-SA: </b><i>Pseudomona Sp. </i>— <i>Corynebacterium </i>Sp. — Sin Aireación</font></p>       <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>P-SA: </b><i>Pseudomona Sp. </i>— <i>Sin </i>Aireación</font></p>       <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>G/A:</b> Grasas y Aceites</font></p> </blockquote>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El tratamiento de mayor eficiencia (P-C-CA) fue replicado para ser evaluado por un tercero, el cual fue la &quot;Unidad Técnica de Apoyo a los Laboratorios - UTALAB&quot;, laboratorio que indica que las muestras presentadas poseen características señaladas en la <a href="#t14">tabla 14</a>.</font></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/ran/v9n4/a09_tabla_14.gif" width="501" height="155"></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Donde:</font></p>     <blockquote>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>BLANCO: </b>Muestra sin tratamiento</font></p>       <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>P-C-CA: </b><i>Pseudomona Sp. </i>— <i>Corynebacterium </i>Sp. — Con Aireación</font></p>       <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>G/A:</b> Grasas y Aceites</font></p> </blockquote>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"><b>4&nbsp; &nbsp; &nbsp; Discusión de resultados</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>4.1&nbsp; &nbsp; &nbsp; Confirmación de actividad lipolítica</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En lo referente a la formación de halos de degradación como prueba de la hidrólisis de tributirina (<a href="#t10">Tabla 10</a>), el presente estudio no concuerda con lo afirmado por: Lizano, O., (2012); Antúnes, M.(2015); Alcarraz, M., (2014); Rodas, M. &amp; Botello, S., (2016); Otalora, et al., (2000) y Pedroza, et al.,(2017), autores que señalan que pese a la tributirina no ser un medio o suplemento específico para la prueba de hidrólisis por parte de las lipasas, esta es capaz de degradarla formando halos de degradación junto a las colonias formadas, resultado no visto en la realización de las pruebas del presente estudio, salvo el caso de la <i>Pseudomona Sp., </i>lo que incita a intuir que las enzimas (Lipasa) producidas por estas bacterias presentan en cierto porcentaje, afinidad por los sustratos oleicos de cadena corta como la Tributirina.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Por otro lado, la presencia negativa de halos en la siembra de las bacterias del género <i>Bacillus Sp. </i>y <i>Corynebacterium </i>Sp., no significa que éstas no poseen actividad lipolítica, siendo esta una prueba no excluyente.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En lo que se refiere a la incidencia del medio en el tamaño de las colonias, se nota que en todos los casos, el porcentaje de inhibición no excede el 50% (<a href="#t9">Tabla 9</a>); siendo la <i>Pseudomona Sp. </i>(41,77%) las bacterias cuyo crecimiento se vio mayor reducido, seguido del <i>Corynebacterium Sp. </i>(26,47%) y el <i>Bacillus Sp. </i>(-17,58%), quien presenta un valor negativo, bajo el entendido que en el Agar Tributirina estas presentaron un crecimiento mayor que en el agar R2A, pudiéndose entender que el sustrato oleico (Tributirina) estimula el crecimiento de las colonias de esta bacteria en particular, resultado que guarda relación con lo revisado en literatura (Pazmiño, 2016) (Rodas, M. &amp; Botello, S., 2016) (Pedroza, et al., 2017).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>4.2</b>&nbsp; &nbsp; &nbsp; <b>Prueba de antagonismo</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Si bien la técnica utilizada en este trabajo (Detección de inhibición por sensi-discos) es realizada comúnmente en ensayos inmunológicos, para determinar el efecto antagónico entre dos especies microbianas; debido a que se logra visualizar en un medio sólido la actividad productora de metabolitos tóxicos de una cepa antagónica hacia la que es sensible, esta técnica representa ser la adecuada para poder evaluar esta actividad (Pérez, R., González, T. &amp; Muñoz, J., 2015).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Con base a lo expuesto, se observó que las bacterias de referencia pueden desarrollarse juntas, sin embargo, las combinaciones B-A y C-B, llegarían a competir por el alimento existiendo diferencia de tamaño entre las colonias evaluadas y sus respectivos blancos.