<?xml version="1.0" encoding="ISO-8859-1"?><article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance">
<front>
<journal-meta>
<journal-id>1012-2966</journal-id>
<journal-title><![CDATA[Gaceta Médica Boliviana]]></journal-title>
<abbrev-journal-title><![CDATA[Gac Med Bol]]></abbrev-journal-title>
<issn>1012-2966</issn>
<publisher>
<publisher-name><![CDATA[Facultad de Medicina de la Universidad Mayor de San Simón]]></publisher-name>
</publisher>
</journal-meta>
<article-meta>
<article-id>S1012-29662015000100002</article-id>
<title-group>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Estandarización de la técnica para la obtención de trypomastigotes en células 3T3 a partir de una cepa local de epimastigotes de Tripanosoma cruzi]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Acquisition mode pesticides and drugs in intoxicated patients treated in emergency Hospital Clínico Viedma]]></article-title>
</title-group>
<contrib-group>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Córdova Rojas]]></surname>
<given-names><![CDATA[Marisol]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A01"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Cruz Torrico]]></surname>
<given-names><![CDATA[Mary]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A02"/>
</contrib>
<contrib contrib-type="author">
<name>
<surname><![CDATA[Torrico]]></surname>
<given-names><![CDATA[Faustino]]></given-names>
</name>
<xref ref-type="aff" rid="A03"/>
</contrib>
</contrib-group>
<aff id="A01">
<institution><![CDATA[,Universidad Mayor de San Simón Facultad de Medicina Instituto de Investigaciones Biomédicas (IIBISMED)]]></institution>
<addr-line><![CDATA[Cochabamba ]]></addr-line>
<country>Bolivia</country>
</aff>
<aff id="A02">
<institution><![CDATA[,Universidad Mayor de San Simón Facultad de Medicina Laboratorio de Investigación Médicas (LABIMED)]]></institution>
<addr-line><![CDATA[Cochabamba ]]></addr-line>
<country>Bolivia</country>
</aff>
<aff id="A03">
<institution><![CDATA[,Universidad Mayor de San Simón Facultad de Medicina ]]></institution>
<addr-line><![CDATA[Cochabamba ]]></addr-line>
<country>Bolivia</country>
</aff>
<pub-date pub-type="pub">
<day>29</day>
<month>06</month>
<year>2015</year>
</pub-date>
<pub-date pub-type="epub">
<day>29</day>
<month>06</month>
<year>2015</year>
</pub-date>
<volume>38</volume>
<numero>1</numero>
<fpage>6</fpage>
<lpage>9</lpage>
<copyright-statement/>
<copyright-year/>
<self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.bo/scielo.php?script=sci_arttext&amp;pid=S1012-29662015000100002&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.bo/scielo.php?script=sci_abstract&amp;pid=S1012-29662015000100002&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><self-uri xlink:href="http://www.scielo.org.bo/scielo.php?script=sci_pdf&amp;pid=S1012-29662015000100002&amp;lng=en&amp;nrm=iso"></self-uri><abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Objetivo: evaluar el empleo de cultivos celulares para la obtención de tripomastigotes en células 3T3, a partir de una cepa local de epimastigotes de Tripanosoma cruzi. Método: se realizó cultivo in vitro de células 3T3 en medio DMEM-SBF al 10% más penicilina estreptomicina, a 37°C, 95% de humedad y 5% de CO2 al séptimo día, fueron infectados con epimastigotes de T. cruzi cepa TcV, aislados de pacientes con Chagas agudo y cultivados preliminarmente en medios bifásicos como NNN y LIT. Resultados: a los 14 días de infección se observó al parásito en las formas: de amastigotes (forma intracelular), posteriormente la tripomastigote (forma extracelular) que fueron liberados al medio una vez lisadas las células infectadas. Posteriores sub cultivos de células 3T3 con trypomastigotes obtenidos a partir de los epimastigotes mejoran la obtención de T. cruzi. Conclusiones: es posible la obtención de trypomastigotes a partir de una cepa local de epimastigotes recreando el ciclo biológico del parásito in vitro.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Objective: to evaluate the use of cell cultures for the production of trypomastigotes in 3T3 cells, from a local strain of Trypanosoma cruzi epimastigotes. Method: we previously performed growing 3T3 cells in DMEM-10% FBS more penicillin-streptomycin in vitro at 37 °C, 95% humidity and 5% CO2 on the seventh day, they were infected with T. cruzi epimastigotes TcV strain, isolated from patients with acute Chagas and preliminarily grown in biphasic media as NNN and LIT. Results: after 14 days of infection was observed the parasite forms: extracellular) that were released into the infected cells once lysed. Subsequent sub 3T3 cell cultures trypomastigotes obtained from epimastigotes obtaining improved T. cruzi-TcV. Conclusions: it is possible to obtain trypomastigotes from a local strain epimastigotes recreating the life cycle of the parasite in vitro.]]></p></abstract>
