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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Objective. To examine the development of resistance to erythromycin, chloramphenicol, trimethoprim-sulfamethoxazole (TMP-SMZ), and vancomycin of the invasive isolates of Streptococcus pneumoniae obtained from children in 10 Latin American/Caribbean countries during six years of surveillance. Methods. Analysis of 8 993 isolates of S. pneumoniae recovered in 2000-2005 from children with invasive infections, who were less than 6 years of age, and from Argentina, Brazil, Chile, Colombia, Cuba, Dominican Republic, Mexico, Paraguay, Uruguay, or Venezuela. Antibiotic susceptibility was determined through the methods established and standardized by the SIREVA project. Multidrug resistance was defined as: resistance to three or more antibiotics of the same class; to the non-beta-lactams analyzed by this study; or, to the beta-lactams evaluated by a previous study, in which 37.8% of these isolates showed decreased susceptibility to penicillin. Results. Some degree of resistance was found to TMP- SMZ and erythromycin (56.4% and 15.4% of the isolates studied, respectively), with 4.6% highly resistant to chloramphenicol. All isolates were susceptible to vancomycin. The highest prevalence of TMP-SMZ resistance was observed in the pneumonia isolates; and that of erythromycin, in cases of sepsis (61.6% and 25.5%, respectively; P < 0.01). The highest prevalence of TMP-SMZ resistance was found in Brazil (71.9%), and that of erythromycin, in Mexico (38.2%) and Venezuela (32.9%). The 14, 6B, 19F, and 23F serotypes were most often associated with resistance to the antibiotics in the study. Conclusions. High and increasing rates of isolates resistant to TMP-SMZ and erythromycin were observed, as well as a decreasing percentage of isolates resistant to chloramphenicol. These trends highlight differences among the countries studied.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <P align="right"><FONT size=2 face=Verdana><B>ARTICULO ORIGINAL</B></FONT></P>     <P align="justify">&nbsp;</P>     <P align="center"><B><I><font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Resistencia a antibióticos no betalactámicos  de aislamientos invasores de Streptococcus pneumoniae en niños  latinoamericanos.</font></I></B><FONT size=4 face=Verdana><B><I>SIREVA II, 2000-2005</I></B></FONT></P>     <P align="justify">&nbsp;</P>     <P align="center"><b><FONT size=3 face=Verdana><I>Resistance to non-beta-lactam antibiotics in the  clinical isolates of Streptococcus pneumoniae of children in Latin America. SIREVA  II,2000-2005</I></FONT></b></P>     <P align="justify">&nbsp;</P>     <P align="justify">&nbsp;</P>     <P align="center"><FONT size=2 face=Verdana><b>Clara Inés Agudelo,<SUP>1</SUP> Elizabeth  Castañeda,<SUP>1</SUP> Alejandra Corso,<SUP>2</SUP> Mabel Regueira,<SUP>2</SUP>  Maria Cristina de Cunto Brandileone,<SUP>3</SUP> Angela Pires  Brandão,<SUP>4</SUP> Aurora Maldonado,<SUP>5</SUP> Juan Carlos  Hormazabal,<SUP>5</SUP> Isis Tamargo,<SUP>6 </SUP>Gabriela Echániz-Aviles,<SUP>7</SUP> Araceli  Soto,<SUP>7</SUP> Mónica Guadalupe Viveros,<SUP>8</SUP> Irma  Hernández,<SUP>8</SUP> Gustavo Chamorro,<SUP>9</SUP> Natalie Weiler,<SUP>9</SUP> Jacqueline Sánchez,<SUP>10</SUP> Jesús M. Feris,<SUP>10</SUP> Teresa  Camou,<SUP>11</SUP> Gabriela García,<SUP>11 </SUP>Enza Spadola,<SUP>12</SUP> Daisy  Payares,<SUP>12</SUP> Jean-Marc Gabastou,<SUP>13</SUP> José Luis Di  Fabio<SUP>13</SUP> y el Grupo SIREVA II<SUP>14</SUP></b><SUP></SUP></FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>1 La afiliaci&oacute;n de los autores y los miembros del  grupo SIREVA II, todos coautores del presente trabajo, se presentan al final del  art&iacute;culo. La correspondencia se debe dirigir a Clara In&eacute;s Agudelo, Calle 115 No.  47A-14, apartamento 307, Barrio La Alhambra, Bogot&aacute;, D.C., Colombia. Correo  electr&oacute;nico: <a href="mailto:cia1949@gmail.com">cia1949@gmail.com</a></FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana><B>Art&iacute;culo reproducido con permiso de la OPS/OMS y    que fue publicado en la Rev Panam Salud P&uacute;blica 2009; 25 (4):    305-13.</B></FONT></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify">&nbsp;</P>     <P align="justify">&nbsp;</P> <hr>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana><B>Resumen</B></FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana><B>Objetivo. </B>Determinar la evolución de la  resistencia a la eritromicina, el cloranfenicol, el trimetoprim-sulfametozaxol  (SXT) y la vancomicina de aislamientos invasores de Streptococcus pneumoniae  obtenidos de niños de 10 países de América Latina y del Caribe en seis años de  vigilancia.</FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana><B>Métodos. </B>Se analizaron 8 993 aislamientos de  S. pneumoniae recuperados entre 2000 y 2005 de niños menores de 6 años con  infecciones invasoras, procedentes de Argentina, Brasil, Chile, Colombia, Cuba,  México, Paraguay, República Dominicana, Uruguay y Venezuela. La sensibilidad a  los antibióticos se determinó mediante los métodos establecidos y estandarizados  en el proyecto SIREVA. La resistencia a múltiples antibióticos se definió como  la resistencia a tres o más familias de antibióticos, de los no betalactámicos  analizados en este estudio o de los betalactámicos evaluados en un estudio  previo en el que 37,8% de estos aislamientos presentaron sensibilidad disminuida  a la penicilina.</FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana><B>Resultados. </B>Se encontró algún grado de  resistencia al SXT y la eritromicina (56,4% y 15,4% de los aislamientos  estudiados, respectivamente) y 4,6% presentó alta resistencia al cloranfenicol.  Todos los aislamientos fueron sensibles a la vancomicina. Se observó la mayor  frecuencia de resistencia al SXT en los aislamientos de neumonía y a la  eritromicina en los casos de sepsis (61,6% y 25,5%, respectivamente; P&lt;  0,01). La mayor frecuencia de resistencia al SXT se observó en Brasil (71,9%) y  a la eritromicina en México (38,2%) y Venezuela (32,9%).</FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>Los serotipos 14,6B, 19F y 23F fueron los que más  frecuentemente se asociaron con la resistencia a los antibióticos  estudiados.</FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana><B>Conclusiones. </B>Se observó una elevada y  creciente frecuencia de aislamientos resistentes al SXT y la eritromicina, y una  disminución en la proporción de aislamientos resistentes al  cloranfenicol.</FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>Estas tendencias mostraron diferencias entre los  países estudiados.</FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana><B>Palabras claves: </B>Rev Soc Bol Ped 2010; 49  (1): 9-21: Agentes antibacterianos, <I>Streptococcus pneumoniae, </I>resistencia  beta-lactámica, niños, América Latina.</FONT></P> <hr>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana><B>Abstract</B></FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana><B>Objective. </B>To examine the development of  resistance to erythromycin, chloramphenicol, trimethoprim-sulfamethoxazole  (TMP-SMZ), and vancomycin of the invasive isolates of Streptococcus pneumoniae  obtained from children in 10 Latin American/Caribbean countries during six  years of surveillance.</FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana><B>Methods. </B>Analysis of 8 993 isolates of S.  pneumoniae recovered in 2000-2005 from children with invasive infections, who  were less than 6 years of age, and from Argentina, Brazil, Chile, Colombia,  Cuba, Dominican Republic, Mexico, Paraguay, Uruguay, or Venezuela. Antibiotic  susceptibility was determined through the methods established and standardized  by the SIREVA project. Multidrug resistance was defined as: resistance to three  or more antibiotics of the same class; to the non-beta-lactams analyzed by this  study; or, to the beta-lactams evaluated by a previous study, in which 37.8% of  these isolates showed decreased susceptibility to penicillin.</FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana><B>Results. </B>Some degree of resistance was found  to TMP- SMZ and erythromycin (56.4% and 15.4% of the isolates studied,  respectively), with 4.6% highly resistant to chloramphenicol. All isolates were  susceptible to vancomycin. The highest prevalence of TMP-SMZ resistance was  observed in the pneumonia isolates; and that of erythromycin, in cases of sepsis  (61.6% and 25.5%, respectively; P &lt; 0.01). The highest prevalence of TMP-SMZ  resistance was found in Brazil (71.9%), and that of erythromycin, in Mexico  (38.2%) and Venezuela (32.9%). The 14, 6B, 19F, and 23F serotypes were most  often associated with resistance to the antibiotics in the study.</FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana><B>Conclusions. </B>High and increasing rates of  isolates resistant to TMP-SMZ and erythromycin were observed, as well as a  decreasing percentage of isolates resistant to chloramphenicol. These trends  highlight differences among the countries studied.</FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana><b>Key</b> <B>words: </B>Rev Soc Bol Ped 2010; 49 (1):  9-21: Antibacterial agents, <I>Streptococcus pneumoniae, </I>beta-lactam  resistance, child, Latin America, Caribbean.</FONT></P> <hr>     <P align="justify">&nbsp;</P>     <P align="justify">&nbsp;</P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana><I>Streptococcus pneumoniae </I>ocasiona  enfermedades invasoras como la meningitis, la neumonía y la sepsis. Este  patógeno constituye un problema prioritario de salud pública debido a las  elevadas tasas de morbilidad y mortalidad que provoca, especialmente en la  población infantil<SUP>(1)</SUP>, y al incremento creciente de su resistencia a  los antibióticos<SUP>(2-6)</SUP>.</FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>La Organización Mundial de la Salud (OMS) propuso  en 2001 una estrategia mundial para contener la resistencia a los  antimicrobianos<SUP>(7)</SUP>, en la que se subraya la importancia de que cada  país establezca la vigilancia de la resistencia a los antibióticos de los  microorganismos causantes de enfermedades de importancia para la salud pública,  entre los que se encuentra <I>S. pneumoniae. </I>Esta vigilancia tendría como  finalidad obtener información sobre la magnitud y las tendencias del problema y,  posteriormente, realizar el seguimiento a las intervenciones que se realicen en  cada país, en particular la aplicación de medidas para el uso racional de los  antibióticos. Además, los datos nacionales también son importantes para  establecer los patrones específicos de resistencia, que varían considerablemente  de un país a otro y a lo largo del tiempo<SUP>(7)</SUP>.</FONT></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>La Organización Panamericana de la Salud (OPS) creó  en 1994 el programa SIREVA (Sistema Regional de Vacunas) para la vigilancia de  las infecciones invasoras de <I>S. pneumoniae </I>en niños latinoamericanos  menores de 6 años<SUP>(3,</SUP><SUP>8)</SUP>. A partir de 2004, este programa  se denomina Sistema de Redes de Vigilancia de los Agentes Bacterianos  Responsables de Neumonía y Meningitis, SIREVA II<SUP>(9)</SUP>. El objetivo de  este programa es conocer la distribución de los diversos serotipos y registrar  la evolución de la resistencia a los antibióticos de elección para el  tratamiento de esas infecciones, a saber betalactámicos, macrólidos,  cloranfenicol, trimetoprim-sulfameto-zaxol (SXT) y glicopéptidos<SUP>(3-5,</SUP><SUP>9-10)</SUP>.</FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>En un estudio reciente se analizó la sensibilidad a  los antibióticos betalactámicos de 8 993 cepas de <I>S. pneumoniae </I>aisladas  en menores de 6 años con infecciones invasoras en 10 países de América  Lati</FONT><FONT size=2 face=Verdana>na y el Caribe entre los años 2000 y  2005<SUP>(11)</SUP>. Se estableció que 62,2% de los aislamientos era sensible a  la penicilina (22,1 % presentó resistencia intermedia y 15,7% resistencia alta),  mientras que 85,6% de los aislamientos estudiados resultaron sensibles a la  ceftriaxona (11,4% presentaron resistencia intermedia y 3,1% resistencia alta).  En el presente trabajo se analiza la evolución de la resistencia a antibióticos  no betalactámicos (eritromicina, cloranfenicol, SXT y vancomicina) de esos  aislamientos de <I>S. pneumoniae.</I></FONT></P>     <P align="justify">&nbsp;</P>     <P align="justify"><b><FONT size=3 face=Verdana>Materiales y métodos</FONT></b></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>Se analizaron 8 993 aislamientos de <I>S.  pneumoniae </I>recuperados entre 2000 y 2005 de niños menores de 6 años con  infecciones invasoras. Estos aislamientos procedían de 10 países  latinoamericanos (Argentina, Brasil, Chile, Colombia, Cuba, México, Paraguay,  República Dominicana, Uruguay y Venezuela) participantes en la segunda etapa del  Programa de Vigilancia de Neumonías y Meningitis Bacterianas, de SIREVA II,  coordinado por la </FONT><FONT size=2 face=Verdana>OPS<SUP>(9,10)</SUP>.</FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>En el <a href="#c1">cuadro 1</a> se presenta el número de  aislamientos estudiados por país y año. De acuerdo con el diagnóstico, 3 277  (36,4%) procedían de casos de neumonía, 3 213 (35,7%) de meningitis, 2 155  (24,0%) de sepsis o bacteriemia y 348 (3,9%) de otras enfermedades  invasoras.</FONT></P>     <P align="justify"><a name="c1"></a></P>     <P align="center"><img src="/img/revistas/rbp/v49n1/a03_cuadro_01.gif" width="641" height="338"></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana><B>Sensibilidad antimicrobiana</B></FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>Se determinó la sensibilidad de los aislamientos a  la eritromicina (15 &mu;g), el cloranfenicol (30 &mu;g), el SXT (1,25/23,7 &mu;g) y la  vancomicina (30 &mu;g) por el método de difusión con discos de Kirby Bauer y la  concentración inhibitoria mínima (CIM) por el método de microdilución en caldo,  dilución en agar o la prueba denominada E-test. Las pruebas se realizaron de  acuerdo con la metodología estandarizada en SIREVA II<SUP>(12)</SUP> y las  recomendaciones e interpretación del Instituto de Estándares Clínicos y de  Laboratorio (CLSI)<SUP>(13-15)</SUP>. Como control se utilizó la cepa  S. <I>pneumoniae </I>ATCC 49619.</FONT></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>La resistencia a múltiples antibióticos o  multirresistencia se definió como la resistencia a tres o más familias de  antibióticos, ya fueran de los no betalactámicos analizados en este estudio o  de los betalactámicos evaluados en un estudio previo<SUP>(11)</SUP>.</FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana><B>Análisis</B></FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>El análisis de los datos se realizó mediante el  programa Epi-Info versión 6.04<SUP>(16)</SUP>. Para determinar la diferencia  estadística entre las frecuencias se utilizó la prueba de la ji al cuadrado o la  exacta de Fisher, según fuera el caso. Se determinó el riesgo relativo (RR) con  sus intervalos de confianza de 95% (IC95%). El nivel de significación fue de <I>P &lt; </I>0,05.</FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>En los casos de Argentina, Chile, Colombia, México  y Uruguay se comparó la frecuencia de aislamientos resistentes en el período  2000-2005 con el informado en 1994-1999<SUP>(8)</SUP>.</FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana><B>Validación de los resultados</B></FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>El Programa Internacional de Evaluación Externa del  Desempeño, coordinado por el Centro Nacional para el <I>Streptococcus </I>de  Canadá, validó la calidad de los resultados de Brasil y Colombia, mientras que  el Instituto Adolfo Lutz, de Brasil, validó los resultados de los laboratorios  de Argentina, Chile,</FONT> <FONT size=2 face=Verdana>Cuba, Paraguay, República Dominicana, Uruguay y  Venezuela, y el Instituto Nacional de Salud, de Colombia, validó los de México.  El programa de validación abarcó las pruebas confirmatorias de identificación,  serotipificación y de sensibilidad antimicrobiana y forma parte del sistema de  gestión de la calidad de SIREVA II<SUP>(17)</SUP>.</FONT></P>     <P align="justify">&nbsp;</P>     <P align="justify"><FONT size=3 face=Verdana><B>Resultados</B></FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>Todos los aislamientos analizados fueron sensibles  a la vancomicina.</FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana><B>Resistencia al SXT</B></FONT></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>La sensibilidad al SXT se analizó en 8 401  aislamientos (93,4% de los 8 993 aislamientos estudiados). La resistencia a este  antibiótico fue la más frecuente en los 10 países analizados: 930 (11,1%)  aislamientos presentaron resistencia intermedia (mínimo: 4,6%; máximo: 16,3%) y  3 808 (45,3%) alta resistencia (mínimo: 15,5%; máximo: 68,4%), para un total de  4 738 (56,4%) aislamientos con algún nivel de resistencia. La mayor proporción  de aislamientos resistentes se observó en Brasil (71,9%) y la más baja en Chile  (43,1%) (<a href="#c2">cuadro 2</a>).</FONT></P>     <P align="justify"><a name="c2"></a></P>     <P align="justify">&nbsp;</P>     <P align="center"><img src="/img/revistas/rbp/v49n1/a03_cuadro_02.gif" alt="" width="640" height="372"></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>Al comparar los datos de los años 2000 y 2005 se  observó un incremento significativo en la proporción de aislamientos resistentes  a este antibiótico en México (de 57,0% a 72,0%; RR = 1,26; IC95%: 1,01 a 1,58; <I>P = </I>0,03), Uruguay (de 43,4% a 87,1%; RR = 1,55; IC95%: 1,15 a 2,09; P  &lt; 0,01) y Venezuela (de 29,3% a 60,0%; RR = 2,05; IC95%: 1,32 a 3,18; <I>P  </I>&lt; 0,01). En Cuba, se observó una drástica reducción entre las frecuencias  detectadas en 2002 y 2005 (de 79,9% a 23,8%; RR = 0,54; IC95%: 0,34 a 0,85; <I>P  = </I>0,002) (<a href="#f1a">figura 1A</a>). Entre los períodos 1994-1999 y 2000- 2005 se  incrementó significativamente el promedio de la frecuencia de aislamientos  resistentes en Colombia (de 35,0% a 63,5%; RR = 1,81;IC95%: 1,58 a 2,04; <I>P&lt; </I>0,01) y México (de 53,3% a 69,4%; RR = 1,29; IC95%: 1,16 a 1,44;  P&lt;0,01).</FONT></P>     <P align="justify"><a name="f1a"></a></P>     <P align="center"><img src="/img/revistas/rbp/v49n1/a03_figura_01.gif" width="607" height="496"></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana><B>Resistencia a la eritromicina</B></FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>De los 8 544 aislamientos a los que se determinó la  sensibilidad a la eritromicina (95,0% del total), 108 (1,2%) presentaron  resistencia intermedia y 1 211 (14,2%) alta resistencia, para un total de 1 319  (15,4%) cepas con alguna resistencia a este anti</FONT><FONT size=2 face=Verdana>biótico. Las mayores proporciones de aislamientos  con resistencia procedían de México (38,2%) y Venezuela (32,9%), mientras que en  Colombia, Paraguay y Brasil se observaron las frecuencias más bajas (4,3%, 5,5%  y 6,1%, respectivamente) (<a href="#c2">cuadro 2</a>).</FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>Al comparar la frecuencia de los aislamientos  resistentes a la eritromicina en el año 2000 con la encontrada en 2005 (<a href="#f1a">figura  1B</a>), se observaron incrementos significativos en Argentina (de 6,3% a 14,2%; RR  = 2,26; IC95%: 1,08 a 4,71; <I>P = </I>0,02), Chile (de 6,3% a 15,9%; RR = 2,56;  IC95%: 1,54 a 4,25; <I>P </I>&lt; 0,001) y Cuba (de 4,9% a 15,9%; RR = 3,23;  IC95%: 1,44 a 7,26; <I>P = </I>0,003), y en la frecuencia promedio de todos los  países (de 8,4% a 13,7%; RR= 1,64;IC95%: 1,32a2,03;<I>P&lt;</I>0,001). Esta  tendencia también se observó al comparar los datos de los períodos 1994-1999 y  2000-2005 en Argentina (de 2,1% a 10,6%; RR = 4,96; IC95%: 3,12 a 7,89; <I>P  </I>&lt; 0,01), México (de 22,2% a 38,2%; RR = 1,67; IC95%: 1,35 a 2,06; <I>P  </I>&lt; 0,01) y Uruguay (de 3,7% a 11,1%; RR = 2,98; IC95%: 1,63 a 5,44; <I>P&lt; </I>0,01).