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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[IDENTIFICACIÓN MICROBIOLÓGICA, MOLECULAR; SEROLÓGICA DE Streptococcus pneumoniae, Y DETERMINACIÓN DE LA SUSCEPTIBILIDAD A PENICILINA Y ERITROMICINA EN LA CIUDAD DE COCHABAMBA]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Microbiological molecular identification and serologic of Streptococcus pneumoniae and determination of the suceptibility to penicilin and eritromicin in the city of Cochabamba]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Streptococcus pneumoniae is one of the main pathogens that cause breathing and invasive infections, that is why is important a quick identification of this microorganism and determine the sensitivity of the frequently used antibiotics, to execute appropriate therapies. With this purpose the identification of 32 isolates of Streptococcus pneumoniae from patients with breathing and invasive infections were carried out, conventional microbiological tests were applied for identification and for confirmation were used molecular techniques based on the chain reaction of polymerase (PCR), amplifying the regions of lyt A and ply genes and serological methods for the determination of the capsular antigen. Antibiograms were carried out in order to determinate the sensitivity to penicillin and erythromycin. The results showed a higher amount of isolates in children under 10 and adults over 49, and according to seasons, more isolates on winter months. Regarding sensitivity to antibiotics, we found a drop of 46.88% to penicillin, a drop of 6.25 to erythromycin and an intermediate drop of 15.63%. The statistical analysis among the three techniques used for reconfirmation revealed there is a low correlation among them. Therefore, optochin, used as a re-confirmation method, is lower than serological and molecular tests.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <P align="right"> 	<font size="2" face="verdana"><font color="#B2B4B6"><B>Trabajo</B></FONT><FONT color="#221E1F" ><B> Original</B></font>    <br>     <b>Research</b><FONT color="#B2B4B6"><B> Report</b></font></FONT> </P>     <p align="center"><font size="4">    <br>   <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">     <B>IDENTIFICACIÓN MICROBIOLÓGICA, MOLECULAR;      SEROLÓGICA DE <i>Streptococcus pneumoniae</i>, Y DETERMINACIÓN DE LA SUSCEPTIBILIDAD A PENICILINA Y ERITROMICINA EN LA CIUDAD DE COCHABAMBA</B></font></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><B>Microbiological molecular identification and serologic of  <i>Streptococcus pneumoniae</i> and determination of    the suceptibility to penicilin and    eritromicin in the city of Cochabamba</B> </font></font></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <P align="center"><font size="2" face="verdana">* Zulema Bustamante Garc&iacute;a, Fac. de Bioqu&iacute;mica y Farmacia. Universidad Mayor de San Sim&oacute;n</font></P>     <P align="center"><font size="2" face="verdana">  * Fatima Funes Espinoza, Fac. de Bioqu&iacute;mica y Farmacia. Universidad Mayor de San Sim&oacute;n</font></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="center"><font size="2" face="verdana">  * Jenny Zamora Balderrama, Fac. de Bioqu&iacute;mica y Farmacia. Universidad Mayor de San Sim&oacute;n</font></P>     <P align="center"><font size="2" face="verdana">  * Adela Panozo, Fac. de Bioqu&iacute;mica y Farmacia. Universidad Mayor de San Sim&oacute;n </font></P>     <P align="center"><font size="2" face="verdana"> * Liz Villarroel, Fac. de Bioqu&iacute;mica y Farmacia. Universidad Mayor de San Sim&oacute;n</font></P>     <P align="center"><font size="2" face="verdana"> * Gabriela Suarez, Fac. de Bioqu&iacute;mica y Farmacia. Universidad Mayor de San Sim&oacute;n</font></P>     <P align="center"><font size="2" face="verdana"> ** Rosario Castro, Hospital Viedma </font></P>     <P align="center"><font size="2" face="verdana"> *** Patricia Rosales, Instituto Nacional de Laboratorios en Salud (INLASA)</font></font></P>     <P align="justify">&nbsp;</P>     <P align="justify">&nbsp;</P> <hr>      <P align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>RESUMEN</b></font></P>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana"><i>Streptococcus pneumoniae</i> es uno de los principales pat&oacute;genos causantes de infecciones respiratorias e invasivas, por lo que es importante identificar r&aacute;pidamente este microorganismo y determinar la susceptibilidad a los antibi&oacute;ticos frecuentemente utilizados, para la realizaci&oacute;n de terapias adecuadas. Con este fin se realiz&oacute; la identificaci&oacute;n de 32 aislamientos de <i>Streptococcus pneumoniae</i>, a partir de pacientes con infecciones respiratorias e invasivas; para su identificaci&oacute;n se utilizaron m&eacute;todos microbiol&oacute;gicos convencionales y como pruebas confirmatorias, m&eacute;todos moleculares por reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (PCR), amplificando regiones de los genes lyt A y ply y m&eacute;todos serol&oacute;gicos para la determinaci&oacute;n del ant&iacute;geno capsular. Se realizaron antibiogramas para determinar la