<kwd-group>
<kwd lng="es"><![CDATA[cultivos celulares]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[epimastigotes]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[trypomastigotes]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[células 3T3]]></kwd>
<kwd lng="es"><![CDATA[cepa de T. cruzi - TcV.]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[cell culture]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[epimastigotes]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[trypomastigotes]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[3T3 cell]]></kwd>
<kwd lng="en"><![CDATA[strain of T. cruzi - TCV]]></kwd>
</kwd-group>
</article-meta>
</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font size="2" face="Verdana"><b>Artículo Original</b></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><font face="Verdana"><b><font size="4">Estandarizaci&oacute;n de la t&eacute;cnica para la obtenci&oacute;n de trypomastigotes en c&eacute;lulas 3T3 a partir de una cepa local de epimastigotes de Tripanosoma cruzi</font></b></font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="center"><font face="Verdana"><b><font size="3">Acquisition mode pesticides and drugs in intoxicated patients treated in emergency Hospital Clínico Viedma</font></b></font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><b>Marisol C&oacute;rdova Rojas<sup>1,a</sup>, Mary Cruz Torrico<sup>2,a</sup>, Faustino Torrico<sup>3,b</sup>, Eduardo L. Su&aacute;rez Barrientos<sup>3,b</sup></b></font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><sup>1</sup>Instituto de Investigaciones Biom&eacute;dicas (IIBISMED), Facultad de Medicina, Universidad Mayor de San Sim&oacute;n, Cochabamba Bolivia. <sup>2</sup>Laboratorio de Investigaci&oacute;n M&eacute;dicas (LABIMED),Facultad de Medicina, Universidad Mayor de San Sim&oacute;n, Cochabamba Bolivia.<sup>3</sup>Facultad de Medicina, Universidad Mayor de San Sim&oacute;n, Cochabamba Bolivia. <sup>a</sup>Bioqu&iacute;mico; <sup>b</sup>Médico.*Correspodencia a: N. Marisol C&oacute;rdova R. Correo electrónico: <a href="mailto:molcar1563@gmail.com">nmarcordova@yahoo.com</a>.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Recibido el 6 febrero de 2015</font><font face="Verdana">.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Aceptado el  18 de marzo de 2015</font><font face="Verdana">.</font></p>     <p align="justify"></p>     <p align="justify"></p> <hr align="JUSTIFY">     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Objetivo</b>: evaluar el empleo de cultivos celulares para la obtenci&oacute;n de tripomastigotes en c&eacute;lulas 3T3, a partir de una cepa local de epimastigotes de Tripanosoma cruzi. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Método</b>: se realiz&oacute; cultivo in vitro de c&eacute;lulas 3T3 en medio DMEM-SBF al 10% m&aacute;s penicilina&nbsp;estreptomicina, a 37&deg;C, 95% de humedad y 5% de CO2 al s&eacute;ptimo d&iacute;a, fueron infectados con epimastigotes de T. cruzi cepa TcV,&nbsp;aislados de pacientes con Chagas agudo y cultivados preliminarmente en medios bif&aacute;sicos como NNN y LIT. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Resultados</b>: a los 14 d&iacute;as de&nbsp;infecci&oacute;n se observ&oacute; al par&aacute;sito en las formas: de amastigotes (forma intracelular), posteriormente la tripomastigote (forma extracelular) que fueron liberados al medio una vez lisadas las c&eacute;lulas infectadas. Posteriores sub cultivos de c&eacute;lulas 3T3 con trypomastigotes&nbsp;obtenidos a partir de los epimastigotes mejoran la obtenci&oacute;n de T. cruzi.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> <b>Conclusiones</b>: es posible la obtenci&oacute;n de trypomastigotes a&nbsp;partir de una cepa local de epimastigotes recreando el ciclo biol&oacute;gico del par&aacute;sito in vitro.