</FONT></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana><B>Resistencia al cloranfenicol</B></FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>La sensibilidad al cloranfenicol se determinó en 8  544 aislamientos, de los cuales 393 (4,6%) presentaron alta resistencia. Cuba y  México presentaron la mayor proporción de aislamientos resistentes (17,2%) y  Brasil la más baja (0,6%) (<a href="#c2">cuadro 2</a>). Cuando se compararon los datos del año  2000 y del 2005 se observó una disminución significativa en la frecuencia de la  resistencia a este antibiótico en Colombia (de 8,3% a 1,6%; RR = 0,20; IC95%:  0,04 a 0,91; <I>P = </I>0,02) y México (de 28,0% a 11,0%; RR = 0,39; IC95%: 0,20  a 0,79; <I>P </I>&lt; 0,01) (<a href="#f1a">figura 1C</a>); cuando se compararon los dos períodos  de vigilancia (1994-1999 y 2000-2005) se encontró una disminución similar en Colombia (de 12,6% a 4,9%; RR = 0,40; IC95%: 0,27 a 0,59; <I>P </I>&lt; 0,01) y  México (de 52,9% a 17,2%; RR = 0,31; IC95%: 0,25 a 0,38; <I>P&lt;  </I>0,01).</FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana><B>Resistencia por diagnóstico</B></FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>Se observó una frecuencia significativamente mayor  de aislamientos con algún grado de resistencia al SXT en los aislamientos  recuperados de neumonía (61,6%) que en los casos de meningitis (56,5%; RR =  1,09; IC95%: 1,04 a 1,14; <I>P </I>&lt; 0,01); mientras que para la  eritromicina, la proporción de aislamientos resistentes fue mayor en los  pacientes con sepsis (25,5%) y otras enfermedades invasoras (18,5%) que en los  casos de neumonía (13,2%; RR = 1,80; IC95%: 1,60 a 2,01; <I>P </I>&lt; 0,01) y  meningitis (11,1%; RR = 2,23; IC95%: 1,97 a 2,52; <I>P </I>&lt;  0,01).</FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>No se observaron diferencias significativas en  cuanto a la frecuencia de la resistencia al cloranfenicol en los aislamientos de  las diferentes fuentes (<a href="#c3">cuadro 3</a>).</FONT></P>     <P align="justify"><a name="c3"></a></P>     <P align="center"><img src="/img/revistas/rbp/v49n1/a03_cuadro_03.gif" width="642" height="408"></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana><B>Resistencia según el serotipo de </B><I><b>S.  pneumoniae</b></I></FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>El análisis de la frecuencia de la resistencia a  los antibióticos estudiados según el serotipo se presenta en el <a href="#c4">cuadro 4</a>. Cuando  se comparó la resistencia de cada uno de los serotipos con el promedio de  resistencia a cada uno de los antibióticos, los serotipos 5, 6B, 9V, 14, 19F y  23F presentaron una mayor resistencia al SXT; la resistencia en los serotipos  6B, 14 y 19F a la eritromicina fue mayor que el promedio, al igual que la  resistencia en los serotipos 6B y 23F al cloranfenicol (<a href="#c4">cuadro 4</a>).</FONT></P>     <P align="justify"><a name="c4"></a></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="center"><img src="/img/revistas/rbp/v49n1/a03_cuadro_04.gif" width="634" height="829"></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana><B>Multirresistencia</B></FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>La resistencia a múltiples antibióticos se  determinó en 808 aislamientos (9,5% de los 8 469 que tenían el dato de  susceptibilidad a los cinco antibióticos analizados). Las frecuencias más bajas  se encontraron en Cuba (0,7%) y Brasil (1,3%), mientras las más altas se  observaron en México (48,5%) y Venezuela (25%). El patrón más frecuente de  multirresistencia fue a la penicilina, el SXT y la eritromicina,  observado en 406 (50,2%) de los aislamientos estudiados  (<a href="#c5">cuadro 5</a>).</FONT></P>     <P align="justify"><a name="c5"></a></P>     <P align="center"><img src="/img/revistas/rbp/v49n1/a03_cuadro_05.gif" width="301" height="214"></P>     <P align="center">&nbsp;</P>     <P align="justify"><b><FONT size=3 face=Verdana>Discusión</FONT></b></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>El programa SIREVA ha mantenido la vigilancia de la  resistencia bacteriana a los antibióticos durante 13 años en América Latina y el  Caribe<SUP>(3-5,</SUP> <SUP>9-10)</SUP> y es el primer esfuerzo  internacional para la vigilancia de laboratorio de los serotipos y la  susceptibilidad antimicrobiana de <I>S. pneumoniae </I>en países en desarrollo.  Esto hace de SIREVA un modelo colaborativo para la Región en este  campo.</FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana><B>Resistencia al SXT</B></FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>La resistencia de <I>S. pneumoniae </I>al SXT fue  la más frecuente de los cuatro antibióticos estudiados y su incremento en los  cinco países en los que se compararon los períodos 1994-1999<SUP>(8)</SUP> y  2000-2005 fue significativo (de 45,6% a 50,6%; <I>P &lt; </I>0,001), con los  mayores incrementos en Colombia y México.</FONT></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>Entre los años 2000 y 2005, solamente se observaron  reducciones en la frecuencia de los aislamientos resistentes, aunque no  significativas, en Chile —posiblemente como resultado del programa de control  del uso de antibióticos que mantiene ese país desde 1999<SUP>(18)</SUP>— y en  Cuba, donde la frecuencia disminuyó drásticamente después del año 2002. Otros  países también han informado altas frecuencias de aislamientos de esta bacteria  resistentes al SXT, como Taiwán (87%)<SUP>(19)</SUP>, España (66,5%), Francia  (42,0%) e Italia (41,1%)<SUP>(20)</SUP>. Según Klugman, la alta resistencia al  SXT está asociada con la mayor resistencia a la penicilina y a la  ceftriaxona<SUP>(21)</SUP>, lo cual coincide con los resultados obtenidos por  SIREVA II en el período 2000-2005: 37,8% de los aislamientos estudiados era  resistente a la penicilina (22,1% con resistencia intermedia y 15,7% con alta  resistencia) y 14,5% a las cefalosporinas de tercera generación (11,4% con  resistencia intermedia y 3,1% con alta resistencia)<SUP>(11)</SUP>.</FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana><B>Resistencia a la eritromicina</B></FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>Al comparar los presentes resultados con los  obtenidos por SIREVA en el período 1994-1999<SUP>(3)</SUP> se observó un  incremento significativo en la resistencia de <I>S. pneumoniae </I>a la  eritromicina en Argentina, México y Uruguay <I>(P </I>&lt; 0,001). En promedio,  la frecuencia de aislamientos resistentes a la eritromicina en los 10 países  estudiados (15,4%) fue similar a la informada en Canadá en el año 2000 en  aislamientos de infecciones invasoras y no invasoras en la población  general<SUP>(22)</SUP>. Se deben resaltar tres hallaz</FONT><FONT size=2 face=Verdana>gos de gran importancia: la mayor resistencia a  este antibiótico observada en México y Venezuela, el incremento significativo en  la resistencia en países como Argentina, Chile y Cuba entre los años 2000 y  2005, y el aumento constatado en la República Dominicana en los años 2003 y 2004  (<a href="#f1a">figura 1B</a>).</FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>Klugman y Lonks informaron del aumento general de  la resistencia a la eritromicina observado en el mundo<SUP>(23)</SUP> y lo  relacionaron con el uso de este antibiótico en el tratamiento empírico de la  infección respiratoria aguda adquirida en la comunidad. Dias y colaboradores, en  un estudio realizado en Portugal en pacientes adultos, observaron un incremento  en la resistencia a la eritromicina de 4,0% a 23,2% entre 1994 a 2000, con un  promedio anual de 19%<SUP>(24)</SUP>. En un estudio de vigilancia realizado en  ocho países europeos entre 2001 a 2003 también se encontró un aumento en la  frecuencia de los aislamientos resistentes a los macrólidos (claritromicina)  obtenidos de adultos con infecciones invasoras y no invasoras; las mayores  frecuencias se observaron en Francia (46,1%) y España (43,6%). En otro análisis  realizado en España se encontró que 40,1 % de los aislamientos obtenidos de  niños menores de 5 años con infecciones invasoras eran resistentes a la  eritromicina<SUP>(25)</SUP>. Además, 55,6% de los aislamientos con  susceptibilidad disminuida a la penicilina también resultaron resistentes a la  eritromicina<SUP>(25)</SUP>. Estas frecuencias son similares a las encontradas  ahora en México (38,2%) y Venezuela (32,9%). Las menores frecuencias de  aislamientos resistentes observadas en el estudio europeo correspondieron a  Austria (10,0%) y Portugal (10,3%)<SUP>(20)</SUP>, aún así, más altas que las  informadas aquí para Colombia (4,3%), Paraguay (5,5%) y Brasil (6,1%). Los  autores atribuyen esta resistencia al uso de macrólidos en el tratamiento de  enfermedades invasoras causadas por aislamientos de S. <I>pneumoniae  </I>resistentes a la penicilina<SUP>(20)</SUP>.</FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana><B>Resistencia al cloranfenicol</B></FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>Al comparar estos resultados con los obtenidos por  SIREVA entre 1994 y 1999<SUP>(3)</SUP> se observó una dismi</FONT><FONT size=2 face=Verdana>nución general en la resistencia (de 11,5% a 3,9%; <I>P </I>&lt; 0,001), especialmente en Colombia (de 12,6% a 4,9%) y México (de  52,9% a 17,2%). La frecuencia de aislamientos resistentes al cloranfenicol  observada en la mayoría de los países participantes en SIREVA II resultó similar  a la informada en Canadá (2,2%)<SUP>(22)</SUP> y en algunos países europeos  participantes en el Sistema Europeo de Vigilancia de las Resistencias a los  Agentes Antimicrobianos<SUP>(20)</SUP>, como Italia (6,7%)<SUP>(26)</SUP>,  Bélgica (2,7%)<SUP>(20)</SUP> y Portugal (2,3%)<SUP>(24)</SUP>. Por su parte,  los valores más elevados, encontrados en México, Cuba y Venezuela, son similares  a los de Francia (14,7%) y España (25,8%)<SUP>(20)</SUP>. En Túnez<SUP>(27)  </SUP>se encontró que 21% de los aislamientos resistentes a la eritromicina lo  era también al cloranfenicol, algo similar a lo observado en México y Venezuela.  El surgimiento de la resistencia de <I>S. pneumoniae </I>al cloranfenicol puede  estar asociado con el uso de ese antibiótico en el tratamiento de la meningitis  bacteriana y, generalmente, se combina con la resistencia a otros  antimicrobianos<SUP>(21)</SUP>.</FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana><B>Resistencia según el serotipo de </B><I><b>S.  pneumoniae</b></I></FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>En este estudio, la resistencia al SXT estuvo  asociada especialmente con los serotipos 5, 6B, 9V, 14, 19F y 23F. En un estudio  realizado en Bulgaria, esta asociación se encontró con los serotipos 23F, 19F y  el serogrupo 9<SUP>(28)</SUP>. La asociación de determinados serotipos con la  resistencia a la eritromicina en los 10 países estudiados aquí confirmó lo  observado en Portugal, donde los aislamientos correspondientes a los serogrupos  6 y 19 y el serotipo 14 mostraron una mayor frecuencia de  resistencia<SUP>(24)</SUP>.</FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana><B>Multirresistencia</B></FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>Es importante resaltar que se observó un incremento  significativo en la frecuencia de la resistencia a múltiples antibióticos en  este estudio (9,5%) con respecto a lo informado por Hortal y  colaboradores<SUP>(8)</SUP> para el período 1994-1999 (7,5%; RR = 1,28; IC95%:  1,11a 1,48; <I>P </I>&lt; 0,01). El patrón de resistencia más frecuente fue a la  penicilina, el SXT y la eritromicina, con o sin resistencia al cloranfenicol  (61,5% </FONT><FONT size=2 face=Verdana>de los aislamientos con resistencia múltiple); esto  coincide con lo informado por Dias y colaboradores para Portugal  (47%)<SUP>(24)</SUP>.</FONT></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>Al analizar estos resultados se deben tener  presente algunas limitaciones. Al basarse solamente en los datos enviados por  los laboratorios no se contó con los denominadores poblacionales, lo que impidió  medir la carga de la enfermedad ocasionada por <I>S. pneumoniae </I>en la  población estudiada. Por otra parte, debido a que esta vigilancia se realiza a  través de los laboratorios y en forma voluntaria, podría haber interrupciones en  el envío continuo de aislamientos a los centros de referencia. Sin embargo, la  exitosa experiencia acumulada por SIREVA y SIREVA II con esta cohesionada red de  laboratorios de América Latina y el Caribe, la gran cantidad de aislamientos  estudiados y la calidad de los procedimientos de control  realizados<SUP>(17)</SUP> validan los resultados generados y confirman la  utilidad de esta información para diseñar y poner en marcha acciones preventivas  y tomar decisiones sobre el esquema terapéutico adecuado para el tratamiento de  las enfermedades invasoras ocasionadas por <I>S. pneumoniae.