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<publisher-name><![CDATA[Facultad de Medicina de la Universidad Mayor de San Simón]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[ESTANDARIZACIÓN DE LA PRUEBA DE ELISA PARA EL INMUNODIAGNÓSTICO DE HIDATIDOSIS HUMANA EMPLEANDO ANTÍGENOS DE PRODUCCIÓN LOCAL]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[A quatitative enzime-linked immunosorbent assay (ELISA) for the immunodiagnosis of hidatidosis is described. The ELISA was standardized using Echinococcus granulosus cyst fluid antigen -ELISA obtained from Sheep Liver. (ELISA-HID) were used to screen for cyst hidatic-specific IgC antibidies in serum samples from 17 patients with surgycally confirmed hydatic disease, 26 serum samples of patients healthy and 9 samples of serum from patients whit other cestode infections or with an another illess were used as controls. The sensitivity and specificity the ELISA -HID was 100% and 96% respectively. We observed relatively frequent cross-reactions with other parasitic diseases (cysticecosis). Cestode- related cross-reactivity can be resolved by the complementary use of Taenia solium cysticercosis-specitic immunoblotting. No cross reacction were noted in patients infected with Hymenolepis nana, T. cruzy and T. gondii. The excellent sensitivity and specificity of the ELISA-HID make the assay a potentially usefull tool in screening for antibodies agains Equinococosis.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>TRABAJO ORIGINAL</b></font></p>     <p align="right">&nbsp; </p>     <p align="center"><font size="4"><b><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">ESTANDARIZACI&Oacute;N DE LA PRUEBA DE ELISA PARA EL INMUNODIAGN&Oacute;STICO DE HIDATIDOSIS HUMANA EMPLEANDO ANT&Iacute;GENOS DE PRODUCCI&Oacute;N LOCAL</font></b></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><b><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">* Amilcar A. Flores L., * Patricia Rodriguez H.</font></b></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">* Lab. de   Inmunolog&iacute;a - SEDILAB (Fac. Medicina - UMSS)</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p> <hr noshade="noshade" />     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>RESUMEN</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se describe una prueba cualitativa. Enzyme Linked   Immunosorbent Assay (ELISA) para el inmunodiagn&oacute;stico de hidatidosis. El ELISA   fue estandarizado usando l&iacute;quido hidat&iacute;dico   proveniente de quistes desarrollados naturalmente en h&iacute;gado de   oveja. El ELISA -HID fue usado como test de screening para detectar anticuerpos   espec&iacute;ficos anti IgC en muestras de sueros de 17 pacientes   confirmados por cirug&iacute;a; fueron empleadas   como sueros controles positivos, 26 muestras de sueros de   personas sanas y 9 sueros de pacientes con otras infecciones por cestodos u   otras infecciones. Los resultados del test de ELISA- HID mostraron que el test   tiene una sensibilidad y especificidad del 100 % y 96 % respectivamente.   Nosotros observamos una relativa frecuencia de reacciones cruzadas con otras   enfermedades parasitarias (cisticercosis). Estas reacciones cruzadas con otros   cestodos pueden ser resueltos testando estos con pruebas m&aacute;s espec&iacute;ficas   complementarias como el Inmunobloting. No se encontr&oacute; reacciones   cruzadas con muestras de sueros de pacientes con Hymenolepis nana,   T. cruzi y T. gondii. La excelente sensibilidad y especificidad del ELISA- HID   hace que el test sea una importante herramienta de diagn&oacute;stico para   detectar anticuerpos espec&iacute;ficos contra la equinococosis,   cuyos resultados positivos pueden ser valorados por test confirmatorios como el   Inmunobloting.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><i>Palabras   claves: </i></b><i>E. Granulosus, Hidatidosis, Quiste Hidat&iacute;dico, Reacci&oacute;n Cruzada,     ELISA, Ant&iacute;geno (Ag).</i></font></p> <hr noshade="noshade" />     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>ABSTRACT</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">A quatitative   enzime-linked immunosorbent assay (ELISA) for the immunodiagnosis of   hidatidosis is described. The ELISA was standardized using   Echinococcus granulosus cyst fluid antigen -ELISA obtained from Sheep Liver.   (ELISA-HID) were used to screen for cyst hidatic-specific IgC   antibidies in serum samples from 17 patients with surgycally confirmed   hydatic disease, 26 serum samples of patients healthy and 9 samples   of serum from patients whit other cestode infections or with an another illess   were used as controls. The sensitivity and specificity the ELISA -HID was 100% and 96% respectively. We observed relatively frequent   cross-reactions with other parasitic diseases (cysticecosis). Cestode-   related cross-reactivity can be resolved by the complementary use of Taenia   solium cysticercosis-specitic immunoblotting. No cross reacction were   noted in patients infected with Hymenolepis nana, T. cruzy and T. gondii. The   excellent sensitivity and specificity of the ELISA-HID make the assay a   potentially usefull tool in screening for antibodies agains   Equinococosis.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><i>Key words: </i></b><i>Echinococcus   granulosus, hidatidosis, cyst hidatidic, cross reaction, ELISA, antigen (Ag)</i></font></p> <hr noshade="noshade" />     <p>&nbsp;</p>     <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><br clear="all" /> </font></p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>INTRODUCCION</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La Equinococosis o enfermedad hidat&iacute;dica, posiblemente sea una de las enfermedades parasitarias m&aacute;s dif&iacute;ciles de entender debido a las peculiares formas larvales qu&iacute;sticas que se desarrollan,<sup>13</sup> la hidatidosis humana es una enfermedad producida por el estadio larval de Echinococcus granulosus, la   cual se produce cuando el hombre se convierte en huesped intermediario accidental de dicho c&eacute;stodo, al consumir alimentos contaminados con huevos presentes en las materias fecales de los hu&eacute;spedes definitivos.<sup>5,11, 14,20</sup> </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La localizaci&oacute;n m&aacute;s frecuente   de estos quistes se   halla en h&iacute;gado, pulmones y en ocasiones puede ubicarse en cualquier otro   organo<sup>1</sup>. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La Hidatidosis   es una zoonosis que afecta principalmente a las zonas agr&iacute;colas y ganaderas en America Latina. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los pa&iacute;ses que registran los m&aacute;s altos &iacute;ndices de infecci&oacute;n   son Argentina, Chile, Uruguay, Brasil, Peru, y en menor escala, Colombia, Bolivia y Paraguay.<sup>18,19</sup> </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En Bolivia no se   cuenta con datos sobre la distribuci&oacute;n de esta   parasitosis, solo algunos reportes de rutina a nivel de mataderos, que son   considerados incompletos, puesto que no   incluyen casos de infestaciones   humana, <sup>15</sup> aunque en nuestra casu&iacute;stica se encontr&oacute; casos de hidatidosis humana. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El diagn&oacute;stico temprano y subsecuente tratamiento puede   reducir la mortalidad, ya que la   sintomatolog&iacute;a varia de acuerdo a la tasa de desarrollo del   parasito<sup>1,14</sup>. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En la gran mayor&iacute;a de los casos el diagn&oacute;stico est&aacute; establecido sobre las caracter&iacute;sticas cl&iacute;nicas de las   lesiones, sintomatolog&iacute;a y criterio epidemiol&oacute;gico. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El diagn&oacute;stico frecuentemente   es confirmado por t&eacute;cnicas de imagen y m&eacute;todos serol&oacute;gicos.<sup>16</sup> </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Sin embargo la sintomatolog&iacute;a cl&iacute;nica no aparece hasta que la estructura del par&aacute;sito obtiene un cierto tama&ntilde;o que normalmente requiere varios  a&ntilde;os despu&eacute;s   de la primera infecci&oacute;n<sup>9</sup> </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Ciertos casos controversiales en el diagn&oacute;stico de quistes hidat&iacute;dicos se basa en el examen microsc&oacute;pico del l&iacute;quido   hidat&iacute;dico, demostrando la presencia de   protoesc&oacute;lices, ganchos o fragmentos de la membrana laminar.