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Palabras</b> <b>claves</b>: cultivos celulares, epimastigotes, trypomastigotes, c&eacute;lulas 3T3, cepa de T. cruzi - TcV.</font></p> <hr align="JUSTIFY">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> <b>Abstract</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Objective</b>: to evaluate the use of cell cultures for the production of trypomastigotes in 3T3 cells, from a local strain of Trypanosoma cruzi epimastigotes.  </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Method</b>: we previously performed growing 3T3 cells in DMEM-10% FBS more penicillin-streptomycin in vitro at 37 &deg;C,&nbsp;95% humidity and 5% CO2 on the seventh day, they were infected with T. cruzi epimastigotes TcV strain, isolated from patients with acute&nbsp;Chagas and preliminarily grown in biphasic media as NNN and LIT.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> <b>Results</b>: after 14 days of infection was observed the parasite forms:&nbsp;extracellular) that were released into the infected cells once lysed. Subsequent sub 3T3 cell cultures trypomastigotes obtained from&nbsp;epimastigotes obtaining improved T. cruzi-TcV.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"> <b>Conclusions</b>: it is possible to obtain trypomastigotes from a local strain epimastigotes recreating the life cycle of the parasite in vitro.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Keywords</b>: cell culture, epimastigotes, trypomastigotes, 3T3 cell, strain of T. cruzi - TCV.</font></p> <hr align="JUSTIFY">     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La enfermedad de Chagas o Tripanosomiasis Americana es una antropozoonosis debida al protozoario flagelado Trypanosoma cruzi. Esta enfermedad es caracter&iacute;stica del continente americano y m&aacute;s particularmente de Latinoam&eacute;rica<sup>1,2</sup>.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">En Bolivia afecta m&aacute;s de la mitad de la extensi&oacute;n de su superficie territorial, siendo la cepa TcV uno de los principales causantes de la enfermedad de Chagas, con predominio en el&nbsp;territorio nacional.<sup>3-9</sup>.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">El Trypanosoma cruzi infecta una gran variedad de c&eacute;lulas nucleadas in vitro e in vivo, aunque presente tropismo por&nbsp;ciertos tipos celulares como c&eacute;lulas musculares y c&eacute;lulas ma-cr&oacute;fagas<sup>10,11</sup>. El par&aacute;sito atraviesa por una serie de estados&nbsp;de desarrollo denominados: trypomastigotes, amastigotes, y&nbsp;epimastigotes.<sup>8,10,12-16</sup>.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Los primeros cultivos realizados por investigadores, emplearon medios bif&aacute;sicos como el NNN (Medio de Novy, MacNeal y Nicolle), se verific&oacute; que formas tripomastigotes&nbsp;aparec&iacute;an en la fase estacionaria del cultivo sin embargo estos&nbsp;eran escasos para estudios posteriores. Estos tripomastigotes&nbsp;fueron denominados como tripomastigotes metac&iacute;clicos, ya&nbsp;que son parte de la transformaci&oacute;n de formas epimastigotes&nbsp;en medios que mimetizan el ambiente encontrado en el interior del tracto digestivo del insecto vector<sup>11,12</sup>. El proceso de&nbsp;transformaci&oacute;n se denomin&oacute; metaciclog&eacute;nesis.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Varios son los medios utilizados de forma rutinaria para el crecimiento de formas epimastigotas de T.cruzi sin embargo&nbsp;Camargo fue el primero en analizar sistem&aacute;ticamente el proceso de transformaci&oacute;n de epimastigotes en tripomastigotes&nbsp;usando el medio LIT(Medio de cultivo Liver Infusion Tryp-tose)<sup>2,3,11,12,14</sup></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Poco se ha descrito sobre la obtenci&oacute;n de trypomastigotes a partir de epimastigotes in vitro en nuestro medio. Sin embargo el hecho de que la forma epimastigote del T.cruzi pueda&nbsp;ser cultivado en medios ax&eacute;nicos nos abren la posibilidad con&nbsp;este trabajo, que formas trypomastigotas de la cepa local TcV,&nbsp;pueda ser obtenida a partir de epimastigotes de T. cruzi en&nbsp;forma no axenica sino a trav&eacute;s de cultivos celulares in vitro,&nbsp;a partir de estas cepas se podr&aacute; realizar otros estudios que&nbsp;nos permitir&aacute; comprender mejor aspectos relacionados a la&nbsp;enfermedad de Chagas.