susceptibilidad a Penicilina y Eritromicina. Los resultados revelaron, un mayor n&uacute;mero de aislamientos en menores de 10 a&ntilde;os y en mayores de 49 a&ntilde;os y en relaci&oacute;n a &eacute;pocas estacionales, de aislamientos un mayor n&uacute;mero durante los meses de invierno. En las pruebas de susceptibilidad a los antibi&oacute;ticos se encontr&oacute; una sensibilidad disminuida a Penicilina (SDP) de 46.88 %; resistencia a eritromicina de 6.25 % y resistencia intermedia de 15,63%. Realizando un an&aacute;lisis estad&iacute;stico de los tres m&eacute;todos como pruebas de reconfirmaci&oacute;n, se observ&oacute; una correlaci&oacute;n baja, por lo que la prueba de la optoquina con fines de reconfirmaci&oacute;n para <i>Streptococcus pneumoniae</i>, es inferior a las pruebas serol&oacute;gica y molecular. </font></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>PALABRAS CLAVE:</b> <i>Streptococcus pneumoniae</i>, PCR, identificaci&oacute;n, genes lyt A, ply, ant&iacute;geno capsular, sensibilidad penicilina, eritromicina. </font></P> <hr>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>ABSTRACT</b></font></P>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana"><i>Streptococcus pneumoniae</i> is one of the main pathogens that cause breathing and invasive infections, that is why is important a quick identification of this microorganism and determine the sensitivity of the frequently used antibiotics, to execute appropriate therapies. With this purpose the identification of 32 isolates of <i>Streptococcus pneumoniae</i> from patients with breathing and invasive infections were carried out, conventional microbiological tests were applied for identification and for confirmation were used molecular techniques based on the chain reaction of polymerase (PCR), amplifying the regions of lyt A and ply genes and serological methods for the determination of the capsular antigen. Antibiograms were carried out in order to determinate the sensitivity to penicillin and erythromycin. The results showed a higher amount of isolates in children under 10 and adults over 49, and according to seasons, more isolates on winter months. Regarding sensitivity to antibiotics, we found a drop of 46.88% to penicillin, a drop of 6.25 to erythromycin and an intermediate drop of 15.63%. The statistical analysis among the three techniques used for reconfirmation revealed there is a low correlation among them. Therefore, optochin, used as a re-confirmation method, is lower than serological and molecular tests. </font></P>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana"><b>KEY WORDS: </b><i>Streptococcus pneumoniae</i>, identification; lyt A, ply, capsular antigen, sensitivity penicillin, erythromycin. </font></P> <hr> <H3 align="left"><font face="verdana"><B>INTRODUCCION</B></font></H3>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana"></B>Lo</B>s neumococos, <i>Streptococcus pneumoniae</i> son diplococos gram positivos que se caracterizan porque llevan una c&aacute;psula de polisac&aacute;ridos que permite su identificaci&oacute;n y serotipificaci&oacute;n. Estos neumococos son habitantes normales de las v&iacute;as respiratorias superiores en un 5 a 40% de los humanos, y son causantes de neumon&iacute;as, sinusitis, otitis, bronquitis, bacteriemia, meningitis y otros procesos infecciosos en el tracto respiratorio.<Sup>1 </Sup></font></P>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana">El neumococo actualmente se ha constituido en uno de los primeros agentes causales de neumon&iacute;as bacterianas y de otitis media aguda en todo el mundo. La neumon&iacute;a neumoc&oacute;cica es responsable de 10 a 25% de todas las neumon&iacute;as, estim&aacute;ndose una tasa de mortalidad mundial de m&aacute;s de 1 mill&oacute;n de decesos anuales en ni&ntilde;os menores de 5 a&ntilde;os y en personas mayores de 65 a&ntilde;os.<Sup>2 </Sup></font></P>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana">Los m&eacute;todos que se utilizan para identificar <i>Streptococcus pneumoniae</i> incluyen pruebas microbiol&oacute;gicas cl&aacute;sicas como la prueba de la optoquina<Sup>2</Sup>, sin embargo en la actualidad se utilizan otros como la determinaci&oacute;n del ant&iacute;geno capsular (m&eacute;todo serol&oacute;gico)<Sup>3 </Sup>o m&eacute;todos moleculares para la determinaci&oacute;n de genes de virulencia, como la autolisina (lyt A) y la pneumolisina (ply), utilizando la reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (PCR), que ya fueron recomendados y utilizados en estudios anteriores.<Sup>2,4,5,6 </Sup></font></P>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana">En el tratamiento de las neumon&iacute;as generalmente se utilizan &beta;-lact&aacute;micos como la penicilina, y m&aacute;crolidos como la eritromicina.<Sup>7,8 </Sup>Sin embargo, en los &uacute;ltimos a&ntilde;os se ha reportado un incremento de resistencia a los antibi&oacute;ticos tradicionalmente utilizados para infecciones causadas por <i>Streptococcus pneumoniae</i>.