</I></FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>Por tanto, se puede concluir que en los 10 países  de América Latina y el Caribe estudiados se observó un aumento en la frecuencia  de aislamientos de <I>S. pneumoniae </I>resistentes al SXT y la eritromicina,  así como una disminución en la proporción de aislamientos resistentes al  cloranfenicol. Todos los aislamientos fueron sensibles a la vancomicina. Estas  tendencias mostraron diferencias entre los países estudiados.</FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>El incremento en la frecuencia de aislamientos  resistentes a antibióticos observado en la mayoría de los países y su tendencia  general a aumentar demuestran la necesidad de que los países implementen las  políticas recomendadas por la OMS<SUP>(7)</SUP>. En primer lugar, se debe  controlar el uso indiscriminado de los antibióticos y reconsiderar su empleo en  el tratamiento empírico de las enfermedades invasoras ocasionadas por <I>S.  pneumoniae, </I>lo que contribuiría a detener esa tendencia.</FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>Se debe mantener y fortalecer este tipo de  vigilancia, ya que permite registrar los cambios en los patrones de resistencia  a patógenos de interés para la salud pública en los países de la Región. Esta  información debe tomarse en cuenta para tomar decisiones terapéuticas más  adecuadas, que se traducirán en el empleo prudente de los  antimicrobianos.</FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana><B>Afiliación de los autores</B></FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana><SUP>1</SUP>Instituto Nacional de Salud, Bogotá,  Colombia;<SUP>2 </SUP>Instituto Nacional de Enfermedades Infecciosas Dr. Carlos  G. Malbrán, Buenos Aires, Argentina;<SUP>3 </SUP>Instituto Adolfo Lutz, Sâo  Paulo, Brasil;<SUP>4</SUP> Fundação Oswaldo Cruz, Sâo Paulo, Brasil;<SUP>5</SUP> Instituto de Salud Pública, Santiago, Chile,<SUP>6</SUP> Instituto de Medicina  Tropical Pedro Kourí, La Habana, Cuba;<SUP>7</SUP> Instituto Nacional de Salud  Pública, Cuernavaca, Morelos, México;<SUP>8</SUP> Instituto de Diagnóstico y  Referencia Epidemiológicos, México, D.F., México;<SUP>9</SUP> Laboratorio  Central de Salud Pública, Asunción, Paraguay;<SUP>10 </SUP>Hospital Infantil Dr.  Robert Reid Cabral, Santo Domingo, República Dominicana;<SUP>11</SUP> Servicio  Nacional de Laboratorios de Salud Pública, Montevideo, Uruguay;<SUP>12</SUP>  Instituto Nacional de Higiene Rafael Rangel, Caracas, Venezuela;<SUP>13</SUP> Organización Panamericana de la Salud, Washington, D.C., Estados Unidos de  América;<SUP>14</SUP> Grupo SIREVA II: Argentina: Sofía Fossati, Paula Gagetti,  Marisa Rodríguez y Elsa Chávez, Instituto Nacional de Enfermedades Infecciosas  Dr. Carlos G. Malbrán, Buenos Aires. Brasil: Maria Luiza L. S. Guerra y Samanta  Cristine G. Almeida, Instituto Adolfo Lutz, Sâo Paulo; Chile: Ingrid Heitmann,  Bianca Rojas y Julio García, Instituto de Salud Pública, Santiago; Rosanna Lagos  y Mabel Seoane, Centro para Vacunas en Desarrollo, Santiago. Colombia: Olga  Marina Sanabria, María Victoria Ovalle y Jaime Moreno, Instituto Nacional de  Salud; Fernando de la Hoz, Universidad Nacional, Bogotá; Desiree Pastor, OPS,  Bogotá. Cuba: Miriam Pérez Monrás, Gilda Toraño Peraza, Kiomy Fuentes Gort y  Alina Llops Hernández, Instituto de Medicina Tropical Pedro Kourí, La Habana;  Andrés Sambrano, Ministerio de Salud Pública, La Haba</FONT><FONT size=2 face=Verdana>na. México: María Noemí Carnalla Barajas, María  Elena Velázquez Meza, Instituto Nacional de Salud Pública, Cuernavaca, Morelos;  José Luis Arredondo García, Instituto Nacional de Pediatría, México, D.F.;  Fortino Solórzano Santos, Hospital de Pediatría, Centro Médico Nacional Siglo  XXI, México, D.F.; Domingo Sánchez Francia, Hospital del Niño Morelense,  Cuernavaca, Morelos; Patricia Gabino Noriega, Susana Jiménez Moreno, Enrique  Herrera González y Sugei Janette Gámez Contreras, Instituto de Diagnóstico y  Referencia Epidemiológicos, México, D.F.; Marco Antonio González García,  Dirección General de Epidemiología, México, D.F. Paraguay: Rossana Franco,  Laboratorio Central de Salud Pública, Asunción; Gloria Gómez, Hospital Nacional  de Itaugua, Asunción; Juana Ortellado, Hospital de Clínicas, Asunción; Myrian  Leguizamón, Instituto de Previsión Social, Asunción; Beatriz Quiñónez, Hospital  General Pediátrico, Asunción. República Dominicana: Chabela Peña, Hilma Coradín,  Josefina Fernández y Mirna Novas, Hospital Infantil Dr. Robert Reid Cabral,  Santo Domingo; Gilda Tolari, Hospital Plaza de la Salud, Santo Domingo. Uruguay:  Gabriel Pérez Giffoni, María Albini y Viviana Félix, Servicio Nacional de  Laboratorios de Salud Pública, Montevideo; María Hortal, Hospital Pereira  Rossell, Montevideo; Coral Fernández, Hospital Escuela del Litoral, Montevideo.  Venezuela: Damarys Sánchez, Instituto Nacional de Higiene Rafael Rangel,  Caracas.</FONT></P>     <P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana><B>Agradecimientos. </B>Este estudio recibió  financiamiento de la OPS, Canadian International Development Agency y cada uno  de los países participantes. Se agradece la colaboración de los miembros del  Grupo SIREVA Vigía, integrado por: Argentina: Cecilia Vescina, Hospital de Niños  Sor Maria Ludovica, La Plata, Buenos Aires; Martha Von Specht, Hospital  Provincial de Pediatría, Posadas; Diana Gómez y Victoria Monzani, Instituto  Nacional de Epidemiología J. H. Jara y Hospital Materno Infantil Don V.  Tetamanti, Mar del Plata; Clara Mayoral, Hospital de Niños Dr. O. Alassia, Santa  Fe; Andrea</FONT> <FONT size=2 face=Verdana>Badano, Hospital de Niños Dr. V. J Vilela, Rosario;  Claudia Hernández, Hospital de Pediatría Dr. J. P. Garrahan, Capital Federal;  Cristina Pérez, Hospital Provincial Castro Rendón, Neuquén; María José Rial,  Hospital de Niños Dr. Pedro de Elizalde, Capital Federal; Lydia Carvajal,  Hospital de Niños Santísima Trinidad, Córdoba; Adriana Procopio, Hospital de  Niños Dr. Ricardo Gutiérrez, Capital Federal. Brasil: Lucia R. Ferraz y Regilma  Oliveira, Coordenação Geral dos Laboratórios de Saúde Pública, Sâo Paulo;  Márcia L. Carvalho y Fernando Barros, Secretaria de Vigilância em Saúde,  Ministério da Saúde; Profissionais de Rede de Laboratórios Centrais de Saúde  Pública (LACENs) y Rede de Laboratórios Regionais do Instituto Adolfo Lutz, São  Paulo; Telma R. M. P. Carvalhanas, Centro de Vigilância Epidemiológica, São  Paulo; Cristiana Nascimento Carvalho, Hospital Clínicas, Faculdade de Medicina  Federal, Bahia; Paulo Augustos M. Camargos, Hospital Universitário,  