</font></p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana"><b>Material y métodos</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Obtenci&oacute;n de Epimastigotes de T. cruzi</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La cepa TcV de T. cruzi fue aislada y tipificada a partir de la muestra de sangre de un reci&eacute;n nacido, de la localidad de&nbsp;Punata que fue diagnosticado por microm&eacute;todo con Chagas&nbsp;cong&eacute;nito.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La muestra de sangre en la cual se encontraban los par&aacute;sitos fue cultivada previamente en el medio de cultivo LIT (infusi&oacute;n de h&iacute;gado y triptona) (Difco), a 27&deg;C, durante siete d&iacute;as,&nbsp;suplementado con Suero Bovino Fetal (SBF) inactivado.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">&bull; &nbsp;&nbsp;&nbsp;Cultivo de C&eacute;lulas 3T3</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">En el presente estudio, se emplearon c&eacute;lulas 3T3 (c&eacute;lulas fi-broblasticas de rat&oacute;n). Dichas c&eacute;lulas a una concentraci&oacute;n de 2 000 000 de c&eacute;lulas/ml fueron cultivadas por 96 hrs. en&nbsp;frascos de cultivo de 70 ml a 37&deg;C y 5% de CO<sup>2</sup> con DMEM&nbsp;(Dulbecco&rsquo;s Modified Eagle&rsquo;s Medium) (BioWhittaker) suple-mentados con SBF inactivado (SIGMA) al 10% m&aacute;s penicilina (100 Ul/ml) /estreptomicina (100 pgr/ml) (SIGMA).&nbsp;Una vez obtenida la monocapa de c&eacute;lulas, en los frascos de&nbsp;cultivo con un 80-90 % de confluencia se realiz&oacute; el cambio&nbsp;de medio por DMEM-SBF inactivado al 2% para detener la&nbsp;proliferaci&oacute;n celular.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">&bull; &nbsp;&nbsp;&nbsp;Infecci&oacute;n de las c&eacute;lulas 3T3</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Epimastigotes aislados del medio de cultivo LIT, resuspendidos en 10 ml de DMEM (Dulbecco&rsquo;s Modified Eagle&rsquo;s Medium) (BioWhittaker) al 2% fueron centrifugados por 15 minutos a 4 000 rpm, transcurrido este tiempo, se desech&oacute; el&nbsp;sobrenadante y se ajust&oacute; la concentraci&oacute;n de los mismos, a 15&nbsp;millones de epimastigotes por ml, los cuales fueron adicionados a la monocapa de c&eacute;lulas 3T3 con observaci&oacute;n diaria a&nbsp;trav&eacute;s del microscopio invertido.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">A los d&iacute;as 7 y 11 posinfecci&oacute;n, se realiz&oacute; el cambio de medio, para eliminar epimastigotes que no se hab&iacute;an transformado en trypomastigotes metac&iacute;clicos, asimismo se adicion&oacute; al nuevo medio de cultivo 500 pl plasma de pacientes negativos para la enfermedad de Chagas, dej&aacute;ndose al mismo,&nbsp;interactuar con el medio por 48 hrs., para que pueda activarse&nbsp;el sistema de complemento y de esta manera lisar a los epi-mastigotes existentes.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">&bull; &nbsp;&nbsp;&nbsp;Observaci&oacute;n de c&eacute;lulas 3T3 Infectadas</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Transcurridos 14 d&iacute;as de infecci&oacute;n los medios de cultivo fueron examinados a trav&eacute;s del microscopio invertido, para&nbsp;observar presencia o ausencia de c&eacute;lulas 3T3 infectadas, y divisar en el interior de las mismas la existencia de amastigotes.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">&bull; &nbsp;&nbsp;&nbsp;Obtenci&oacute;n y recolecci&oacute;n de Trypomastigotes extracelulares</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Al d&iacute;a 14-15 pos infecci&oacute;n, trypomastigotes extracelulares que se encuentran en el medio de cultivo, fueron recuperados en tubos falc&oacute;n de 50 ml con pipetas dispensables de&nbsp;10 ml est&eacute;riles y centrifugados a 1 200 rpm por cinco minutos para retirar los restos celulares existentes, el sobrenadante donde se encuentran los trypomastigotes fue retirado y&nbsp;transferido a un otro tubo falc&oacute;n, al cual se adiciono DMEM&nbsp;( Dulbecco&rsquo;s Modified Eagle&rsquo;s Medium) (BioWhittaker) al 2%</font> <font size="2" face="Verdana">cantidad suficiente para (c.s.p.) 50 ml, este fue nuevamente centrifugado a 4 000 rpm. por 20 minutos, transcurrido el&nbsp;tiempo de centrifugaci&oacute;n se retir&oacute; el sobrenadante, y el pellet&nbsp;de trypomastigotes fue resuspendido en 5 ml de medio para&nbsp;realizar el recuento de par&aacute;sitos en la c&aacute;mara de Neubauer.