<sup>8,9,19</sup> </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El diagn&oacute;stico serol&oacute;gico   esta basado en la detecci&oacute;n de anticuerpos,<sup>3 </sup>dicho diagn&oacute;stico se   realiza por n&uacute;merosas t&eacute;cnicas como la Hemaglutinaci&oacute;n Indirecta (HAI), Enzime linked immuno sorbent assay (ELISA),   Inmuno-fluorescencia   (IFI), Inmunoelectroforesis e Inmunoprecipitaci&oacute;n. <sup>5,12,18,19</sup> </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Estas&nbsp;&nbsp; pruebas serol&oacute;gicas son una alternativa diagn&oacute;stica,   ya que permiten un diagn&oacute;stico precoz de esta parasit&oacute;sis. Sin embargo pese a la alta sensibilidad, de estas t&eacute;cnicas serol&oacute;gicas, tienen la   desventaja de ser bastante inespec&iacute;ficas por el n&uacute;mero elevado de reacciones cruzadas que se presentan con otras   infecciones parasitarias,<sup>22</sup> tal el caso de que una reacci&oacute;n   ser&oacute;logica para hidatidosis, tiene reacciones cruzadas con cisticercosis y/o con T. saginata, lo que   hace que ninguna de estas t&eacute;cnicas   individualmente sea satisfactoria, por lo que se recomienda usar combinaciones   de dos o m&aacute;s test.<sup>4</sup></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El proposito del presente trabajo fue el estandarizar el test de ELISA empleando como ant&iacute;geno, l&iacute;quido hidat&iacute;dico obtenido de quistes desarrollados naturalmente en v&iacute;sceras de ganado ovino, ya que es imprescindible la necesidad de realizar   pruebas inmunol&oacute;gicas confiables que puedan dar   resultados inmediatos, que   sean accesibles y tengan una buena aceptaci&oacute;n por realizarse en periodos cortos de   tiempo.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><b><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">MATERIALES Y METODOS</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Preparaci&oacute;n del Ant&iacute;geno</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Un &uacute;nico lote de ant&iacute;geno para el ELISA (Enzime Linked Immuno Sorbent Assay) fue   preparado a partir l&iacute;quido hidat&iacute;dico obtenido de ganado ovino, infectado naturalmente.   Solo fueron seleccionados los   quistes Hidat&iacute;dicos f&eacute;rtiles para el presente estudio, obtenidos del matadero del   municipio de Quillacollo   en el departamento de Cochabamba. La preparaci&oacute;n   del ant&iacute;geno para hidatidosis se realiz&oacute;   siguiendo el protocolo descrito por Caron, A. (2001). El l&iacute;quido hidat&iacute;dico   fue aspirado y transferido a tubos falcon de 50 ml y posterior centrifugado a 20.000 g. a 4 &deg;C por 1 hora, el sobrenadante se dializ&oacute; frente a agua destilada a una relaci&oacute;n de 1:100 por 24 horas a 4 &deg;C (con intervalos de cambio de agua destilada cada 8 horas) con   agitaci&oacute;n usando membranas de di&aacute;lisis. Despu&eacute;s de la di&aacute;lisis,   el l&iacute;quido fue filtrado con filtros de porosidad de 0.45 y 0.22 &micro;m (Millex filters, Millipore   Corporation, Betford, MA,   USA). El filtrado de l&iacute;quido hidat&iacute;dico fue dividido en al&iacute;cuotas   y almacenado en freezer de -80&deg;C antes y despu&eacute;s de   su liofilizaci&oacute;n. La concentraci&oacute;n de prote&iacute;nas del ant&iacute;geno se determin&oacute; mediante el m&eacute;todo de Bradford modificado descrito por Spector T. (1 978), el cual emple&oacute; la alb&uacute;mina Bovina S&eacute;rica (BSA) como prote&iacute;na Standard. La cuantificaci&oacute;n de prote&iacute;nas antig&eacute;nicas se realiz&oacute; en el paquete estad&iacute;stico Slide Write ver.   5.0 el cual tomo como   curva estandar los valores de absorbancia del BSA expresados en Densidades opticas (DOs) y le&iacute;da en un espectrofot&oacute;metro a&nbsp;&nbsp; 630 nm.