Universidade Federal, Minas Gerais; Orlando Cesar Mantese, Hospital das  Clínicas, Faculdade de Medicina Federal, Uberlândia; Ana Lucia S. S. Andrade,  Departamento de Saúde Coletiva, Universidade Federal, Goiás; Ruben Schindler  Maggi, Instituto Materno-Infantil, Recife; Eitan N. Berezin, Santa Casa, São  Paulo. Chile: Servicios de Salud de Aconcagua, Antofagasta, Araucanía Norte,  Araucanía Sur, Arauco, Arica, Atacama, Aysen Bío-Bío, Concepción, Coquimbo,  Iquique, Llanchipal, Magallanes, Maule, Metropolitano Central, Metropolitano  Norte, Metropolitano</FONT><FONT size=2 face=Verdana>Occidente, Metropolitano Oriente, Metropolitano  Sur, Metropolitano Sur-Oriente, Ñuble, O'Higgins, Osorno, Talcahuano, Valdivia,  Valparaíso San Antonio y Viña del Mar-Quillota. Colombia: Sandra Núñez,  Laboratorio de Salud Pública (LSP), Bogotá; María Eugenia Gómez e Hilda Álvarez,  LSP, Antioquia; María Beatriz Olaya y Martha Garner, LSP, Valle; Vianney  Portilla, LSP, Santander; Alberto de la Ossa, LSP, Caldas; Luz Stella Álzate,  LSP, Risaralda; Gladys Mora, LSP Norte, Santander; Martha Uzeta, Clínica del  Niño, Bogotá; Cuba: Ge</FONT><FONT size=2 face=Verdana>rardo Martínez, Antonio Valdés, Antonio Pérez,  Félix Dickinson, María del Carmen Batle, Instituto de Medicina Tropical Pedro  Kourí, La Habana; Miguel A. Galindo, Ministerio de Salud Pública, La Habana.  México: Verónica Andrade Almarz, Hospital del Niño Morelense, Cuernavaca,  Morelos; Rosa María Hinojosa Robles, Hospital Universitario, Monterrey, Nuevo  León; Rosario Vázquez Larios, Instituto Nacional de Cardiología, México, D.F.;  Adolfo Pérez Miravete, Hospital Infantil de México, México, D.F.; Rayo Morfín  Otero, Hospital Civil, Guadalajara, Jalisco; Fray Antonio Alcalde y Andrés  Flores Santos, Hospital General, San Luis Potosí; Juan Carlos Tinoco Fávila,  Hospital General, Durango; Margarita Gutiérrez Ahuatzin, Hospital del Niño  Poblano, Puebla; Juan Manuel Barajas Magallón, Hospital Infantil, Morelia,  Michoacán; Manuel Ybarra, Centro Médico Nacional Adolfo Ruiz Cortínez,  Veracruz; Maricela Garzón Chiapa, Laboratorio Estatal de Salud Pública,  Aguascalientes; Sergio Jesús López Sierra, Laboratorio Estatal de Salud Pública,  Guanajuato; Laura Contreras Mioni, Laboratorio Estatal de Salud Pública, Puebla;  Carmen Garza Gallegos, Laboratorio Estatal de Salud Pública, Monterrey, Nuevo  León; Héctor López López, Laboratorio Estatal de Salud Pública, Chihuahua; Irma  Villegas Esquivel, Laboratorio Estatal de Salud Pública, Zacatecas; Sandra M.  Suárez Moreno, Hospital Infantil Eva Sámano López Mateos, Morelia, Michoacán;  Virginia Martínez Trejo y Hugo Caballero Novara, Hospital Pediátrico La Villa,  México, D.F.; Eduardo Velázquez Medina, Hospital Pediátrico de Iztapalapa,  México, D.F. Paraguay: Mario Martínez, Mercedes Carrillo, Mercedes Álvarez,  Julio César Manzur y Héctor F. Fariña, Laboratorio Central de Salud Pública,  Asunción; Edelira Ayala, Instituto de Medicina Tropical, Asunción; Miryan Rivas,  Hospital de Clínicas, Asunción; Grismilda Gómez, Centro Materno Infantil,  Asunción; Alba María Ropero, OPS, Asunción; Juan Irala, Hospital Militar,  Asunción. República Dominicana: Olivia Henríquez, Hospital Materno Infantil San  Lorenzo </FONT><FONT size=2 face=Verdana>de Los Mina, Santo Domingo; Florencia Méndez,  Hospital Dr. Luis Eduardo Aybar, Santo Domingo; Elba Holguín y Genara Santana,  Hospital Dr. Arturo Grullón, Santiago; Milagro Peña, Hospital Infantil Dr.  Robert Reid Cabral, Santo Domingo. Uruguay: Gabriela Algorta, Hospital Pereira  Rossell, Montevideo; Mónica Finozzi, Hospital Salto, Salto; Isabel González,  Casa de Galicia, Montevideo; Luis Jorge, Hospital de Treinta y Tres, Treinta y  Tres; Nora Milanese, Hospital de Maldonado, Maldonado; Laura Pivel, IMPASA,  Montevideo. Venezuela: Sofía Toro, Sandra Hernández, Betty Tarazona y Ángel  Flores, Instituto Nacional de Higiene Rafael Rangel, Caracas; Lizbeth Camacho y  María Victoria Benítez, Ministerio de Salud, Caracas; Amando Martí, Hospital  Universitario, Caracas.</FONT></P>     <P align="justify">&nbsp;</P>     <P align="justify"><FONT size=3 face=Verdana><b>Referencias</b></FONT></P>     <!-- ref --><P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>1. Musher DM. Infections caused by <I>Streptococcus pneumoniae: </I>clinical spectrum, pathogenesis, immunity, and  treatment. Rev InfectDis. 1992;14(4):801-7.</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=398987&pid=S1024-0675201000010000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>2. Appelbaum PC. Resistance among <I>Streptococcus  pneumoniae: </I>implications for drug selection. Clin InfectDis. 2002;34(12):  1613-20.</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=398988&pid=S1024-0675201000010000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>3.&nbsp;Di Fabio JL, Castañeda E, Agudelo CA, De La Hoz  F, Hortal MD, Camou T, et al. Evolution of <I>Streptococcus pneumoniae  </I>serotypes and penicillin susceptibility in Latin American, SIREVA-Vigía  Group, 1993 to 1999. Pediatr Infect Dis J. 2001 ;20( 10):959-67.</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=398989&pid=S1024-0675201000010000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>4.&nbsp;Agudelo CI, Moreno J, Sanabria O, Castañeda E. <I>Streptococcus pneumoniae: </I>evolución de  los serotipos y los patrones de sensibilidad antimicrobiana en aislamientos  invasivos en 11 años de vigilancia en Colombia (1994-2004). Grupo colombiano de  trabajo en <I>S. pneumoniae. </I>Biomédica. 2006 ;26(2): 234-49.</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=398990&pid=S1024-0675201000010000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>5.&nbsp;Brandileone MCC, Tadeu Casagrande S,  Guerra MLLS, Zanella R, Andrade ALSS, Di Fabio JL. Increase in numbers of  beta-lactamresistant invasive <I>Streptococcus pneumoniae </I>in Brazil and the  impact of conjugate vaccine coverage. J Med Microbiol.  2006;55(5):567-74.</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=398991&pid=S1024-0675201000010000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>6.&nbsp;Faccone D, Andres P, Galas M,  Tokumoto M, Rosato A, Corso A. Emergence of a <I>Streptococcus pneumoniae  </I>clinical isolate highly resistant to telithromycin and fluoroquinolones. J  Clin Microbiol. 2005;43(11):5800-3.</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=398992&pid=S1024-0675201000010000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>7.&nbsp;Organización Mundial de la Salud.  Estrategia mundial de la OMS para contener la resistencia a los antimicrobianos.  