&nbsp;Los par&aacute;sitos obtenidos se emplearon para realizar subcultivos de trypomastigotes.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Al frasco de cultivo inicial, donde se encuentran c&eacute;lulas infectadas, se adicion&oacute; el medio DMEM al 2%, se llev&oacute; a incubar nuevamente, proceso que se repite a diario hasta obtener una gran cantidad de trypomastigotes que conllevan a la decolaci&oacute;n celular por sobreinfecci&oacute;n de estas.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana"><b><font size="3">Resultados</font></b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Mediante la infecci&oacute;n de c&eacute;lulas 3T3, por trypomastigotes metac&iacute;clicos, previa transformaci&oacute;n de formas epimastigotas&nbsp;a formas infectantes, se pudo obtener trypomastigotes semejantes a formas existentes en la sangre estableciendo de esta&nbsp;forma el ciclo completo de la cepa TcV in vitro.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Obtenci&oacute;n de trypomastigotes extracelulares en cultivo celular</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">I. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Al colocar epimastigotes, cepa TcV a la monocapa de&nbsp;c&eacute;lulas 3T3 (medio de cultivo celular) tardaron 11 d&iacute;as en la&nbsp;transformaci&oacute;n de epimastigotes a trypomastigotes metac&iacute;-clicos empleando el medio enriquecido de DMEM SBF al 2%.&nbsp;Transcurrido este tiempo se pudo observar c&eacute;lulas infectadas&nbsp;en cuyo interior se encontraban poblaciones de amastigotes,&nbsp;donde en algunas de estas c&eacute;lulas se observaba mayor movimiento lo cual nos hace suponer que se realizaba la diferenciaci&oacute;n de amastigotes a trypomastigotes (Figura 1).</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana">Figura 1. I)C&eacute;lula 3T3 infectada con la cepa TcV de trypanosoma cruzi II) Amastigotes intracelulares III) Trypomastigotes.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana"><img src="/img/revistas/gmb/v38n1/38n1a2-1.jpg" width="391" height="309"/></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">II. &nbsp;&nbsp;&nbsp;A partir del d&iacute;a 14 se observa que la cantidad de par&aacute;sitos va en aumento o crecimiento exponencial por d&iacute;a, as&iacute;&nbsp;como tambi&eacute;n el n&uacute;mero de c&eacute;lulas 3T3 infectadas, observ&aacute;ndose por lo tanto un aumento progresivo de c&eacute;lulas infectadas en proporci&oacute;n a la cantidad de par&aacute;sitos existentes y la</font> <font size="2" face="Verdana">monocapa celular se torna fr&aacute;gil y comienza a decolarse por la sobreinfecci&oacute;n celular (Figura 2).</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana">Figura 2. a) Abundante cantidad de C&eacute;lulas 3T3 infectadas con la cepa TcV de Trypanosoma cruzi.</font></p>     <p align="center"><font face="Verdana"><img src="/img/revistas/gmb/v38n1/38n1a2-2.jpg" width="445" height="227"></font></p>     <p align="center"> <font face="Verdana"><font size="2">Figura 2.</font> <font size="2">b) Monocapa de c&eacute;lulas 3T3 a punto de decolarse con presencia de trypomastigotes libres en el medio</font>.</font></p>     <p align="center"><font face="Verdana"><img src="/img/revistas/gmb/v38n1/38n1a2-4.jpg" width="438" height="221"></font></p>     <p align="center"><font face="Verdana"><font size="2">Figura 2.</font> <font size="2">c) Abundante cantidad de trypomastigotes extracelulares.</font></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="Verdana"><img src="/img/revistas/gmb/v38n1/38n1a2-3.jpg" width="464" height="290"></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Trypomastigotes a partir de T. cruzi cepa TcV El tiempo que tardaron en infectarse las c&eacute;lulas 3T3 en&nbsp;los sub cultivos celulares, con trypomastigotes obtenidos a&nbsp;partir del cultivo principal (cultivo madre) fue de siete d&iacute;as,&nbsp;obteni&eacute;ndose mayor n&uacute;mero de par&aacute;sitos a medida que&nbsp;transcurr&iacute;an los d&iacute;as, evidenci&aacute;ndose esto al realizar el recuento de trypomastigotes cada 24 horas y por observarse un&nbsp;mayor n&uacute;mero de c&eacute;lulas 3T3 infectadas (Figura 3).