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Respecto a las combinaciones A-B y B-C, no se observa la formación de halo, pero el porcentaje de inhibición del tamaño de la colonia formada por la primera</font> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">combinación (A-B) es mayor al 70%, lo que indica una alta competitividad entre las bacterias; al contrario de la segunda combinación (B-C), la cual presenta la menor diferencia de tamaños entre las colonias evaluadas y sus respectivos blancos. Respecto a las combinaciones A-C y C-A, estas no presentan la formación de halo y el porcentaje de inhibición se mantiene al margen del 50% en el caso de la segunda combinación (C-A); por su parte la primera combinación (A-C) presenta el segundo porcentaje de inhibición más bajo (39,22%).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Según lo descrito anteriormente, se seleccionó para la ejecución de las pruebas de &quot;Determinación de las condiciones óptimas para actividad lipolítica&quot; a las combinaciones que representan a las bacterias <i>Pseudomona </i>Sp. en conjunto con <i>Corynebacterium </i>Sp. (A-C y C-A) y <i>Bacillus </i>Sp. en conjunto con <i>Corynebacterium </i>Sp. (B-C y C-B), en vista de que en la primera combinación no se observa la formación de halo de inhibición, además de presentar un crecimiento bacteriano al margen del 50% en relación al blanco, en el caso de la composición C-A; y la segunda combinación, debido a que el porcentaje de inhibición de la composición C-B se mantiene al 57% pese a observar la presencia de un halo de inhibición, además de que la composición B-C es la que posee el menor porcentaje de inhibición.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Respecto a la composición de los consorcios bacterianos, autores como Otalora, et al., (2000) y González, D. et al. (2012), muestran en sus trabajos inóculos formados por bacterias del genero <i>Pseudomonas </i>Sp. y <i>Bacillus </i>Sp. señalando que dichas combinaciones presentan eficiencias de degradación de G/A muy aceptables. Sin embargo, los resultados de la prueba de antagonismo realizados en este trabajo no viabilizan la formación de un inóculo bacteriano formado por estas bacterias, debido a que la bacteria <i>Pseudomona Sp. </i>del presente estudio resulta agresiva al crecimiento de la bacteria <i>Bacillus Sp.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>4.3</b>&nbsp; &nbsp; &nbsp; <b>Prueba de respiración bacteriana</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">De las pruebas de respiración microaerobia, se concluyendo que las bacterias del género <i>Pseudomonas </i>Sp., son las más resistentes a la falta de oxígeno en relación a sus pares bacterianos. Presentando una resistencia mayor a la presentada por el <i>Bacillus </i>Sp. y el <i>Corynebacterium </i>Sp., microorganismos que según literatura deberían poseer mayor resistencia que la <i>Pseudomona </i>Sp. a la falta de oxígeno.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>4.4</b>&nbsp; &nbsp; &nbsp; <b>Selección de compuesto regulador de pH menos agresivo</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Respecto a la preparación del agar R2A, los valores de pH inicial del medio, el volumen de ácido clorhídrico (HCl) y el pH del medio posterior a la titulación con ácido, los pH de prueba (6,7 y 8) también presentan un comportamiento normal.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Con base a las pruebas realizadas, se señala al bicarbonato de sodio como una sal agresiva sobre el crecimiento de las bacterias de referencia, resultado opuesto a lo</font> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">observado por Pazmiño, Y., (2016), autor que indica que esta sal es el compuesto menos agresivo para el desarrollo de las bacterias lipolíticas, en relación al carbonato de sodio, compuesto que si inhibió el crecimiento de las bacterias lipolíticas evaluadas por este autor.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Respecto a la influencia del hidróxido de sodio, el efecto de este compuesto a un pH 8 (PH8HS) es el menor comparado con los crecimientos dados en los tratamientos PH8CS y PH8BS, lo que puede deberse al volumen de compuesto utilizado al momento de regular el pH del medio donde se efectuó la siembra, puesto que dicho volumen fue de 0,56 ml mientras que en los tratamientos PH8CS y PH8BS, fue de 1,71 ml y 9,06 ml respectivamente, pudiendo notar que a pesar de lo afirmado por Pazmiño, Y., (2016), el bicarbonato de sodio en volúmenes altos inhibe el crecimiento de las bacterias lipolíticas en un grado mayor que los otros reguladores evaluados, a pesar de su agresividad (hidróxido de sodio).