<?xml version="1.0" encoding="ISO-8859-1"?><article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance">
<front>
<journal-meta>
<journal-id>1652-6776</journal-id>
<journal-title><![CDATA[Cuadernos Hospital de Clínicas]]></journal-title>
<abbrev-journal-title><![CDATA[Cuad. - Hosp. Clín.]]></abbrev-journal-title>
<issn>1652-6776</issn>
<publisher>
<publisher-name><![CDATA[Universidad Mayor de San Andrés, Facultad de Medicina]]></publisher-name>
</publisher>
</journal-meta>
<article-meta>
<article-id>S1652-67762006000200001</article-id>
<title-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[DNA-UMSAgen, EXTRACCIÓN DE DNA GENÓMICO PARA DIAGNÓSTICO MOLECULAR: MÉTODO RÁPIDO Y ECONÓMICO]]></article-title>
</title-group>
<contrib-group>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Amaru]]></surname>
<given-names><![CDATA[Ricardo]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Miguez]]></surname>
<given-names><![CDATA[Hortencia]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Peñaloza]]></surname>
<given-names><![CDATA[Rosario]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Torres]]></surname>
<given-names><![CDATA[Gina]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Silvestre]]></surname>
<given-names><![CDATA[Julio]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Cuevas]]></surname>
<given-names><![CDATA[Heriberto]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
</contrib-group>
<aff id="A01">
<institution><![CDATA[,UMSA Facultad de Medicina Departamento de Ciencias Funcionales]]></institution>
<addr-line><![CDATA[La Paz ]]></addr-line>
<country>Bolivia</country>
</aff>
<pub-date pub-type="pub">
<day>00</day>
<month>07</month>
<year>2006</year>
</pub-date>
<pub-date pub-type="epub">
<day>00</day>
<month>07</month>
<year>2006</year>
</pub-date>
<volume>51</volume>
<numero>2</numero>
<fpage>11</fpage>
<lpage>15</lpage>
<copyright-statement/>
<copyright-year/>
<self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.bo/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S1652-67762006000200001&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.bo/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S1652-67762006000200001&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.bo/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S1652-67762006000200001&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[INTRODUCCIÓN El estudio del ácido desoxirribunocleíco (DNA) es imprescindible para la medicina moderna; por ello, se ha diseñado diferentes técnicas para su extracción, cuyos costos son altos y de tiempo prolongado. En este trabajo se describe un método modificado de extracción de DNA (DNA-UMSAgen) basado en la técnica de Miller. MÉTODOS Las células mononucleares fueron obtenidas de sangre venosa periférica de un sujeto voluntario, para realizar 40 extracciones de DNA; 20 con el método modificado DNA-UMSAgen y otros 20 con el método clásico. Posteriormente se evaluó la concentración, calidad y utilidad de estos DNA extraídos. RESULTADOS La pureza del DNA extraído por el método DNA-UMSAgen es de 1,88 similar al de la técnica clásica 1,91, las concentraciones obtenidas son 20,4 ug/106 cel y 56ug/106 cel respectivamente. La evaluación por electroforesis en agarosa y la amplificación del exon 12 del gen JAK2 por PCR fue satisfactoria. CONCLUSIÓN El método DNA-UMSAgen es una alternativa de extracción de DNA genómico, rápido y económico, adecuado para países en vías de desarrollo.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[INTRODUCTION DNA is the genetic material of the cell. Actually for its study, laboratory techniques are available that require its extraction free of impurities. This paper describes the DNA-UMSAgen method as an alternative for DNA extraction which is based on the Miller technique. METHODS The mononuclear cells were obtained of venous peripheral blood of a voluntary subject, for to realize 40 DNA's extractions; 20 with the modified method DNA-UMSAgen and other 20 with the classic method. Later there was evaluated the concentration, quality and utility of these extracted DNA. RESULTS The DNA purity extracted by the DNA-UMSAgen method is 1,88 similar to the classic technique 1,91, the concentration obtained were 20,4 ug/106 cells and 56ug/106 cells respectively. The evaluation by agarose gel electrophoresis and the amplification of the exon 12 of the JAK2 gen by PCR was successful. CONCLUSION The DNA-UMSAgen extraction method is a very acceptable fast, easy and inexpensive alternative method for underdeveloped countries for DNA extraction.]]></p></abstract>
<kwd-group>
<kwd lng="es"><![CDATA[DNA]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[extracción]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[espectrofotometría]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[PCR]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[electroforesis en agarosa]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[DNA]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[extraction]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[spectrophotometry]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[PCR]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[agarose gel electrophoresis]]></kwd>