</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana">Figura 3. a) C&eacute;lula 3T3 infectada con la cepa TcV de trypanosoma cruzi</font><font face="Verdana">.</font></p>     <p align="center"><font face="Verdana"><img src="/img/revistas/gmb/v38n1/38n1a2-5.jpg" width="487" height="212"></font></p>     <p align="center"><font face="Verdana"><font size="2">Figura 3. b) Trypomastigotes en medio de cultivo DMEM al 2%.</font></font></p>     <p align="center"><font face="Verdana"><img src="/img/revistas/gmb/v38n1/38n1a2-6.jpg" width="496" height="215"></font></p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana"><b>Discusión</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Para la obtenci&oacute;n de trypomastigotes en c&eacute;lulas 3T3 a partir de una cepa local de epimastigotes de Trzpanosoma cruzi realizamos cultivos celulares, los cuales fueron infectados con&nbsp;epimastigotes de la cepa local TcV para obtener trypomasti-gotes para posteriores fines investigativos.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Los primeros cultivos realizados por investigadores, emplearon medios bif&aacute;sicos como el NNN donde se verific&oacute; que formas tripomastigotes aparec&iacute;an en la fase estacionaria del cultivo y que su porcentual aumentaba con el envejecimiento del cultivo<sup>11,12,14,17</sup>, sin embargo el porcentaje de&nbsp;transformaci&oacute;n de la forma epimastigote a tripomastigote&nbsp;empleando estos medios bif&aacute;sicos no est&aacute; totalmente definido dificult&aacute;ndose los estudios cuantitativos del crecimiento&nbsp;celular<sup>1,11,12,14,18</sup>. El desarrollo de medios monof&aacute;sicos (medio LIT), abrieron la posibilidad de realizar estudios cuantitativos<sup>3,11,14</sup>, sin embargo el porcentaje de transformaci&oacute;n y crecimiento de par&aacute;sitos eran relativamente peque&ntilde;os lo que&nbsp;pondr&iacute;a en duda el empleo de estos medios de cultivo para&nbsp;la obtenci&oacute;n de trypomastigotes en forma masiva, estas limitaciones hacen que investigadores como Velazco-Gamboa y&nbsp;Col. realicen estudios en cultivos celulares, empleando c&eacute;lulas&nbsp;Vero para obtener trypomastigotes de la cepa Munanta&nbsp;previa obtenci&oacute;n de trypomastigotes metaciclicos en el medio&nbsp;LIT<sup>5,11</sup>. En nuestros laboratorios se realizaron estudios similares, con cultivos celulares empleando c&eacute;lulas 3T3 para obtener trypomastigotes, a partir de la cepa TcV de epimastigotes&nbsp;en forma masiva. Nuestros resultados muestran que se logr&oacute;&nbsp;la adaptaci&oacute;n de los epimastigotes al cultivo celular in vitro,&nbsp;logrando obtener la capacidad de transformaci&oacute;n a trypo-mastigotes metac&iacute;clicos directamente en el medio de cultivo.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Por otra parte la adici&oacute;n de plasma de pacientes sin la enfermedad de Chagas al medio de cultivo produce: lisis de las formas epimastigotas por activaci&oacute;n del sistema de complemento mientras que los trypomastigotes son resistentes<sup>2,10,12,14,18-20</sup>,&nbsp;este mecanismo permiti&oacute; en nuestro trabajo, la selecci&oacute;n de&nbsp;formas resistentes de trypomastigotes metac&iacute;clicos a la lisis,&nbsp;al agregar plasma humano libre de Chagas a los frascos de&nbsp;cultivo, permitiendo de esta manera la infecci&oacute;n de c&eacute;lulas&nbsp;3T3 evidenci&aacute;ndose esto al observar c&eacute;lulas infectadas con&nbsp;presencia de amastigotes.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Proeopio &amp; Mortara indican que los procesos de invasi&oacute;n e interacci&oacute;n par&aacute;sito c&eacute;lula hospedera, var&iacute;an dependiendo&nbsp;de factores intr&iacute;nsecos de la cepa de par&aacute;sito as&iacute; como tambi&eacute;n la l&iacute;nea celular involucrada en la infecci&oacute;n<sup>1,10,12,17,21,22</sup>. En&nbsp;base a lo indicado podemos mencionar que los epimastigo-tes de la cepa TcV al adaptarse al medio de cultivo celular&nbsp;enriquecido, permiti&oacute; reproducir in vitro el ciclo biol&oacute;gico&nbsp;del par&aacute;sito donde se pudo evidenciar los diferentes estadios&nbsp;morfol&oacute;gicos del par&aacute;sito. Si bien algunos autores tardaron&nbsp;siete d&iacute;as para que el par&aacute;sito complete su ciclo intracelular&nbsp;para desarrollar la