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>4.5&nbsp; &nbsp; &nbsp;Determinación de las condiciones óptimas para actividad lipolítica</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Respecto a la concentración de inoculo bacteriano, esta no presenta algún patrón de significancia sobre la producción de lipasa, ya que los tratamientos de mayor producción no abarcan una sola de las concentraciones evaluadas (1%, 2,5% y 5%).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Las pruebas de producción de enzima, demuestran que la presencia del ion calcio (Ca+2), estimula la producción de lipasa, toda vez que los tratamientos IB5%CC0%, IB1%CCO% y IB2,5%CC0%, donde no se añadió cloruro de calcio presentan los porcentajes de producción más bajos (32,6%, 39,5% y 44,2% respectivamente) en comparación a los tratamientos donde se añadió la sal en cuestión, conociendo que el tratamiento IB2,5%CC5% (4,3 E-06) es la combinación más eficiente..</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En referencia a los resultados observados, autores como Syed, M.N., et al., (2010), Khan, M. &amp; Jithesh, K., (2012), Zouaoui y Bouziane (2012), Matsumae, H. &amp; Shibatani, T., (2017), indican que la actividad enzimática de la lipasa aumenta en presencia de iones de calcio. Por lo dicho, Rasmey, et al., (2017) menciona que el efecto de iones metálicos sobre la actividad de la enzima, puede deberse a un cambio en la solubilidad y el comportamiento de los ácidos grasos ionizados en las interfaces, o el cambio en la propiedades catalíticas de la propia enzima.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Valorando las consideraciones anteriores es que Mongkolthanaruk, W. &amp; Dharmsthiti, S., (2002), lograron mejorar el rendimiento de su inoculo bacteriano (<i>Pseudomonas aeruginosa </i>LP 602, <i>Bacillus </i>sp. B 304 y <i>Acinetobacter calcoaceticus </i>LP 009), reduciendo así el tiempo de tratamiento de sus muestras de aguas residuales ricas en lípidos a 12 días bajo condiciones aerobias, con solo incrementar la composición de algunas sales minerales en una mezcla a la que llamó solución basal de sales.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Otro factor importante a considerar en la producción de enzimas, es la cantidad de inóculo necesaria para lograr una producción óptima, de modo que ésta no se vea</font> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">afectada por factores presentes en el medio, tales como: concentraciones elevadas de compuestos lipídicos (saturan sitio activo de la enzima) o la presencia de metales pesados o detergentes bacterianos (inhiben o eliminan tanto a la enzima como a los microorganismos productores).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Dando lectura a Huané &amp; Rivera (2014), determinaron que en relación a la concentración o cantidad de inóculo que se emplea, se tiene resultados similares para la actividad de la enzima; declarando que dicho suceso puede deberse al rápido consumo de los nutrientes por parte de un inoculo de mayor concentración bacteriana, lo que acelera la llegada de la fase de muerte bacteriana y por consiguiente la disminución de la actividad enzimática, al contrario de un inoculo de baja concentración, el cual mantiene un crecimiento bacteriano por un periodo de tiempo más largo.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>4.6&nbsp; &nbsp; &nbsp;Evaluación aplicada de la eficiencia de degradación de grasas/aceites</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">De las lecturas de pH realizadas a las muestras después del periodo de tratamiento, se observa que las combinaciones formadas por el consorcio <i>Pseudomona Sp. </i>— <i>Corynebacterium Sp. </i>(P-C-AI y P-C-AN) presentan un aumento en el pH desde el neutro hasta 8 &plusmn;03, independientemente de que se hubiera añadido aireación a la muestra, manteniéndose constante el pH de los tratamientos que solo trabajan con la bacteria <i>Pseudomona Sp. </i>(P-AI y P-AN); por lo que se deduce que las muestras donde se agregaron los consorcios (P-C-AI y P-C-AN) presentan mayor concentración de ácidos grasos en relación a los tratamientos donde solo trabaja la <i>Pseudomona Sp.</i></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Respecto a los tratamientos que sufren un aumento de las concentraciones de G/A, Otalora, et al., (2000), autor que evaluó la eficiencia de un consorcio conformado por 6 cepas bacterianas, observó resultados positivos a 8 y 15 días de tratamiento, mientras que al día 30 observó un incremento en las concentraciones de</font> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">G/A.