</kwd-group>
</article-meta>
</front><body><![CDATA[ <div class=Section1>      <p align=right style='text-align:right'><strong><span style='font-size:10.0pt; font-family:Verdana'>ARTICULO ORIGINAL</span></strong></p>      <p align=center style='text-align:center'><strong><span style='font-size:13.5pt; font-family:Verdana'>DNA-UMSAgen, EXTRACCI&Oacute;N DE DNA GEN&Oacute;MICO PARA DIAGN&Oacute;STICO MOLECULAR: M&Eacute;TODO R&Aacute;PIDO Y ECON&Oacute;MICO</span></strong></p>      <p align=center style='text-align:center'><strong><span style='font-size:10.0pt; font-family:Verdana'>Ricardo Amaru *, Hortencia Miguez *, Rosario Pe&ntilde;aloza *, Gina Torres *, Julio Silvestre *, Heriberto Cuevas *.</span></strong></p>      <p><span style='font-size:7.5pt;font-family:Verdana'>* Unidad de Biolog&iacute;a Celular, Departamento de Ciencias Funcionales, Facultad de Medicina, UMSA, <st1:PersonName ProductID="La Paz" w:st="on">La Paz</st1:PersonName>, Bolivia</span></p>      <div class=MsoNormal align=center style='text-align:center'>  <hr size=2 width="100%" align=center>  </div>      <p class=MsoNormal align=center style='text-align:center'><strong><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>RESUMEN</span></strong> </p>      <p><strong><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>INTRODUCCI&Oacute;N</span></strong></p>      <p><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>El estudio del &aacute;cido desoxirribunocle&iacute;co (DNA) es imprescindible para la medicina moderna; por ello, se ha dise&ntilde;ado diferentes t&eacute;cnicas para su extracci&oacute;n, cuyos costos son altos y de tiempo prolongado. En este trabajo se describe un m&eacute;todo modificado de extracci&oacute;n de DNA (DNA-UMSAgen) basado en la t&eacute;cnica de Miller.</span></p>      <p><strong><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>M&Eacute;TODOS</span></strong></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Las c&eacute;lulas mononucleares fueron obtenidas de sangre venosa perif&eacute;rica de un sujeto voluntario, para realizar 40 extracciones de DNA; 20 con el m&eacute;todo modificado DNA-UMSAgen y otros 20 con el m&eacute;todo cl&aacute;sico. Posteriormente se evalu&oacute; la concentraci&oacute;n, calidad y utilidad de estos DNA extra&iacute;dos. </span></p>      <p><strong><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>RESULTADOS</span></strong></p>      <p><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>La pureza del DNA extra&iacute;do por el m&eacute;todo DNA-UMSAgen es de 1,88 similar al de la t&eacute;cnica cl&aacute;sica 1,91, las concentraciones obtenidas son 20,4 ug/106 cel y 56ug/106 cel respectivamente. La evaluaci&oacute;n por electroforesis en agarosa y la amplificaci&oacute;n del exon 12 del gen JAK2 por PCR fue satisfactoria.</span></p>      <p><strong><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>CONCLUSI&Oacute;N</span></strong></p>      <p><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>El m&eacute;todo DNA-UMSAgen es una alternativa de extracci&oacute;n de DNA gen&oacute;mico, r&aacute;pido y econ&oacute;mico, adecuado para pa&iacute;ses en v&iacute;as de desarrollo.</span></p>      <p><strong><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>PALABRAS CLAVES</span></strong></p>      <p><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Rev. Cuadernos 2006; 51 (2): 11-15 / DNA, extracci&oacute;n, espectrofotometr&iacute;a, PCR, electroforesis en agarosa</span></p>      <div class=MsoNormal align=center style='text-align:center'>  <hr size=2 width="100%" align=center>  </div>      <p class=MsoNormal align=center style='text-align:center'><strong><span lang=EN-GB style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana;mso-ansi-language:EN-GB'>ABSTRACT</span></strong><span lang=EN-GB style='mso-ansi-language:EN-GB'> <o:p></o:p></span></p>      <p><strong><span lang=EN-GB style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana; mso-ansi-language:EN-GB'>INTRODUCTION</span></strong><span lang=EN-GB style='mso-ansi-language:EN-GB'><o:p></o:p></span></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><span lang=EN-GB style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana;mso-ansi-language: EN-GB'>DNA is the genetic material of the cell. Actually for its study, laboratory techniques are available that require its extraction free of impurities. This paper describes the DNA-UMSAgen method as an alternative for DNA extraction which is based on the Miller technique.</span><span lang=EN-GB style='mso-ansi-language:EN-GB'><o:p></o:p></span></p>      <p><strong><span lang=EN-GB style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana; mso-ansi-language:EN-GB'>METHODS</span></strong><span lang=EN-GB style='mso-ansi-language:EN-GB'><o:p></o:p></span></p>      <p><span lang=EN-GB style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana;mso-ansi-language: EN-GB'>The mononuclear cells were obtained of venous peripheral blood of a voluntary subject, for to realize 40 DNA's extractions; 20 with the modified method DNA-UMSAgen and other 20 with the classic method. Later there was evaluated the concentration, quality and utility of these extracted DNA.