transformaci&oacute;n de amastigotes a trypomas-tigotes y ser liberados al medio<sup>10,12,19</sup> nuestros resultados indican que el proceso de transformaci&oacute;n morfol&oacute;gica hasta la&nbsp;aparici&oacute;n de amastigotes posinfecci&oacute;n tardo un per&iacute;odo de&nbsp;catorce d&iacute;as, esto se puede deber a que las formas epimas-tigotas fueron adicionadas directamente al cultivo celular&nbsp;(monocapa de c&eacute;lulas 3T3),transcurrido este tiempo se pudo&nbsp;observar c&eacute;lulas infectadas, cuya proporci&oacute;n fue en aumento al paso de los d&iacute;as, por lo tanto el nivel de la infecci&oacute;n celular estar&aacute; determinada por el n&uacute;mero de par&aacute;sitos existentes, es as&iacute; que si la proporci&oacute;n de par&aacute;sitos va en aumento, como&nbsp;tambi&eacute;n el n&uacute;mero de c&eacute;lulas infectadas, la monocapa celular&nbsp;se torna fr&aacute;gil y comienza a decolarse, esta situaci&oacute;n lo mencionan tambi&eacute;n otros autores<sup>1,11</sup>.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Por otro lado coincidimos con Velazco-Gamboa y Col., en que el tiempo requerido de transformaci&oacute;n a formas trypo-mastigotas pos infecci&oacute;n es de siete d&iacute;as, cuando realizamos&nbsp;los subcultivos de la monocapa de c&eacute;lulas 3T3 con los try-pomastigotes obtenidos. Este patr&oacute;n en d&iacute;as requerido para&nbsp;la transformaci&oacute;n y obtenci&oacute;n del par&aacute;sito, es similar a experiencias previas, en estudios realizados en nuestros laboratorios para la obtenci&oacute;n de trypomastigotes a partir de la cepa&nbsp;tulahuen (datos no registrados) coincidiendo el mismo con otros autores<sup>10,12,18,20</sup>.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La obtenci&oacute;n de trypomastigotes de T.cruzi a partir de la cepa TcV de epimastigotes, nos permiti&oacute; evidenciar que es&nbsp;posible reproducir el ciclo biol&oacute;gico del par&aacute;sito en la l&iacute;nea&nbsp;celular 3T3 donde se pudo advertir el proceso de infecci&oacute;n y&nbsp;transformaci&oacute;n intracelular del par&aacute;sito, estos aspectos nos&nbsp;permitir&aacute;n realizar otros estudios para determinar el grado&nbsp;de infectividad celular de las distintas cepas de T. cruzi que&nbsp;van circulando en nuestro pa&iacute;s.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Conflictos de inter&eacute;s: los autores declaramos que no existe conflicto de intereses.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Agradecimientos: Al Instituto de Investigaciones Biom&eacute;dicas (IIBISMED y al Laboratorio de Investigaciones M&eacute;dicas, LABIMED) de la Facultad de&nbsp;Medicina, UMSS.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana"><strong><font size="3">Referencias bibliogr&aacute;ficas</font></strong></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">1. Velazco Gamboa C, Puentes C.F., Moreno&nbsp;Garc&iacute;a A., Patarroyo M., Puerta B. C., Adaptaci&oacute;n de la cepa Munanta de Tripanosoma cruzi al&nbsp;cultivo in vitro en c&eacute;lulas vero: Revista de la Facultad de Ciencias, Pontificia Universidad Javeriana&nbsp;1997; Vol 4(1): 83-94.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">2. Ulisses de Carvalho T. Cultivo Celular</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">3. L&oacute;pez E.N., D&rsquo;Jesus R. Infectividad en rat&oacute;n de&nbsp;las formas de Trypanosoma cruzi deiferenciadas&nbsp;por primocultivo en medio LIT. Med-Ula, Revista de la Facultad de Medicina,Universidad de los&nbsp;Andes.Vol. 5 N&deg;1-4 1996.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">4. Zaidenberg A.,Tournier H.A., Schinella G.R.,&nbsp;Buschiazzo H.O.,Trypanosoma cruzi: Obtenci&oacute;n&nbsp;de amastigotes extracelulares y estudio de su crecimiento en diferentes condiciones de cultivo:&nbsp;Revista latinoamericana de microbiolog&iacute;a (2000)&nbsp;42:21-26.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">5. Rodriguez A.M., Aragort De R.R., De Jesus</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">R. ,Calcagno M., Maizo De S.Z., Segnini S., Diaz S. Tripomastigotes de sangre y de cultivo celular&nbsp;de Trypanosoma Cruzi Y. Diferencia en la infecti-vidad para ratones Balb/c: Parasitolog&iacute;a al d&iacute;a. Vol.24 N&deg; 1-2 (2000)</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">6. Figueiredo R., Steindel M., Soares M.J. The re-servosomes of epimastigote forms of Trypanoso-ma cruzi:occurrence during in vitro cultivation.