<Sup>9, 10, 11, 12 </Sup></font></P>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana">Estos datos justifican la necesidad de realizar investigaciones sobre este microorganismo, implementando nuevos m&eacute;todos como el molecular y serol&oacute;gico para una espec&iacute;fica y r&aacute;pida identificaci&oacute;n. Tambi&eacute;n es necesario determinar la susceptibilidad a los antibi&oacute;ticos frecuentemente utilizados para las infecciones causadas por <i>Streptococcus pneumoniae</i>, debido a que en nuestra regi&oacute;n se hace un uso indiscriminado de los antibi&oacute;ticos, por automedicaci&oacute;n y prescripci&oacute;n m&eacute;dica sin el an&aacute;lisis previo de susceptibilidad, con los consiguientes fracasos terap&eacute;uticos. Es importante que la identificaci&oacute;n de la bacteria, se realice con t&eacute;cnicas de alta sensibilidad, especificidad y estabilidad, lo que justifica la implementaci&oacute;n y comparaci&oacute;n de m&eacute;todos: microbiol&oacute;gico, serol&oacute;gico y molecular aplicados para el diagn&oacute;stico de <i>Streptococcus pneumoniae</i>. </font></P>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana">El objetivo del presente trabajo identificar las caracter&iacute;sticas moleculares y serol&oacute;gicas del <i>Streptococcus pneumoniae</i> y su suceptibilidad a penicilina y eritromicina en la ciudad de Cochabamba. </font></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify">&nbsp;</P> <h3 align="left"><font face="verdana">MATERIAL Y MÉTODOS</font></h3>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana">Este trabajo es un estudio descriptivo, transversal y anal&iacute;tico. Se trabaj&oacute; con 32 aislamientos de <i>Streptococcus pneumoniae</i>, obtenidos por m&eacute;todos microbiol&oacute;gicos convencionales, a partir de pacientes con infecciones respiratorias. 19 de los 32 aislamientos fueron remitidos por los laboratorios del Instituto Gastroenterol&oacute;gico Boliviano Japon&eacute;s, Escuela T&eacute;cnica de Salud, Hospital Albina Pati&ntilde;o, Seguro Social Universitario y Hospital Elizabeth SETON, al Laboratorio Asistencial y Laboratorio de Biolog&iacute;a Molecular de la Facultad de Bioqu&iacute;mica y Farmacia de la Universidad Mayor de San Sim&oacute;n; 8 de los 32 aislamientos se obtuvieron en el Laboratorio Asistencial de la Facultad de Bioqu&iacute;mica y Farmacia de la Universidad Mayor de San Sim&oacute;n, a partir de 40 muestras cl&iacute;nicas de pacientes con diagn&oacute;stico de neumon&iacute;a hospitalizados en el Complejo Hospitalario Viedma, de acuerdo a criterios de inclusi&oacute;n, seg&uacute;n convenio establecido con la jefatura de Infectolog&iacute;a de dicha instituci&oacute;n y 5 de los 32 aislamientos, se obtuvieron de 103 muestras cl&iacute;nicas con diagn&oacute;stico presuntivo de tuberculosis pulmonar y con BAAR negativo procedentes de la Escuela T&eacute;cnica de Salud e Instituto gastroenterol&oacute;gico. Los 32 aislamientos de <i>Streptococcus pneumoniae</i> se obtuvieron en el periodo de Octubre 2007 a Noviembre 2008. </font></P>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana">La toma de muestras se realiz&oacute; de acuerdo a protocolos establecidos en el Laboratorio Asistencial de la Facultad de Bioqu&iacute;mica y Farmacia. </font></P> <h4 align="left"><font face="verdana">Métodos microbiológicos</font></h4>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana">Para la identificaci&oacute;n microbiol&oacute;gica se realiz&oacute; el cultivo en medio Agar sangre, tinci&oacute;n de gram, la reacci&oacute;n negativa a la catalasa de la colonia sospechosa y la prueba de la optoqu&iacute;na.<Sup>13</Sup></font></P> <h4 align="left"><font face="verdana">Susceptibilidad a penicilina y eritromicina</font></h4>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana">Para determinar la susceptibilidad a estos antibi&oacute;ticos se realiz&oacute; un antibiograma, siguiendo el m&eacute;todo de Kirby</font><font size="2" face="verdana"> Bauer, utilizando discos de oxacilina de 1 ug, considerando como SDP (sensibilidad disminuida a la Penicilina) cuando presenta un halo de inhibici&oacute;n menor a 19 mm<Sup>8 </Sup>y para la eritromicina un disco de 15 ug, considerando resistente con un halo igual o menor a 15 mm y resistencia intermedia con un halo de 16-20 mm. </font></P> <h4 align="left"><font face="verdana">Métodos moleculares de confirmación</font></h4>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana">Para confirmar los aislamientos de Streptococus pneumoniae, se realiz&oacute; la extracci&oacute;n de ADN, tomando algunas colonias y resuspendiendo en un Buffer (Tris-HCl10mMEDTA1mM), llevando a Ba&ntilde;o Maria por 20 minutos, y agregando cloroformo, despu&eacute;s de la centrifugaci&oacute;n se separ&oacute; la fase acuosa que conten&iacute;a el ADN crudo, con el cual se realiz&oacute; la reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa. Los cebadores utilizados fueron Lyt A y Ply, descritos por Suzuki et al.