</span><span lang=EN-GB style='mso-ansi-language:EN-GB'><o:p></o:p></span></p>      <p><strong><span lang=EN-GB style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana; mso-ansi-language:EN-GB'>RESULTS</span></strong><span lang=EN-GB style='mso-ansi-language:EN-GB'><o:p></o:p></span></p>      <p><span lang=EN-GB style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana;mso-ansi-language: EN-GB'>The DNA purity extracted by the DNA-UMSAgen method is 1,88 similar to the classic technique 1,91, the concentration obtained were 20,4 ug/106 cells and 56ug/106 cells respectively. The evaluation by agarose gel electrophoresis and the amplification of the exon 12 of the JAK2 gen by PCR was successful.</span><span lang=EN-GB style='mso-ansi-language:EN-GB'><o:p></o:p></span></p>      <p><strong><span lang=EN-GB style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana; mso-ansi-language:EN-GB'>CONCLUSION</span></strong><span lang=EN-GB style='mso-ansi-language:EN-GB'><o:p></o:p></span></p>      <p><span lang=EN-GB style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana;mso-ansi-language: EN-GB'>The DNA-UMSAgen extraction method is a very acceptable fast, easy and inexpensive alternative method for underdeveloped countries for DNA extraction.</span><span lang=EN-GB style='mso-ansi-language:EN-GB'><o:p></o:p></span></p>      <p><strong><span lang=EN-GB style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana; mso-ansi-language:EN-GB'>KEY WORDS</span></strong><span lang=EN-GB style='mso-ansi-language:EN-GB'><o:p></o:p></span></p>      <p><span lang=EN-GB style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana;mso-ansi-language: EN-GB'>DNA, extraction, spectrophotometry, PCR, agarose gel electrophoresis.</span><span lang=EN-GB style='mso-ansi-language:EN-GB'><o:p></o:p></span></p>      <div class=MsoNormal align=center style='text-align:center'>  <hr size=2 width="100%" align=center>  </div>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p class=MsoNormal align=center style='text-align:center'><strong><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>INTRODUCCI&Oacute;N</span></strong> </p>      <p><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>El &aacute;cido desoxirribonucleico (DNA) es el material gen&eacute;tico de las c&eacute;lulas eucari&oacute;ticas<sup>1</sup> cuya manipulaci&oacute;n y an&aacute;lisis es imprescindible para el estudio de las bases moleculares en las enfermedades; actualmente diversos m&eacute;todos de biolog&iacute;a molecular permiten extraer DNA desde virus hasta c&eacute;lulas humanas<sup>2,3</sup>. </span></p>      <p><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Para la extracci&oacute;n del DNA se requiere aislar prote&iacute;nas, polisac&aacute;ridos y l&iacute;pidos; adem&aacute;s, el material utilizado en el proceso de extracci&oacute;n debe estar libre de DNasa asociado a manipulaci&oacute;n cuidadosa para evitar su degradaci&oacute;n<sup>3,4</sup>.</span></p>      <p><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>A diferencia del m&eacute;todo cl&aacute;sico, el m&eacute;todo modificado DNA-UMSAgen no utiliza prote&iacute;nasa K ni fenol cloroformo para la extracci&oacute;n del DNA.     <br> El presente trabajo describe un m&eacute;todo modificado de extracci&oacute;n de DNA gen&oacute;mico a partir de la t&eacute;cnica de Miller <sup>(5)</sup> que es r&aacute;pido y econ&oacute;mico.</span></p>      <p align=center style='text-align:center'><strong><span style='font-size:10.0pt; font-family:Verdana'>MATERIAL Y M&Eacute;TODOS</span></strong></p>      <p><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Las c&eacute;lulas mononucleares fueron separadas por gradiente de concentraci&oacute;n en Histopaque 1077 (Sigma - Aldrich, Reino Unido) a partir de 10 ml sangre venosa perif&eacute;rica de un sujeto voluntario, posteriormente las c&eacute;lulas mononucleares fueron alicuotadas a una concentraci&oacute;n de 1 x 106 en tubos Eppendorf y conservadas a <st1:metricconverter ProductID="-20 &#186;C" w:st="on">-20  &ordm;C</st1:metricconverter>. </span></p>      <p><strong><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>REACTIVOS</span></strong></p>      <div>  <ul type=disc>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l0 level1 lfo1;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>NLB (nuclear lysis buffer)    <br>      10 mM Tris-HCl pH 8,2     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>      (Tris-hidroximetilaminometano)    <br>      0,4 M Na Cl (Cloruro de sodio)    <br>      2 mM Na2 EDTA pH 8,0 (Acido Etilendiamino tetraac&eacute;tico sal      dis&oacute;dica)    <br>      Disolver <st1:metricconverter ProductID="23,37 g" w:st="on">23,37 g</st1:metricconverter>      de Na Cl en 900ml de agua destilada, agregar 10ml de Tris-HCl 1M pH 8,2 y      10 ml de Na2 EDTA pH 8 enrasar a <st1:metricconverter ProductID="1 litro"      w:st="on">1 litro</st1:metricconverter> con agua destilada.