&nbsp;Parasitol Res.:80:517-522 (1994)</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">7. Barnab&eacute; C., Breni&eacute;re S.F. Eco distribuci&oacute;n de los&nbsp;clones de Trypanosoma cruzi</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">8. Nogueira N., Cohn Z. Trypanosoma cruzi: Me-chanism of entry and intracelular fate in Mam-malian cells: From the Rockefeller University,&nbsp;New York 10021</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">9. Zingales B, Andrade SG, Briones MRS, Cam-pbell DA, Chiari E, Fernandes O, et al. A new&nbsp;consensus for Trypanosoma cruzi intraspecific&nbsp;nomenclature: second revision meeting recom-mends TcI to TcVI. Mem. Inst. Oswaldo Cruz&nbsp;2009;104, 1051-1054.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">10. Murray PK., Boltz RC.,Schmatz DM. Sepa-ration of individual stages of Trpanosoma cruzi&nbsp;grown in cell culture by continuous free-flow elec-trophoresis. J Protozool.1982; 29(1):109-13.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">11. Schmatz DM., Murray PK Trypanosoma cruzi:&nbsp;selective isolation of pure trypomastigotes from&nbsp;cultured muscle cells. J Parasitol. 1981 ; 67 (4):&nbsp;517-21.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">12. Tanowitz HB., Kirchhoff LV., Somon D., Morris SA:; Weiss LM., Wittner M., La enfermedad&nbsp;de Chagas. Clin Microbiol Rev 1992;5(4):400-19.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">13. WHO. Special programme for research and&nbsp;training in tropical diseases (TDR), Report&nbsp;of Scientific Group in Chagas Di se ase TDR/&nbsp;SWG/09. World Health Organization: BuenosAi-res; 2007.CI</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">14. Wanderley de Sousa. Medio Ax&eacute;nico, disponible en:file:///C:/Documentsand Settings/Janneth&nbsp;/Configuraci&oacute;n local/Arch.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">15. Brener Z. Biology of Trypanosoma cruzi.&nbsp;Annual Reviews in Microbiology. 1973; 27(1):&nbsp;347-82</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">16. Proeopio,D. &amp; Mortara,R.A..The invasi&oacute;n of&nbsp;mamalian cell by two infective stage of Trypa-nosoma cruzi have distinct mechanism that also&nbsp;depend on the host cell cytoeskeleton.En: Res&uacute;menes del VI Congreso de la Sociedad Iberoamericana d Biolog&iacute;a Celular.Oaxtepec-M&eacute;xico.&nbsp;1995.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">17. Zaidenberg A., Tournier H.A., Schinella G.R.,&nbsp;Buschiazzo H.O.,Trypanosoma cruzi: Obtenci&oacute;n&nbsp;de amastigotes extracelulares y estudio de su crecimiento en diferentes condiciones de cultivo:&nbsp;Revista latinoamericana de microbiolog&iacute;a (2000)&nbsp;42:21-26.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">18. Camargo E. Growth and differentiation in&nbsp;Trypanosoma cruzi: Origin of metacyclic tripano-soma in liquid media. Rev. Inst. Med. Trop. Sao&nbsp;Paulo 6:93.1964.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">19. Zaidenberg A, Tournier H, Schinella G,&nbsp;Buschiazzo H.Trypanosoma cruzi: influence of&nbsp;human plasma on the morphogenesis of blood&nbsp;trypomastigotes in a cell-free culture media Revista Latinoamericana de Microbiologia [1995,&nbsp;37(1):71-77].</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">20. Zingales B, Miles MA, Campbell DA, Tiba-yrenc M, Macedo AM, Teixeira MM, et al. The&nbsp;revised Trypanosoma cruzi subspecific nomen-clature: Rationale, epidemiological relevance and&nbsp;research applications. Infect Genet Evol. 2012;&nbsp;12(2):240-53.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">21. Del Puerto F, Sanchez Z, Nara E, Meza G, Paredes B, Ferreira E et al. Trypanosoma cruzi lineages&nbsp;detected in congenitally infected infants and Tria-toma infestans from the same disease-endemic region under entomologic surveillance in Paraguay. Am. J.&nbsp;Trop. Med. Hyg. 2010; 82, 386-390.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">22. La faille J. J., Linss J., Cardoso M.A.B., Krie-ger M.A., Aymerch S.,Goldenberg S. Cloning of Trypanosoma cruzi stage specific genes.Mem.&nbsp;Inst. Oswaldo Cruz, Rio de Janeiro,Suppl. Vol. 82,&nbsp;11-1987,252.</font></p>      ]]></body>
</article>