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Sueros controles</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Muestras de sueros fueron colectados de la seroteca del Laboratorio de Inmunolog&iacute;a   perteneciente a los laboratorios   de SEDILAB y del Laboratorio de Parasitolog&iacute;a de la Universidad Libre de Bruselas -Belgica: 1 7 muestras de sueros de   pacientes positivos para   Hidatidosis confirmados por la presencia del quiste en tejidos y serolog&iacute;a, fueron empleados como sueros controles positivos. 26   sueros de pacientes   sanos, 6 muestras de sueros de pacientes con cisticercosis confirmados por serolog&iacute;a y cl&iacute;nica y 3 sueros de pacientes con otras   patolog&iacute;as (Chagas, Toxoplasmosis   y Hymenolepis nana) fueron empleados como sueros controles. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>ELISA</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La concentraci&oacute;n &oacute;ptima de los reactivos incluidos, la concentraci&oacute;n del ant&iacute;geno y la diluci&oacute;n &oacute;ptima de sueros controles, fueron   determinados por curvas de titulaci&oacute;n (curvas dosis respuesta). Policubetas Inmunolon de Poliestireno (Maxi Sorb)   fueron cubiertas con   parafill en cada etapa del desarrollo la t&eacute;cnica de ELISA. Entre cada etapa de la reacci&oacute;n , las placas fueron lavadas 5 veces   con intervalos de 1 minuto   con PBS conteniendo 0,05% de Tween 20(PBS-T). Microplacas fueron incubadas toda la noche a 4&deg;C con 50 &micro;l de   ant&iacute;geno (diluidos en buffer Carbonato pH. 9.6 a una concentraci&oacute;n de 8 &micro;g/ml&nbsp;&nbsp; de&nbsp;&nbsp; prote&iacute;nas&nbsp;&nbsp; solubles).&nbsp;&nbsp; Luego&nbsp;&nbsp; de&nbsp;&nbsp; la Saturaci&oacute;n con 100 &micro;l PBS - BSA al 1   % por dos horas a 37 &deg;C, muestras de sueros diluidos 1:400 en PBS Tween 0.05%, BSA 03% (50&micro;l) fueron   incubados por 2 horas, sueros controles   positivos, negativos y blanco de la reacci&oacute;n , fueron incluidos en   cada ensayo   de la placa. El conjugado (Ac anti -   IgG, M, A (H + L   )&nbsp;&nbsp; humana&nbsp;&nbsp; marcada&nbsp;&nbsp; a&nbsp;&nbsp;&nbsp; la&nbsp;&nbsp;   peroxidasa&nbsp;&nbsp; Bio-Rad   Laboratorios&nbsp;&nbsp; fue&nbsp;&nbsp; diluido&nbsp;&nbsp;   1/1000&nbsp;&nbsp; en&nbsp;&nbsp; PBS-Tween   0.05%, BSA 0.3 %&nbsp; e incubado por 1   hora a 37 &deg;C.<br />   El ensayo fue revelado   adicionando 100 &micro;l de enzima substrato consistiendo de ABTS (2.2 - Azino-di-(3 &auml;thyl-benzthiazolinsulfonat&nbsp;&nbsp;   (6))&nbsp;&nbsp; (soluci&oacute;n &nbsp; A)&nbsp;&nbsp; y peroxido de hidrogeno (soluci&oacute;n B) vol. 1:1 por 15 minutos   a temperatura ambiente y oscuridad. Las placas inmediatamente fueron le&iacute;das a 405 nm en un espectrofot&oacute;metro.   El Cut - Off fue establecido usando la media de tres muestras no reactivas m&aacute;s tres desv&iacute;os estandar (Ads). La interpretaci&oacute;n de los resultados se realiz&oacute; en funci&oacute;n al valor del Cut - Off donde muestras de sueros con valores   inferiores al Cut - Off se consideraron como negativas y por el contrario muestras de sueros con   valores superiores se   consideraron Positivas. La evaluaci&oacute;n de la sensibilidad y especificidad de la t&eacute;cnica de ELISA   para ambas parasitosis se   realiz&oacute; empleando la tabla de cuatro casillas descrita por Gonzales, G. (1986).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="3"><b><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">RESULTADOS</font></b></font></p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b></b></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Dosificaci&oacute;n de Prote&iacute;nas Ant&iacute;genicas</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El c&aacute;lculo de la dosificaci&oacute;n de prote&iacute;nas antig&eacute;nicas a partir de l&iacute;quido hidat&iacute;dico total, se realiz&oacute; con el paquete estad&iacute;stico Slide Write ver.   5.0, el cual tom&oacute; como curva estandar los valores de   absorbancia del BSA   expresados en Densidades opticas (DO), la cual linealiz&oacute;   aplicando la curva de regresi&oacute;n   sigmoidal con un   coeficiente de correlaci&oacute;n de 0.937. Se determin&oacute; que la concentraci&oacute;n de   prote&iacute;nas antig&eacute;nicas   solubles de l&iacute;quido hidat&iacute;dico proveniente de ganado ovino (oveja) fue de 16,213 mg/ml. La confirmaci&oacute;n de los quistes hidat&iacute;dicos se realiz&oacute; por medio de la observaci&oacute;n directa al microscopio del sedimento del l&iacute;quido hidat&iacute;dico   donde se pudo observar los   elementos caracter&iacute;sticos de esta especie de par&aacute;sito (ganchos y protoescolices).