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l0 level1 lfo1;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>SDS 10% p/v (dodecil sulfato de sodio)    <br>      Disolver <st1:metricconverter ProductID="100 g" w:st="on">100 g</st1:metricconverter>      de SDS en <st1:metricconverter ProductID="1 litro" w:st="on">1 litro</st1:metricconverter>      de agua destilada a <st1:metricconverter ProductID="20&#186;C" w:st="on">20&ordm;C</st1:metricconverter>      en ba&ntilde;o mar&iacute;a.    <br>      Mezclar 300 ml de NLB con 20ml de SDS al 10%, antes de usar.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l0 level1 lfo1;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Na Cl 6M (cloruro de sodio saturado)    <br>      Disolver <st1:metricconverter ProductID="350,64 g" w:st="on">350,64 g</st1:metricconverter>      de NaCl en 800 ml de agua destilada despu&eacute;s de agitar por 30      minutos enrasar a <st1:metricconverter ProductID="1 litro" w:st="on">1       litro</st1:metricconverter> con agua destilada.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l0 level1 lfo1;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Acetato de sodio 3M    <br>      CH3COONa (acetato de sodio)    <br>      Disolver <st1:metricconverter ProductID="24,6 g" w:st="on">24,6 g</st1:metricconverter>      de acetato de Na en 100 ml de agua destilada.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l0 level1 lfo1;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Soluci&oacute;n de lisis para gl&oacute;bulos      rojos 10X    <br>      NH4Cl (cloruro de amonio)    ]]></body>
<body><![CDATA[<br>      KHCO3 (bicarbonato &aacute;cido de potasio)    <br>      Na2 EDTA pH 8,00 (Acido Etilendiamino tetraac&eacute;tico sal      dis&oacute;dica)    <br>      Disolver <st1:metricconverter ProductID="82,9 g" w:st="on">82,9 g</st1:metricconverter>      de NH4Cl, <st1:metricconverter ProductID="10 g" w:st="on">10 g</st1:metricconverter>      KHCO3 y 370 mg de Na2 EDTA en 800 ml de agua destilada y enrasar a 1litro.      Pasar por filtro de 0,45um y diluir 1:10 antes de usar.</span></li>     </ul>  </div>      <p><strong><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>EXTRACCI&Oacute;N DEL DNA GEN&Oacute;MICO CON EL M&Eacute;TODO DNA-UMSAgen.</span></strong></p>      <div>  <ul type=disc>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l3 level1 lfo2;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Resuspender el sedimento de c&eacute;lulas (1      x 106) en 900 &micro;l de NLB-SDS.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l3 level1 lfo2;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Agregar 300 &micro;l de cloruro de sodio <st1:metricconverter      ProductID="6 M" w:st="on">6 M</st1:metricconverter>, luego agitar en      vortex por un minuto.Agregar 600 &micro;l de cloroformo.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l3 level1 lfo2;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Mezclar por inversi&oacute;n durante 5 minutos      hasta observar una soluci&oacute;n homog&eacute;nea.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l3 level1 lfo2;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Centrifugar a 4000 rpm durante 5 minutos.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l3 level1 lfo2;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Recuperar la fase superior en otro tubo Eppendorf.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l3 level1 lfo2;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Agregar 600 &micro;l de cloroformo - alcohol      isoam&iacute;lico 24:1.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l3 level1 lfo2;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Mezclar por inversi&oacute;n durante 5 minutos      hasta observar una soluci&oacute;n homog&eacute;nea.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l3 level1 lfo2;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Centrifugar a 4000 rpm durante 5 minutos.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l3 level1 lfo2;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Recuperar la fase superior en otro tubo      Eppendorf.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l3 level1 lfo2;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Agregar 30 &micro;l de acetato de sodio 3M.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l3 level1 lfo2;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Agregar 1 ml de alcohol absoluto fr&iacute;o      (conservado a <st1:metricconverter ProductID="-20&#186;C" w:st="on">-20&ordm;C</st1:metricconverter>).</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l3 level1 lfo2;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Mezclar hasta la visualizaci&oacute;n del DNA      precipitado.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l3 level1 lfo2;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Sacar el DNA precipitado con una aguja      hipod&eacute;rmica G21 y depositarlo en otro tubo Eppendorf.