Ginebra: OMS; 2001. (WHO/CDS/ CSR/DRS/2001.2.)</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=398993&pid=S1024-0675201000010000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>8.&nbsp;Hortal M, Lovgren M, De la Hoz F,  Agudelo CI, Brandileone MC, Camou T, et al. Antibiotic resistance in <I>Streptococcus pneumoniae </I>in six Latin American countries: biological and  therapeutic implications. Microbial Drug Resistance.  2001;7(4):391-401.</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=398994&pid=S1024-0675201000010000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>9.&nbsp;Gabastou JM, Agudelo CI, Brandileone  MCC, Castañeda E, Lemos APS, Di Fabio JL, et al. Caracterización de aislamientos  invasivos de <I>S. pneumoniae, H. influenzae </I>y <I>N. meningitidis </I>en  América Latina y el Caribe: SIREVA II, 2000-2005. Rev Panam Salud Publica. 2008;  24(1): 1-15.</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=398995&pid=S1024-0675201000010000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>10.&nbsp;Di Fabio JL, Homma A, Quadros C. Pan  American Health Organization epidemiologic surveillance network for <I>Streptococcus pneumoniae. </I>Microb Drug Resist. 1997;3(2):  131-3.</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=398996&pid=S1024-0675201000010000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>11.&nbsp;Castañeda E, Agudelo CI, Regueira M, Corso  A, Brandileone MCC, Casagrande ST, et al. The SIREVA II project, 2000-2005: a  laboratory based surveillance of <I>Streptococcus pneumoniae </I>invasive  disease in children in ten Latin American countries. Ped Infect Dis J. (Aceptado  para publicación).</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=398997&pid=S1024-0675201000010000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>12.&nbsp;Organización Panamericana de la Salud,  Instituto Nacional de Salud de Colombia. Programa de vigilancia de los serotipos  y resistencia antimicrobiana de <I>Streptococcus pneumoniae </I>y <I>Haemophilus  influenzae. </I>Manual de procedimientos. Santa Fe de Bogotá: INS; 2004.  Disponible en http://www.paho.org/Spanish/AD/THS/EV/LABS-manual-vigilancia-serotipos. pdf. Acceso el 1 de marzo de  2009.</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=398998&pid=S1024-0675201000010000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>13.&nbsp;Clinical and Laboratory Standards  Institute. Performance standards for antimicrobial disk susceptibility test.  9th ed. Wayne, PA.: CLSI; 2006. (Document M2-A9. CLSI.)</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=398999&pid=S1024-0675201000010000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>14.&nbsp;Clinical and Laboratory Standards  Institute. Methods for dilution antimicrobial susceptibility tests for bacteria  that grow aerobically. 7thed. Wayne, PA.: CLSI; 2006. (Document M7-A7.  CLSI.)</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=399000&pid=S1024-0675201000010000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>15.&nbsp;Clinical and Laboratory Standards  Institute. Performance standards for antimicrobial susceptibility testing.  Wayne, PA.: CLSI; 2006. (Document M100-S16.)</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=399001&pid=S1024-0675201000010000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>16.&nbsp;Dean AG, Dean JA, Columbier D, Burton AH,  Brendel KA, Smith DC, et al. Epi Info v. 6.0: a word processing, data-base and  statistics program for epidemiology on microcomputers. 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Rev Med Chil. 2002;130(11): 1265-72.</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=399004&pid=S1024-0675201000010000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>19.&nbsp;Hsueh PR, Teng LJ, Lee LN, Yang PC, Ho SW,  Luh KT. Extremely high incidence of macrolide and trimethoprim-sulfamethoxazole  resistance among clinical isolates of <I>Streptococcus pneumoniae </I>in  Taiwan. 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Antimicrobial resistance among clinical isolates of <I>Streptococcus pneumoniae </I>in Canada during 2000. Antimicrob Agents  Chemother. 2002;46(5): 1295-301.</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=399008&pid=S1024-0675201000010000300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>23.&nbsp;Klugman KP, Lonks JR. Hidden epidemic to  macrolide-resistant pneumococci. Emerg Infect Dis. 2005;11(6):802-7.</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=399009&pid=S1024-0675201000010000300023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>24.&nbsp;Dias R, Louro D, Canica M. Antimicrobial  susceptibility of invasive <I>Streptococcus pneumoniae </I>isolates in Portugal  over an 11-year period. Antimicrob Agents Chemother. 2006;  50(6):2098-105.</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=399010&pid=S1024-0675201000010000300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>25.&nbsp;Oteo J, Lazaro E, de Abajo FJ, Baquero F,  Campos J, Spanish Members of the European Antimicrobial Resistance Surveillance  System. Trends in antimicrobial resistance in 1,968 invasive <I>Streptococcus  pneumoniae </I>strains isolated in Spanish hospitals (2001 to 2003): decreasing  penicillin resistance in children's isolates. J Clin Microbiol. 2004;42(12):  5571-7.</FONT></P>     <!-- ref --><P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>26.&nbsp;Montagnani F, Stolzuoli L, Zanchi A,  Cresti S, Cellesi C. Antimicrobial susceptibility of <I>Streptococcus pyogenes  </I>and <I>Streptococcus pneumoniae :surveillan</I>ce from 1993 to 2004 in  Central Italy. J Chemother. 2006;18(4):389-93.</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=399012&pid=S1024-0675201000010000300026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>27.Rachdi M, Boutiba-Ben Boubaker I, Moalla S,  Smaoui H, Hammami A, Kechrid A, et al. Phenotypic and genotypic characterization  of macrolide resistant <I>Streptococcus pneumoniae </I>in Tunisia. Pathol Biol.  2008;56(3): 125-9.</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=399013&pid=S1024-0675201000010000300027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><FONT size=2 face=Verdana>28. Setchanova L, Tomasz A. Molecular  characterization of penicillin-resistant <I>Streptococcus pneumoniae  </I>isolates from Bulgaria. J Clin Microbiol.  1999;37(3):638-48.</FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=399014&pid=S1024-0675201000010000300028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><P align="justify">&nbsp;</P>      ]]></body><back>
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