<Sup>4 </Sup>Lyt A amplifica la regi&oacute;n que codifica para la autolisina en <i>Streptococcus pneumoniae</i> y genera un producto de amplificaci&oacute;n de 308 pb y Ply amplifica una regi&oacute;n del gen de la pneumolisina de 329 pb. Las secuencias de los cebadores utilizados fue: Lyt A 5&acute;-  CAA CCG TAC AGA ATG AAG CGG - 3` y 5´ - TTA TTC GTG CAA TAC TCG TGC G - 3. Cebadores Ply ; 5&acute;- ATT TCT GTA ACAGCT ACC AAC GA - 3` y 5&acute; &ndash; GAA TTC CCT GTC TTT TCA AAG TC-3. </font></P>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana">Las condiciones de amplificaci&oacute;n fueron: Desnaturalizaci&oacute;n inicial 94 &ordm;C por 5 minutos y 35 ciclos de desnaturalizaci&oacute;n 94 &szlig; C por 10 segundos, hibridaci&oacute;n a 58 &ordm;C por 15 segundos, elongaci&oacute;n a 72&ordm;C por 1 minuto y elongaci&oacute;n final a 72 &ordm;C por 7 minutos. Los productos obtenidos fueron revelados por electroforesis en gel de agarosa al 1,2% y con bromuro de etidio 0.5 &micro;g / ml. </font></P> <h4 align="left"><font face="verdana">Métodos serológicos</font></h4>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana">Para determinar la presencia del ant&iacute;geno capsular, se utiliz&oacute; el test BBL PNEUMOSLIDETM, es un m&eacute;todo serol&oacute;gico de aglutinaci&oacute;n en l&aacute;tex para la detecci&oacute;n cualitativa de ant&iacute;genos capsulares de <i>Streptococcus pneumoniae</i>, a partir de colonias aisladas o cultivos puros. </font></P> <h4 align="left"><font face="verdana">Comparación de métodos para reconfirmación de <i>Streptococcus pneumoniae</i></font></h4>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana">Con el fin de evaluar los tres m&eacute;todos con fines de reconfirmaci&oacute;n, se trabajo con 27 de los 32 aislamientos iniciales, utilizando los m&eacute;todos descritos anteriormente. </font></P> <h4 align="left"><font face="verdana">Análisis estadístico</font></h4>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana">Los an&aacute;lisis estad&iacute;sticos fueron realizados con el programa SPSS, utilizando la prueba de chi-cuadrado de bondad de ajuste por el n&uacute;mero de muestras, para determinar las diferencias entre los grupos et&aacute;reos y &eacute;pocas estacionales. </font></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify"><font size="2" face="verdana">Para establecer la diferencia de susceptibilidad a los antibi&oacute;ticos se utiliz&oacute; el test de proporci&oacute;n con un 95% de intervalo de confianza. </font></P>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana">Finalmente para comparar los m&eacute;todos por su reproducibilidad con fines de reconfirmaci&oacute;n, se realiz&oacute; una valoraci&oacute;n de sensibilidad y especificidad de la prueba molecular y la prueba serol&oacute;gica frente a la prueba de la optoquina. </font></P>     <P align="justify">&nbsp;</P> <h3 align="left"><font face="verdana">RESULTADOS</font></h3> <h4 align="left"><font face="verdana">IDENTIFICACIÓN MICROBIOLÓGICA, Y MOLECULAR DE AISLAMIENTOS DE <i>Streptococcus pneumoniae</i></font></h4>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana"><i>Streptococcus pneumoniae</i> Durante el periodo de estudio, se trabaj&oacute; con un total de 32 aislamientos de <i>Streptococcus pneumoniae</i>, identificados por la prueba microbiol&oacute;gica de la optoquina y confirmados por reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa (PCR). Se pueden apreciar en la figura 1 y figura 2, los resultados de la amplificaci&oacute;n obtenida con los cebadores lyt A y ply. </font></P>     <center>   <img align="center" border="0" src="img/revistas/gmb/v32n2/v32n2a06_img_2.jpg" > </center>    <br>     <center>   <img align="center" border="0" src="img/revistas/gmb/v32n2/v32n2a06_img_3.jpg" > </center>     <P align="justify">&nbsp;</P>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana">En relaci&oacute;n a la presencia de neumococo en los diferentes grupos et&aacute;reos, se observ&oacute; que existe un mayor n&uacute;mero de aislamientos de <i>Streptococcus pneumoniae</i> en ni&ntilde;os menores de 10 a&ntilde;os y adultos mayores a 49 a&ntilde;os. (Figura 3). </font></P>     <center>   <img align="center" border="0" src="img/revistas/gmb/v32n2/v32n2a06_img_5.jpg" > </center>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify"><font size="2" face="verdana">Aplicando a estos datos una prueba de <B>X<Sup>2 </Sup></B>de bondad de ajuste, con a = 0.05, el valor de <B>X<Sup>2 </Sup></B>es : 11.07, se afirma que las frecuencias son significativamente diferentes entre los grupos de edad (valor p =0.000). </font></P>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana">En la figura 4, se observa la distribuci&oacute;n de <i>Streptococcus pneumoniae</i> en el periodo de estudio 2007-2008, agrupado trimestralmente de acuerdo a &eacute;pocas estacionales. </font></P>     <center>   <img align="center" border="0" src="img/revistas/gmb/v32n2/v32n2a06_img_4.jpg" > </center>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana">Aplicando a estos datos una prueba de chi-cuadrado x<Sup>2 </Sup>de bondad de ajuste, se obtuvo x<Sup>2 </Sup>de 9.75, a nivel de o a=0.05, con gl= 3, el valor de x<Sup>2 </Sup>es: 7.82. Por tanto siendo 9.75 > 7.82, permite afirmar que la distribuci&oacute;n de las frecuencias es diferente en los trimestres del a&ntilde;o, (valor P =0.021). Por lo tanto mayor frecuencia de aislamientos, se present&oacute; en los meses de invierno. </font></P> <h4 align="left"><font face="verdana">Susceptibilidad a la Penicilina</font></h4>      <P align="justify"><font size="2" face="verdana">Del total de muestras el 53,13% (17 aislamientos) fueron sensibles a Penicilina sin embargo el 46,88% (15 aislamientos) presentaron sensibilidad disminuida a la Penicilina (SDP). </font></P>  <h4 align="left"><font face="verdana">Susceptibilidad a la Eritromicina.