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l3 level1 lfo2;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Resuspender en 1ml de etanol al 70%      (conservado a <st1:metricconverter ProductID="-20&#186;C" w:st="on">-20&ordm;C</st1:metricconverter>)</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l3 level1 lfo2;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Centrifugar a 12.000 rpm durante 5 minutos.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l3 level1 lfo2;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Desechar el sobrenadante y dejar secar el DNA      a medio ambiente.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l3 level1 lfo2;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Resuspender en 100 &micro;l de agua      tridestilada.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l3 level1 lfo2;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Dejar una noche a temperatura ambiente para su      disoluci&oacute;n completa.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l3 level1 lfo2;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Conservar a <st1:metricconverter      ProductID="4&#186;C" w:st="on">4&ordm;C</st1:metricconverter>.</span></li>     </ul>  </div>      <p><strong><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>EXTRACCI&Oacute;N DEL DNA GEN&Oacute;MICO CON EL M&Eacute;TODO CL&Aacute;SICO.</span></strong></p>      <div>  <ul type=disc>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l1 level1 lfo3;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Resuspender el sedimento de c&eacute;lulas (1      x 106) en 480 &micro;l de TNE 1x.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l1 level1 lfo3;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Agregar 100 &micro;l de SDS 10% y 20 &micro;l      de proteinasa K (20 mg/ml).</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l1 level1 lfo3;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Incubar en ba&ntilde;o mar&iacute;a a <st1:metricconverter      ProductID="37 &#186;C" w:st="on">37 &ordm;C</st1:metricconverter> por 12 horas.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l1 level1 lfo3;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Centrifugar a 4.000 rpm por 5 minutos.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l1 level1 lfo3;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Recuperar el sobrenadante en otro tubo      Eppendorf.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l1 level1 lfo3;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Agregar 600 &micro;l de fenol - cloroformo      (1:1). Mezclar por 5 minutos hasta su homogenizaci&oacute;n.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l1 level1 lfo3;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Centrifugar a 4.000 rpm por 5 minutos.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l1 level1 lfo3;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Recuperar el sobrenadante en otro tubo      Eppendorf.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l1 level1 lfo3;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Agregar 600 &micro;l de cloroformo/alcohol      isoam&iacute;lico (24:1). Mezclar por 5 minutos hasta su      homogenizaci&oacute;n.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l1 level1 lfo3;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Centrifugar a 4.000 rpm por 5 minutos.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l1 level1 lfo3;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Recuperar el sobrenadante en otro tubo      Eppendorf.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l1 level1 lfo3;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Agregar 50 &micro;l de acetato de sodio <st1:metricconverter      ProductID="3 M" w:st="on">3 M</st1:metricconverter>.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l1 level1 lfo3;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Agregar 1 ml de etanol absoluto fr&iacute;o (<st1:metricconverter      ProductID="-20&#186;C" w:st="on">-20&ordm;C</st1:metricconverter>). Agitar      gentilmente y esperar su precipitaci&oacute;n.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l1 level1 lfo3;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Centrifugar a 12.000 rpm por 5 minutos.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l1 level1 lfo3;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Desechar el sobrenadante. Agregar 1ml de      etanol al 70% conservado a <st1:metricconverter ProductID="-20&#186;C"      w:st="on">-20&ordm;C</st1:metricconverter>.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l1 level1 lfo3;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Centrifugar a 12.000 rpm por 5 minutos.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l1 level1 lfo3;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Desechar el sobrenadante. </span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l1 level1 lfo3;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Secar el DNA a medio ambiente.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l1 level1 lfo3;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Agregar 100 &micro;l de agua tridestilada y      dejar por una noche a temperatura ambiente para su disoluci&oacute;n      completa.