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En este sentido, se puede atribuir este efecto a la síntesis de triglicéridos a partir de la materia orgánica o ácidos grasos por parte de la lipasa, una vez que los microorganismos degradan las G/A libres que se encuentran en el medio; esto gracias a la capacidad de la enzima de poder catalizar reacciones de transesterificación, reacción de sintetiza triglicéridos a partir de ácidos grasos o materia orgánica.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Por otro lado, González, D. et al. (2012), demostró que la utilización de un consorcio bacteriano fue efectivo en eliminar el 90 % del volumen de residuos grasos y olores desagradables de trampas de grasa; eficiencias cercana a las obtenidas por el tratamiento P-C-CA (78,75% de degradación), el cual presenta una concentración de grasas/aceites de 34 mg/l sin presentar olores desagradables.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Por tanto, basado en González, D. et al. (2012), se reafirma la idea de que la aireación favorece la degradación de las grasas y aceites en la muestras de agua, a la par que facilita la eliminación de malos olores, mismos que fueron advertidos en los tratamientos sin aireación.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Considerando la competitividad entre bacterias, por el sustrato o los recursos necesarios para la realización de sus funciones vitales, Fadile, A., et al., (2011), observó que microorganismos adaptados a las condiciones de las aguas residuales permitieron una tasa de reducción de 84.28% y 93.3% de las concentraciones de DQO y G/A respectivamente, contra eficiencias de 51.88% y 66.6%, obtenidas por un consorcio no adaptado; revelando la importancia de trabajar con un consorcio bacteriano adaptado, puesto que su implementación en las aguas residuales procedentes de restaurantes dio resultados satisfactorios, registrando una eliminación del 83,3% de la DQO y del 81% de las grasas/aceites.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"><b>5&nbsp; &nbsp; &nbsp; Conclusión</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La investigación logró determinar que la implementación de bacterias autóctonas, como lo son las bacterias de referencia del presente estudio (<i>Pseudomona Sp — Bacillus Sp. — Corynebacterium Sp</i>), como tratamiento en la degradación de G/A, presenta eficiencias positivas sobre la degradación de estos compuestos presentes en las unidades experimentales evaluadas. Demostrando que la bacteria que posee mayor actividad enzimática (lipolítica) es la <i>P. aeruginosa, </i>seguida del <i>B. coagulans </i>y el <i>C. aquaticum.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Por lo descrito, las pruebas realizadas en el presente trabajo concluyen lo siguiente:</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Se evidenció que las bacterias de referencia se desarrollan mejor a un pH de 7, siendo el carbonato de sodio el regulador de pH menos agresivo al crecimiento bacteriano, toda vez que la <i>P. aeruginosa </i>es la bacteria que presenta mayor resistencia a dicho compuesto, seguido del <i>B. coagulans </i>y el <i>C. aquaticum; </i>respecto a la incidencia de la falta de oxígeno sobre el desarrollo de la población bacteriana, este factor incide en mayor porcentaje sobre el <i>B. coagulans </i>(99,71%), seguido del <i>C. aquaticum </i>(98,43%) y la <i>P. aeruginosa </i>(66,67%). Por su parte, el agar tributirina incide en cierto porcentaje en el crecimiento de las bacterias estudiadas, a excepción del <i>B. coagulans </i>cuyo crecimiento se ve favorecido por la presencia del sustrato tributirina; y la prueba de antagonismo señala que la formación de un consorcio bacteriano solo es posible ante la combinación de <i>P. aeruginosa </i>en conjunto con <i>C. aquaticum </i>y <i>B. coagulans </i>en conjunto con el <i>C. aquaticum, </i>debido a que la <i>P.</i> <i>aeruginosa </i>inhibe el crecimiento del <i>Bacillus.</i></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La actividad enzimática que muestran las bacterias de referencia y las combinaciones de estas (<i>P. aeruginosa - C. aquaticum </i>y <i>B. coagulans - C. aquaticum</i>), se ve estimulada ante la presencia de iones de calcio (Ca<sup>2+</sup>), observando que la combinación IB2,5%CC5% es el tratamiento que favorece en mayor medida la producción de enzima por parte del consorcio <i>P. aeruginosa -C. aquaticum </i>(4,901E-06 &#956;M) y la de la bacteria <i>P. aeruginosa </i>(3,794E-06 &#956;M), siendo estas las combinaciones con mayor actividad enzimática, tras 72 horas de incubación.