</font></h4>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana">De acuerdo a los resultados de susceptibilidad, la sensibilidad a la Eritromicina fue del 78,13 %, (25 aislamientos), el 15.63 % (5 aislamientos) tuvo una sensibilidad intermedia, y el 6.25 % (2 aislamientos) fueron resistentes. </font></P>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana">El test de proporci&oacute;n para comparar la sensibilidad a penicilina y eritromicina, demostr&oacute; que la proporci&oacute;n de sensibilidad al antibi&oacute;tico es mayor para la eritromicina que para la penicilina. (Tabla 1) </font></P>     <P align="center"><img align="center" border="0" src="img/revistas/gmb/v32n2/v32n2a06_img_6.jpg" ></P>     <P   align="center" >&nbsp;</P> <h4 align="left"><font face="verdana">Comparación de la reproducibilidad de los métodos con fines de reconfirmación de <i>Streptococcus pneumoniae</i></font></h4>      <P align="justify"><font size="2" face="verdana">Para verificar la reproducibilidad de los métodos aplicados en el estudio, para reconfirmación con fines epidemiológicos, se conservaron las cepas aisladas en el medio de conservación Skim Milk a -20ºC; así mismo se conservó el material genético de cada cepa en TE ( Buffer Tris EDTA) a -20ºC. Se realizaron subcultivos de los aislamientos , a partir del medio de conservación utilizado. Para esto se trabajó con 27 de las cepas aisladas. Se repitieron las prueba de la optoquina y las pruebas serológicas, y a partir del material genético conservado se repitieron las pruebas moleculares- gen ply y gen lyt A. La figura 5, muestra que en la prueba de la optoquina de los 27 aislamientos el 77.78 % (21 aislamientos) tuvieron sensibilidad a la optoquina y el 22.22 % (6 aislamientos) fueron resistentes a este fármaco. </font></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<center>   <img align="center" border="0" src="img/revistas/gmb/v32n2/v32n2a06_img_7.jpg" > </center>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana">En la serolog&iacute;a de 27 muestras, 26 fueron positivas y una negativa y en la prueba molecular las 27 muestras fueron positivas como se observa en la figura 5. </font></P>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana">Para realizar la comparaci&oacute;n entre las t&eacute;cnicas utilizadas, se aplic&oacute; un test estad&iacute;stico de especificidad y sensibilidad concluyendo que los m&eacute;todos molecular y serol&oacute;gico son altamente sensibles, espec&iacute;ficas y reproducibles en relaci&oacute;n al m&eacute;todo microbiol&oacute;gico de la optoquina, cuando se aplica a las mismas muestras en dos momentos diferentes. </font></P>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana"></font></P> <h3 align="left"><font face="verdana">DISCUSIÓN Y CONCLUSIONES</font></h3>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana">Durante el periodo de estudi&oacute; se trabajo con muestras cl&iacute;nicas, y con aislamientos remitidos por los hospitales/laboratorios participantes, obteni&eacute;ndose 32 aislamientos de <i>Streptococcus pneumoniae</i>. En relaci&oacute;n a los grupos et&aacute;reos de los pacientes, se observ&oacute; que existen principalmente dos grupos afectados por esta bacteria, que son ni&ntilde;os menores de 10 a&ntilde;os con un porcentaje de 40,63% (13 de 32 aislamientos) con edades comprendidas entre los 2 meses y 7 a&ntilde;os; y adultos mayores a 49 a&ntilde;os con un porcentaje de 46,88% (15 de 32 ); se present&oacute; un grupo minoritario entre 20-25 a&ntilde;os 12,50%, (4 de 32 aislamientos), estos casos son raros y podr&iacute;a deberse a que en los pacientes j&oacute;venes, <i>Streptococcus pneumoniae</i> se comporta como un pat&oacute;geno oportunista, ya que todos ellos se encontraban inmunodeprimidos, dos de ellos eran VIH +, y uno de ellos padec&iacute;a de lupus eritematoso. </font></P>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana">Respecto a los resultados en grupos et&aacute;reos, es importante mencionar que en estudios realizados en Latinoam&eacute;rica, se report&oacute; mayor frecuencia de infecci&oacute;n en ni&ntilde;os menores de dos a&ntilde;os, disminuyendo despu&eacute;s de los 10-15 a&ntilde;os, para posteriormente incrementar dicha frecuencia en personas mayores de 60 a&ntilde;os.