</span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l1 level1 lfo3;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Conservar a <st1:metricconverter      ProductID="4&#186;C" w:st="on">4&ordm;C</st1:metricconverter>.</span></li>     </ul>  </div>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><strong><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>AN&Aacute;LISIS CUANTITATIVO DEL DNA.</span></strong></p>      <p><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>La concentraci&oacute;n de DNA se determin&oacute; por espectrofotometr&iacute;a UV a 260 nm en una soluci&oacute;n diluida de DNA 1/50. El c&aacute;lculo se realiz&oacute; con la siguiente f&oacute;rmula:</span></p>      <p align=center style='text-align:center'><img width=321 height=45 id="_x0000_i1028" src="/img/revistas/chc/v51n2/formula_1_1.gif"></p>      <p><strong><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>AN&Aacute;LISIS CUALITATIVO DEL DNA</span></strong></p>      <p><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>La calidad del DNA se evalu&oacute; mediante la separaci&oacute;n electrofor&eacute;tica en gel de agarosa al 0.8% con bromuro de etidio, migrado a 80 V por 60 minutos. En la migraci&oacute;n se utiliz&oacute; el marcador de pares de bases: Marker II. Se consider&oacute; DNA de alta calidad, a la presencia de bandas iguales o superiores a 23.000 bp.</span></p>      <p><strong><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>AN&Aacute;LISIS DE PUREZA DE DNA</span></strong></p>      <p><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>La pureza del DNA se calcul&oacute; mediante la relaci&oacute;n entre la absorbancia a 260 nm y 280 nm; considerando DNA de alta pureza a valores igual a 1.8 &plusmn; 0.1.</span></p>      <p><strong><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>AMPLIFICACI&Oacute;N DE DNA</span></strong></p>      <p><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>El DNA gen&oacute;mico se amplific&oacute; mediante la t&eacute;cnica del PCR (reacci&oacute;n en cadena de polimerasa) utilizando primers del exon 12 del gen Jak2 de acuerdo a protocolo establecido<sup>6</sup>. Los productos amplificados fueron separados por electroforesis en gel de agarosa al 2% con bromuro de etidio.</span></p>      <p align=center style='text-align:center'><strong><span style='font-size:10.0pt; font-family:Verdana'>RESULTADOS</span></strong></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Se realizaron 40 extracciones de DNA gen&oacute;mico a partir de 1 x 106 c&eacute;lulas mononucleares, 20 por el m&eacute;todo DNA-UMSAgen y 20 por el m&eacute;todo cl&aacute;sico.</span></p>      <p><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Las concentraciones de DNA fueron 20.4 &micro;g y 56 &micro;g por 106 c&eacute;lulas mononucleares por el m&eacute;todo DNA-UMSAgen y Cl&aacute;sico respectivamente (cuadro <a href="#c1">1</a> y <a href="#c2">2</a>). La pureza del DNA extra&iacute;do fue 1.88 para el m&eacute;todo DNA-UMSAgen y 1.91 por el m&eacute;todo cl&aacute;sico (cuadro <a href="#c1">1</a> y <a href="#c2">2</a>).</span></p>      <p align=center style='text-align:center'><a name=c1></a><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'><img border=0 width=333 height=485 id="_x0000_i1029" src="/img/revistas/chc/v51n2/cuadro_1_1.gif"></span></p>      <p align=center style='text-align:center'><a name=c2></a><img border=0 width=397 height=493 id="_x0000_i1030" src="/img/revistas/chc/v51n2/cuadro_2_1.gif"></p>      <p><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Los resultados de la concentraci&oacute;n del DNA extra&iacute;do por ambos m&eacute;todos son estad&iacute;sticamente diferentes y en referencia a la pureza y calidad ambos m&eacute;todos son adecuados (<a href="#c3">cuadro 3</a>, <a href="#f1">figura 1</a>).</span></p>      <p align=center style='text-align:center'><a name=c3></a><img border=0 width=399 height=194 id="_x0000_i1031" src="/img/revistas/chc/v51n2/cuadro_3_1.gif"></p>      <p align=center style='text-align:center'><a name=f1></a><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'><img border=0 width=390 height=412 id="_x0000_i1032" src="/img/revistas/chc/v51n2/figura_1_1.jpg"></span></p>      <div>  <ol start=1 type=A>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l2 level1 lfo4;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Migraci&oacute;n electrofor&eacute;tica de 3      &micro;g de DNA en agarosa 0.8% con bromuro de etidio. MII, Marker II;      columna 1, m&eacute;todo DNA-UMSAgen; columna 2, DNA degradado; columna 3,      m&eacute;todo cl&aacute;sico. </span></li>  <li class=MsoNormal style='mso-margin-top-alt:auto;mso-margin-bottom-alt:auto;      mso-list:l2 level1 lfo4;tab-stops:list 36.0pt'><span style='font-size:      10.0pt;font-family:Verdana'>Migraci&oacute;n electrofor&eacute;tica de      Amplificaci&oacute;n del exon 12 del gen JAK2 por PCR en agarosa 2% con      bromuro de etidio. MVIII Marker VIII; columna 1, m&eacute;todo      DNA-UMSAgen; columna 2, DNA degradado; columna 3, m&eacute;todo      cl&aacute;sico.