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El consorcio <i>P. aeruginosa - C. aquaticum </i>en conjunto con el tratamiento IB2,5%CC5%, demostró ser la combinación de mayor rendimiento respecto a la degradación de las grasas/aceites, disminuyendo la presencia de estos compuestos de una concentración de 160 mg/l a 34 mg/l tras 15 días de tratamiento en condiciones aerobias; resultado que exhibe gran diferencia respecto a la eficiencia presentada por la bacteria <i>P. aeruginosa </i>(124,67 mg/1) implementada en las mismas condiciones.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"><b>6&nbsp; &nbsp; &nbsp; Recomendaciones</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">•&nbsp; &nbsp; Diseñar un sistema de tratamiento adecuado a las necesidades de las bacterias estudiadas.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">•&nbsp; &nbsp; Evaluar la eficiencia de las bacterias de referencia probando cambiar las concentraciones y/o composición del medio mineral utilizado en este trabajo.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">•&nbsp; &nbsp; Evaluar la implementación conjunta de las combinaciones propuestas en este trabajo, con sales de cobre en el tratamiento de efluentes grasos, toda vez que se observa que esta sal no reacciona con compuestos lipídicos favoreciendo la precipitación de la materia suspendida o disuelta en el agua.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"><b>Referencias Bibliográficas</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">[1] Aceves, A. E.  &amp; Casta&ntilde;eda, L.M., (2012). Producci&oacute;n biotecnol&oacute;gica de lipasas  microbianas, una alternativa sostenible para la utilizaci&oacute;n de residuos  agroindustriales. <i>Revista de la Facultad De Qu&iacute;mica Farmac&eacute;utica - Vitae, 19</i>(3),  244-247. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=806362&pid=S1683-0789202000010000900001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">[2] Alcarraz, M.  (2014). Evaluaci&oacute;n de la actividad proteol&iacute;tica y lipol&iacute;tica de cepas para el  tratamiento de efluentes de curtiembre. <i>Revista de la Facultad de Ingenier&iacute;a  Industrial. 17</i>(1), 65-70. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=806363&pid=S1683-0789202000010000900002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">[3] Ant&uacute;nes, M.  (2015). Contribuci&oacute;n al estudio del sistema de Lipasas de <i>Trichoderma  harzianum </i>(Memoria presentada para optar al grado de Doctor en  Microbiolog&iacute;a y Gen&eacute;tica), Universidad de Salamanca, Espa&ntilde;a. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=806364&pid=S1683-0789202000010000900003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">[4]  Bovio, P. (2013). <i>Efecto  del agregado de suplementos enzim&aacute;ticos en la comunidad microbiana de reactores  metanog&eacute;nicos de tratamiento de efluentes de industria l&aacute;ctea </i>(Tesis de  Grado de la Licenciatura en Bioqu&iacute;mica). Universidad de la Republica, Uruguay. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=806365&pid=S1683-0789202000010000900004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">[5] Fadile, A., Zahra, F., Hassani, Aissam, H.,  Merzouki, M. &amp; Benlemlih, M. (2011). Aerobic  treatment of lipid-rich wastewater by a bacterial consortium, <i>African  Journal of Microbiology Research</i>, 5(30), 5333-5342, Doi:  <a href="https://doi.org/10.5897/AJMR11.700" target="_blank">10.5897/AJMR11.700</a>. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=806366&pid=S1683-0789202000010000900005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">[6] Flores, A.L. (2019). <i>Aislamiento e  identificaci&oacute;n de microorganismos con actividad lipol&iacute;tica en aguas residuales  de una industria aceitera </i>(Tesis de Grado para optar al t&iacute;tulo de Ingeniera  Ambiental). Universidad Aut&oacute;noma Gabriel Ren&eacute; Moreno (U.A.G.R.M.), Santa cruz &ndash;  Bolivia. </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">[7] Gonz&aacute;lez, D., Ama&iacute;z, L., Medina, L., Vargas, R.,  Izzeddin, N. &amp; Valbuena, O. (2012). Biodegradaci&oacute;n de residuo graso  industrial empleando bacterias end&oacute;genas. <i>Rev</i>ista <i>Latinoamericana de  Biotecnolog&iacute;a Ambiental y Algal, 3</i>(2), 105-118. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=806368&pid=S1683-0789202000010000900007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">[8] Huan&eacute;, J. &amp; Rivera, R. (2014). <i>Evaluaci&oacute;n  de la adici&oacute;n de un in&oacute;culo para estimular a escala de laboratorio la  biodegradaci&oacute;n de efluentes grasos </i>(Tesis para optar al t&iacute;tulo profesional  de Qu&iacute;mico Farmac&eacute;utico). Universidad Nacional Mayor de San Marcos, Per&uacute;. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=806369&pid=S1683-0789202000010000900008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">[9] Khan, M. &amp; Jithesh, K., (2012). Expresi&oacute;n y  purificaci&oacute;n de la lipasa estable a los disolventes org&aacute;nicos de la biblioteca  metagen&oacute;mica del suelo. <i>World J Microbiol  Biotechnology</i>, 28(6),  2417&ndash;2424,DOI: <a href="https://doi.org/10.1007/s11274-012-1051-0" target="_blank">doi.org/10.1007/s11274-012-1051-0</a> </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">[10] Leal,  Cammarota, Freire &amp; Sant Anna Jr. (2002). Enzimas hidrol&iacute;ticas como coajuvantes en  el tratamiento anaer&oacute;bico de las aguas residuales de leche. <i>Revista  Brasile&ntilde;a de Ingenier&iacute;a Qu&iacute;mica, 19</i>(2), 1678-4383. </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">[11] Lizano, O. 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Purificaci&oacute;n y caracterizaci&oacute;n de la lipasa de Serratia marcescens Sr41 8000  responsable de la hidr&oacute;lisis asim&eacute;trica de los &eacute;steres del &aacute;cido  3-fenilglic&iacute;dico. <i>Revista de Fermentaci&oacute;n y Bioingenier&iacute;a &ndash; El SEVIER</i>,  77(2), 152-158. DOI: <a href="https://doi.org/10.1016/0922-338X(94)90315-8" target="_blank">doi.org/10.1016/0922-338X(94)90315-8</a>. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">[13]  Mongkolthanaruk, W. &amp;  Dharmsthiti, S. (2002). Biodegradaci&oacute;n de aguas residuales ricas en l&iacute;pidos por  un consorcio bacteriano mixto<i>. Revista de Tecnolog&iacute;a Bioambiental &ndash; EL  SEVIER, 50</i>(2), 101-105. </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">[14] Otalora, M.F., Pe&ntilde;a, J. L., Mart&iacute;nez, M. M.  &amp; Varela, A. (2000). 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Actividad hidrol&iacute;tica de aislados bacterianos con potencial  aplicaci&oacute;n en el tratamiento de efluentes de frigor&iacute;fico. <i>Revista colombiana  de ciencia animal, </i>8(1), 37-43. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=806380&pid=S1683-0789202000010000900019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">[20] Syed, M.N., Iqbal, S., Bano, S., Khan, A.B.,  Ali-ul-Qader, &amp; Azhar, A., (2010). Purification  and characterization of 60 kD lipase linked with chaperonin from Pseudomonas  aeruginosa BN-1<i>. African Journal of Biotechnology</i>, 9(45), 7724-7732.  DOI: <a href="https://doi.org/10.5897/AJB10.369" target="_blank">10.5897/AJB10.369</a>. </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">[21] Tembhurkar,  V.R., Kulkarni, M.B. &amp; Peshwe, S.A. (2012). Optimization of Lipase  Production by <i>Pseudomonas </i>spp. in submerged batch process in shake flask  culture. <i>Science  Research Reporter, 2</i>(1),  46-50. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=806382&pid=S1683-0789202000010000900021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">[22] Teqma &ndash; Tecnolog&iacute;as y equipos para el medio  ambiente (febrero, 2019). La importancia de la separaci&oacute;n de aceites y grasas  en el tratamiento del agua residual urbana. Recuperado de  <a href="https://www.iagua.es/noticias/teqma/importancia-separacion-aceites-y-grasas-tratamiento-agua-residual-urbana" target="_blank">https://www.iagua.es/noticias/teqma/importancia-separacion-aceites-y-grasas-tratamiento-agua-residual-urbana</a> </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">[23] Wakelin, N.G. &amp;  Forster, C.F. (1997). Investigaci&oacute;n  sobre la eliminaci&oacute;n microbiana de grasas, aceites y grasas. <i>Revista de  Tecnolog&iacute;a Bioambiental &ndash; EL SEVIER, 59</i>(1), 37-43. </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">[24] Zouaoui, B. &amp; Bouziane, A., (2012). 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