<Sup>2,12,14,15 </Sup></font></P>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana">En relaci&oacute;n al n&uacute;mero de aislamientos obtenidos en las diferentes &eacute;pocas estacionales, se observ&oacute; un mayor n&uacute;mero (13 de 32) en los meses de invierno; seg&uacute;n el reporte de SEDES (2008) en estos meses existe mayor frecuencia de infecciones respiratorias agudas y neumon&iacute;as; aumentando por tanto la posibilidad de que el neumococo se encuentre circulando en la poblaci&oacute;n. </font></P>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana">El test de susceptibilidad a penicilina, mostr&oacute; una sensibilidad de 53,13% y un porcentaje de sensibilidad disminuida a la penicilina de 46,88 %. Los datos nacionales proporcionados por INLASA (2005), muestran una sensibilidad disminuida a la penicilina de 52 %, dato similar al obtenido en esta investigaci&oacute;n durante el periodo de estudio. </font></P>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana">En la prueba de susceptibilidad a eritromicina, el 78,13% mostr&oacute; sensibilidad; el 15.63 % sensibilidad intermedia, y 6.25 % resistencia; estos resultados son apoyados por los datos reportados a nivel nacional por INLASA que el a&ntilde;o 2005, informa una resistencia del 7%. Es importante resaltar que en nuestro pa&iacute;s todav&iacute;a existe una buena sensibilidad a la eritromicina en relaci&oacute;n a la penicilina. Sin embargo la susceptibilidad a penicilina y eritromicina es variable en diferentes pa&iacute;ses latinamericanos.<Sup>9,10,16,17 </Sup>y en pa&iacute;ses europeos,<Sup>18 </Sup>coincidiendo en un incremento de resistencia en los diferentes a&ntilde;os. El alto porcentaje de resistencia a penicilina en pa&iacute;ses de Latinoam&eacute;rica, seg&uacute;n Hortal y Camou<Sup>7 </Sup>es el resultado de dos fen&oacute;menos epidemiol&oacute;gicos: La importaci&oacute;n de clones que poseer&iacute;an atributos especiales de virulencia y eventos de transferencia de resistencia a cepas sensibles, que ocurren de manera independiente y localizada; as&iacute; como el uso de este antibi&oacute;tico en un esquema inicial de tratamiento, sin la realizaci&oacute;n previa del antibiograma.<Sup>12</Sup> Tambi&eacute;n se ha indicado que las cepas resistentes a penicilina suelen ser resistentes a otros antibi&oacute;ticos.<Sup>11,19 </Sup></font></P>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana">La evaluaci&oacute;n estad&iacute;stica de valoraci&oacute;n de sensibilidad y especificidad para comparar la reproducibilidad de los m&eacute;todos de identificaci&oacute;n microbiol&oacute;gico, serol&oacute;gico y molecular, aplicados a subcultivos sucesivos de <i>Streptococcus pneumoniae</i>, muestra que el m&eacute;todo microbiol&oacute;gico de identificaci&oacute;n de la optoquina revela un aumento de resistencia a la optoquina del 22.22% en subcultivos sucesivos del neumococo, con una sensibilidad de 77.78 %, esta disminuci&oacute;n de la sensibilidad puede ser alterada por diversos factores, como las transformaciones gen&eacute;ticas o mutaciones especialmente a nivel del gen atp C, que codifica para la ATPasa<Sup>7,20 </Sup>o por subcultivos repetidos. </font></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify"><font size="2" face="verdana">La prueba serol&oacute;gica de aglutinaci&oacute;n de BBL&Uacute; Pneumoslide&trade;, report&oacute; un porcentaje de 96,30 % de positividad y un 3.7 % de negatividad. Comparando estos resultados con el test de la optoquina, muestra una sensibilidad de 96% y una especificidad del 100%, lo que permite concluir que el este m&eacute;todo serol&oacute;gico de &ldquo;Pneumoslide,&trade;&rdquo; tiene mayor reproducibilidad en relaci&oacute;n a la prueba de la optoquina en subcultivos de neumococo. La prueba molecular dio 100% de positividad en los subcultivos. </font></P>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana">Estos resultados indican claramente que los m&eacute;todos moleculares, permiten reconocer caracter&iacute;sticas gen&eacute;ticas de las bacterias no reveladas por las t&eacute;cnicas convencionales. Los genes lyt-A y ply han sido muy usados en la identificaci&oacute;n del <i>Streptococcus pneumoniae</i> en varios trabajos de investigaci&oacute;n, como se describe en el de Suzuki et al,<Sup>4 </Sup>que utiliz&oacute; estos genes como marcadores en la identificaci&oacute;n molecular de <i>Streptococcus pneumoniae</i>, tambi&eacute;n, Ron Dagan et al,<Sup>23 </Sup>indica que la t&eacute;cnica molecular de PCR es un test altamente sensible para la detecci&oacute;n de S pneumoniae, entre otros, se encuentra el trabajo de Parra E, Casta&ntilde;eda E, Moreno24 que utilizan la PCR para la Identificaci&oacute;n de Haemophilus influenzae, <i>Streptococcus pneumoniae</i> y Neisseria meningitidis usando el gen lyt-A como marcador de S pneumoniae ; por los resultados obtenidos con esta t&eacute;cnica su uso fue recomendado por el Instituto Nacional de Salud de Colombia en su programa de vigilancia de <i>Streptococcus pneumoniae</i>.<Sup>2 </Sup></font></P>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana">En la actualidad con el fin de asegurar la especificidad de este m&eacute;todo se est&aacute;n implementando la t&eacute;cnica PCRRFLP, para la detecci&oacute;n de este microorganismo,<Sup>6 </Sup>m&aacute;s a&uacute;n ya se reportaron varios trabajos utilizando la PCR en tiempo real, basada en la identificaci&oacute;n de los genes lyt A y pLy, utilizando sondas espec&iacute;ficas, m&eacute;todo que ser&aacute; importante implementar m&aacute;s adelante, para obtener inclusive mejores resultados.