</span></li>     </ol>  </div>      <p><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>El estudio de costos para el m&eacute;todo DNA-UMSAgen es de un d&oacute;lar y para el m&eacute;todo cl&aacute;sico es de dos d&oacute;lares.</span></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>El tiempo de extracci&oacute;n utilizado por el m&eacute;todo DNA-UMSAgen es de 2 horas, mientras para el m&eacute;todo cl&aacute;sico es de 24 horas.</span></p>      <p><strong><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>DISCUSI&Oacute;N</span></strong></p>      <p><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>El DNA gen&oacute;mico es utilizado en laboratorios de Biolog&iacute;a Molecular para determinar la etiolog&iacute;a y las caracter&iacute;sticas gen&eacute;ticas de diferentes patolog&iacute;as. </span></p>      <p><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Desde la primera extracci&oacute;n del DNA hasta la fecha se han dise&ntilde;ado diversos m&eacute;todos de extracci&oacute;n; en los &uacute;ltimos a&ntilde;os se hicieron populares los Kits patentados que simplifican la extracci&oacute;n, pero disminuyen la calidad del DNA con costos cada vez mayores. </span></p>      <p><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>En el m&eacute;todo DNA-UMSAgen no se utiliza la proteinasa K, (enzima de alto costo); en su lugar se utiliza el NLB (del anglosaj&oacute;n: &quot;nuclear lysis buffer&quot;) que reduce el tiempo del procedimiento de 12 horas (m&eacute;todo cl&aacute;sico) a 5 minutos. Adem&aacute;s no se utiliza el fenol, una sustancia catalogada como muy t&oacute;xica para el manipulador y para el medio ambiente. Al recuperar el DNA precipitado con una aguja hipod&eacute;rmica, nos permite obtener DNA de alta calidad (de mayor n&uacute;mero de pares de bases) dejando DNA de menor n&uacute;mero de pares de bases en la soluci&oacute;n; probablemente por ello la concentraci&oacute;n del DNA sea inferior en relaci&oacute;n con el m&eacute;todo cl&aacute;sico. </span></p>      <p><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>El m&eacute;todo DNA-UMSAgen simplifica los pasos, ahorra tiempo y dinero, obteniendo DNA de alta calidad tal como lo demuestran los estudios de espectrofotometr&iacute;a y electroforesis en gel de agarosa. Los costos de extracci&oacute;n se reducen en aproximadamente 50% en relaci&oacute;n con el m&eacute;todo cl&aacute;sico y m&aacute;s de 200% en relaci&oacute;n con otros m&eacute;todos patentados. </span></p>      <p><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>La cantidad de extracci&oacute;n de DNA con DNA-UMSAgen es menor en relaci&oacute;n con el m&eacute;todo cl&aacute;sico, pero suficiente para realizar t&eacute;cnicas como Southern blot, PCR, etc. La pureza es ligeramente superior con DNA-UMSAgen aunque no estad&iacute;sticamente significativo.</span></p>      <p><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>El m&eacute;todo DNA-UMSAgen con las ventajas ya descritas, requiere ser validado para su utilizaci&oacute;n a nivel internacional.</span></p>      <p align=center style='text-align:center'><strong><span lang=EN-GB style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana;mso-ansi-language:EN-GB'>REFERENCIAS.</span></strong><span lang=EN-GB style='mso-ansi-language:EN-GB'><o:p></o:p></span></p>      <p><span lang=EN-GB style='font-size:11.0pt;mso-bidi-font-size:10.0pt; font-family:Arial;color:red;mso-ansi-language:EN-GB'><o:p>&nbsp;</o:p></span></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><span lang=EN-GB style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana;mso-ansi-language: EN-GB'>1. Watson JD, Crick FHC. Molecular structure of nucleic acids: A structure for deoxyribose nucleic acid. Nature 1953; 171: 737.</span><span lang=EN-GB style='mso-ansi-language:EN-GB'><o:p></o:p></span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1169695&pid=S1652-6776200600020000100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><span lang=EN-GB style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana;mso-ansi-language: EN-GB'>2. Jones SW, Dobson ME, Francesconi SC, Schoske R, Crawford R. DNA Assays for Detection, Identification, and Individualization of Select Agent Microorganisms Croat Med J 2005; 46: 522.</span><span lang=EN-GB style='mso-ansi-language:EN-GB'><o:p></o:p></span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1169696&pid=S1652-6776200600020000100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><span lang=EN-GB style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana;mso-ansi-language: EN-GB'>3. Maniatis T, Fritsch EF, Sambrock J. Molecular cloning: A laboratory Manual. Ed. 1982. Cold Spring Harbor. </span><span style='font-size:10.0pt; font-family:Verdana'>New York.</span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1169697&pid=S1652-6776200600020000100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>4. </span><span lang=EN-GB style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana;mso-ansi-language:EN-GB'>Luque J, Herraez A. </span><span style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana'>Texto ilustrado de Biolog&iacute;a Molecular e Ingenier&iacute;a Gen&eacute;tica. </span><span lang=EN-GB style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana;mso-ansi-language:EN-GB'>Ed. 2001. Harcourt. Madrid.