<Sup>25,26 </Sup></font></P>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana">Esta investigaci&oacute;n nos permiti&oacute; concluir que <i>Streptococcus pneumoniae</i> es agente causante de infecciones respiratoria agudas y de neumon&iacute;as, present&aacute;ndose con mayor frecuencia en ni&ntilde;os menores a 10 a&ntilde;os y adultos mayores a 49 a&ntilde;os, circulando en mayor porcentaje de la poblaci&oacute;n durante los meses de invierno. Se observ&oacute; un alto porcentaje de susceptibilidad disminuida a la penicilina y en menor porcentaje a la eritromicina, datos que nos permiten recomendar la realizaci&oacute;n de cultivo y antibiograma antes de iniciar el tratamiento. </font></P>     <P align="justify"><font size="2" face="verdana">En relaci&oacute;n a la reproducibilidad de los tres m&eacute;todos utilizados con fines de reconfirmaci&oacute;n para este microorganismos, se puede concluir que la t&eacute;cnica microbiol&oacute;gica no es una t&eacute;cnica reproducible y estable despu&eacute;s de subcultivos sucesivos, para ser utilizada con fines de reconfirmaci&oacute;n en el diagn&oacute;stico de <i>Streptococcus pneumoniae</i>, recomendando por lo tanto, el uso de las pruebas moleculares y serol&oacute;gicas, por presentar mayor sensibilidad y especificidad frente a la prueba de la optoquina. </font></P> <hr> <h3 align="left"><font face="verdana">BIBLIOGRAFIA</font></h3>     <!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="verdana">1. Brooks G, Batel J, Morse S. Microbiolog&iacute;a M&eacute;dica de Jawetz, Melnick y Adelberg. Editorial Manual Moderno. 7 Edici&oacute;n. 2004. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=051582&pid=S1012-2966200900020000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="verdana">2. Instituto Nacional de Salud Colombia. Programa de Vigilancia de los serotipos y Resistencia Antimicrobiana de <i>Streptococcus pneumoniae</i> y Haemophilus influenzae Manual de procedimientos. 2004. Versi&oacute;n 4. 33-99. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=051583&pid=S1012-2966200900020000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="verdana">3. Trigoso C. Bacteriolog&iacute;a B&aacute;sica. Ed. huellas SRL. 1998. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=051584&pid=S1012-2966200900020000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="verdana">4. Suzuki N, Yuyama M, Maeda S, et al. Genotypic identification of presumtive <i>Streptococcus pneumoniae</i> by PCR using four genes highly specific for S. pneumoniae. J. Med. Microbiol. 2006. 55: 709-714. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=051585&pid=S1012-2966200900020000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="verdana">5. Tarja K, Identification of <i>Streptococcus pneumoniae</i>. Publications of the National Public Health Institute. A. 2006. 76 pages. Http://www.ktl.fi/portal/4043, 3 de junio 2009. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=051586&pid=S1012-2966200900020000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="verdana">6. Llull D, Lopez, R and Garcia E. Characteristic Signatures of the lytA Gene Provide a Basis for Rapid and Reliable Diagnosis of <i>Streptococcus pneumoniae</i> Infections. J. Clin. Microbiol. 2006 44(4): 1250-56 </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=051587&pid=S1012-2966200900020000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="verdana">7. Falc&oacute; FV, Infecci&oacute;n por neumococo. Medicine. 2006; 9(50): 3266-73. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=051588&pid=S1012-2966200900020000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="verdana">8. Palavecino E. Puesta al d&iacute;a en el estudio de susceptibilidad de <i>Streptococcus pneumoniae</i>. Rev. Chil. Infectol. 2002, 19 (2):101-6. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=051589&pid=S1012-2966200900020000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="verdana">9. Chan W, Lovgren M, and Tyrreell G. Utility of the Pneumoslide Test in Identification of <i>Streptococcus pneumoniae</i> in Blood Cultures and Its Relation to Capsular Serotype. J. Clin. Microbiol. 2009, 47 (5): 1559-1561 </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=051590&pid=S1012-2966200900020000600009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="verdana">10. Di Fabio JL, Casta&ntilde;eda E, Agudelo CT, et al. Evolution of S. pneumoniae serotypes and penicillin susceptibility in Latin America, Sireva-Vig&iacute;a Group. Pediatr Infect Dis J. 2001; 20(10): 959-967. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=051591&pid=S1012-2966200900020000600010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="verdana">11. Sald&iacute;as F, Flores L, Torres C, et al. Susceptibilidad a antimicrobianos de <i>Streptococcus pneumoniae</i> en poblaci&oacute;n infantil y adulta de Santiago. 1997-2003 Rev M&eacute;d Chile. 2005; 133: 42-49. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=051592&pid=S1012-2966200900020000600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="verdana">12. Ruvinsky R, Gentile A, Regueira M. et al Infecciones invasivas por <i>Streptococcus pneumoniae</i>: estudio epidemiol&oacute;gico e importancia del desarrollo de un sistema de vigilancia Arch. Pediatr. Urug. 2004; 75 (1): 91-103. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=051593&pid=S1012-2966200900020000600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="verdana">13. Rosales P, Ruiz E. Manual de procedimientos bacteriol&oacute;gicos para S. pneumoniae, H. influenzae y N.meningitidis. Instituto Nacional de Laboratorios de Salud INLASA. 2005 </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=051594&pid=S1012-2966200900020000600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="verdana">14.Silva M. <i>Streptococcus pneumoniae</i>. 2007, Nov: 28. Disponible en la web: www.s-pneumoniae.blogspot.com. [citado: 23 octubre 2008] </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=051595&pid=S1012-2966200900020000600014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="verdana">15. Koneman EW, Allen S, Janda W, et al. Diagn&oacute;stico Microbiol&oacute;gico texto Atlas Color. Ed M&eacute;dica Panamericana. 2003. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=051596&pid=S1012-2966200900020000600015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="verdana">16. Camargos P, Bueno G, Mocelin H, et al. Penicillin resistance and serotyping of <i>Streptococcus pneumoniae</i> in Latin America Pediatric Respiratory Reviews. 2006; (7) 209-214 </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=051597&pid=S1012-2966200900020000600016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="verdana">17. Gil-Setas A, Maz&oacute;n A, Torroba L, et al. Sensibilidad antibi&oacute;tica y recomendaciones de tratamiento para <i>Streptococcus pneumoniae</i>. Anales Sist. Sanit. Navarra. 2004. 27 (1): 37-43. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=051598&pid=S1012-2966200900020000600017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="verdana">18. Pradier C, Dunais B, Carsenti-Etesse H, et al. Pneumococcal resistance patterns in Europe. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis., 1997. 16: 644-647 </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=051599&pid=S1012-2966200900020000600018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="verdana">19. Hortal M, Logvren M, De la Hoz T. Antibiotic resistance in S. pneumoniae in Latin America countries. Microb Drug Resist 2001; 7(4):391-401. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=051600&pid=S1012-2966200900020000600019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="verdana">20. Cortez P, Albarracin A, Regueira M, et al. Characterization of In Vitro-Generated and Clinical Optochin-Resistant Strains of <i>Streptococcus pneumoniae</i> Isolated from Argentina. J. Clin. Microbiol. 2008. 46(6): 1930-34 </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=051601&pid=S1012-2966200900020000600020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="verdana">21. Becton Drive casa comercializadora de sistemas de diagn&oacute;stico Estados Unidos. Disponible en la web (citado 2 de junio 2009) </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=051602&pid=S1012-2966200900020000600021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="verdana">22. Kellogg J, Bankert D, Elder C, et al .Identification of <i>Streptococcus pneumoniae</i> Revisited. J. Clin. Microbiol. 2001 39(9): 3373-3375 </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=051603&pid=S1012-2966200900020000600022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="verdana">23. Dagan R, Shriker O, Hazan I, et al. Prospective Study To determine Clinical Relevance of Detection of Pneumococcal DNA in Sera of Children by PCR. J. Clin. Microbiol. 1998. 36(3): 669-673. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=051604&pid=S1012-2966200900020000600023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="verdana">24. Parra E, Casta&ntilde;eda E, Moreno J. Identificaci&oacute;n de Haemophilus influenzae,<i>Streptococcus pneumoniae</i> y Neisseria meningitidis por reacci&oacute;n en cadena de la polimerasa. Biom&eacute;dica. Instituto Nacional de Salud. Colombia. 2007. 27(3):454-460 </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=051605&pid=S1012-2966200900020000600024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="verdana">25. Carbalho M de G, Tondella M, Mc.Caustland K, et al. Evaluation and Improvement of Real-Time PCR Assays Targeting lytA, ply, and psaA Genes for Detection of Pneumococcal DNA. J. Clin. Microbiol. 2007. 45 (8): 2460-66. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=051606&pid=S1012-2966200900020000600025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font size="2" face="verdana">26. Mc. Avin J, Reilly P, Roudabush R, et al. Sensitive and Specific MethodforRapid Identification of <i>Streptococcus pneumoniae</i> Using Real-Time Fluorescence PCR. J. Clin Microbiol. 2001.39(10): 3346-3351 </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=051607&pid=S1012-2966200900020000600026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><P align="right"><font size="2" face="verdana"><b>Recibido:</b> 23 de julio de 2009; <b>Aceptado:</b> 19 de septiembre de 2009 </font></P>      ]]></body><back>
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