</span><span lang=EN-GB style='mso-ansi-language:EN-GB'><o:p></o:p></span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1169698&pid=S1652-6776200600020000100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><span lang=EN-GB style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana;mso-ansi-language: EN-GB'>5. Miller SA, Dykes DD, Polesky HF. A simple salting out procedure for extracting DNA from human nucleated cells. Nucleic Acid Res 1988; 16: 1215.</span><span lang=EN-GB style='mso-ansi-language:EN-GB'><o:p></o:p></span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1169699&pid=S1652-6776200600020000100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><span lang=EN-GB style='font-size:10.0pt;font-family:Verdana;mso-ansi-language: EN-GB'>6. Baxter EJ, Scott lm, Campbell PJ, et al. Adcquired mutation of the tyrosine kinase JAK-<st1:metricconverter ProductID="2 in" w:st="on">2 in</st1:metricconverter> human myeloproliferative disorders. Lancet 2005; 365: 3313.</span><span lang=EN-GB style='mso-ansi-language:EN-GB'><o:p></o:p></span>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1169700&pid=S1652-6776200600020000100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
<ref-list>
<ref id="B1">
<label>1</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Watson]]></surname>
<given-names><![CDATA[JD]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Crick]]></surname>
<given-names><![CDATA[FHC]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Molecular structure of nucleic acids: A structure for deoxyribose nucleic acid]]></article-title>
<source><![CDATA[Nature]]></source>
<year>1953</year>
<volume>171</volume>
<page-range>737</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B2">
<label>2</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Jones]]></surname>
<given-names><![CDATA[SW]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Dobson]]></surname>
<given-names><![CDATA[ME]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Francesconi]]></surname>
<given-names><![CDATA[SC]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Schoske]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Crawford]]></surname>
<given-names><![CDATA[R]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[DNA Assays for Detection, Identification, and Individualization of Select Agent Microorganisms]]></article-title>
<source><![CDATA[Croat Med J]]></source>
<year>2005</year>
<volume>46</volume>
<page-range>522</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B3">
<label>3</label><nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Maniatis]]></surname>
<given-names><![CDATA[T]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Fritsch]]></surname>
<given-names><![CDATA[EF]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Sambrock]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Molecular cloning: A laboratory Manual]]></source>
<year>1982</year>
<publisher-loc><![CDATA[New York ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Cold Spring Harbor]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B4">
<label>4</label><nlm-citation citation-type="book">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Luque]]></surname>
<given-names><![CDATA[J]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Herraez]]></surname>
<given-names><![CDATA[A]]></given-names>
</name>
</person-group>
<source><![CDATA[Texto ilustrado de Biología Molecular e Ingeniería Genética]]></source>
<year>2001</year>
<publisher-loc><![CDATA[Madrid ]]></publisher-loc>
<publisher-name><![CDATA[Harcourt]]></publisher-name>
</nlm-citation>
</ref>
<ref id="B5">
<label>5</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Miller]]></surname>
<given-names><![CDATA[SA]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Dykes]]></surname>
<given-names><![CDATA[DD]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Polesky]]></surname>
<given-names><![CDATA[HF]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[A simple salting out procedure for extracting DNA from human nucleated cells]]></article-title>
<source><![CDATA[Nucleic Acid Res]]></source>
<year>1988</year>
<volume>16</volume>
<page-range>1215</page-range></nlm-citation>
</ref>
<ref id="B6">
<label>6</label><nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Baxter]]></surname>
<given-names><![CDATA[EJ]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Scott]]></surname>
<given-names><![CDATA[lm]]></given-names>
</name>
<name>
<surname><![CDATA[Campbell]]></surname>
<given-names><![CDATA[PJ]]></given-names>
</name>
</person-group>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Adcquired mutation of the tyrosine kinase JAK-2 in human myeloproliferative disorders]]></article-title>
<source><![CDATA[Lancet]]></source>
<year>2005</year>
<volume>365</volume>
<page-range>3313</page-range></nlm-citation>
</ref>
</ref-list>
</back>
</article>