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Estandarizaci&oacute;n de la t&eacute;cnica de ELISA -HID</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La concentraci&oacute;n del ant&iacute;geno soluble y la diluci&oacute;n &oacute;ptima de los sueros controles se   realiz&oacute; mediante curvas dosis respuesta.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La <a href="#g1">gr&aacute;fica 1</a> muestra el comportamiento de las diferentes concentraciones del ant&iacute;geno   (8&micro;g/ml-0,0625 &micro;g/ml)   frente a una diluci&oacute;n de1/200 de los sueros controles positivos y negativos, donde podemos observar que la mejor concentraci&oacute;n de   ant&iacute;geno fue de 8&micro;g/ml.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="g1" id="g1"></a></font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Gr&aacute;fica 1</b></font></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/gmb/v29n1/a02_grafico_01.gif" /></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Con respecto a la diluci&oacute;n de los sueros controles la <a href="#g2">gr&aacute;fica 2</a> muestra que la diluci&oacute;n &oacute;ptima para el empleo en   la t&eacute;cnica de ELISA-HID fue de 1/400.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="g2" id="g2"></a></font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Gr&aacute;fica 2</b></font></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/gmb/v29n1/a02_grafico_02.gif" /></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Evaluaci&oacute;n de la t&eacute;cnica de ELISA </b>- <b>HID</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La   evaluaci&oacute;n de la T&eacute;cnica de ELISA estandarizada en nuestros laboratorios se realiz&oacute; empleando 17 sueros controles positivos y 26 sueros controles negativos.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La <a href="#g3">gr&aacute;fica 3</a> muestra el comportamiento de los sueros controles.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="g3" id="g3"></a></font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Gr&aacute;fica 3</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><img src="/img/revistas/gmb/v29n1/a02_grafico_03.gif" /></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El calculo del Cut Off se determin&oacute; con la media de 3 controles negativos m&aacute;s 3   desviaciones estandar.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Determinaci&oacute;n de la   Sensibilidad y Especificidad del ELISA -HID</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Se empleo la <a href="#t1">Tabla de Cuatro casillas</a> para determinar la   sensibilidad y especificidad del&nbsp; ELISA-HID, paralelamente a estas determinaciones se determin&oacute;: La precisi&oacute;n, valor predictivo positivo   y valor predictivo   negativo de la t&eacute;cnica.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="t1" id="t1"></a></font></p>     <p align="justify"><font size="2"><b><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Tabla 1</font></b></font></p>     <p align="center"><font size="2"><b><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Tabla de cuatro casillas</font></b></font></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/gmb/v29n1/a02_tabla_01.gif" /></p> <table width="100%" border="0">   <tr>     <td width="25%">&nbsp;</td>     <td width="50%" valign="top">    <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>La evaluaci&oacute;n de la t&eacute;cnica de ELISA empleando extractos totales de l&iacute;quido hidat&iacute;dico       mostr&oacute; una sensibilidad del 100% (A /A +C);       especificidad del 96 % (D/B +D); precisi&oacute;n del 97 % (A +D)/ (A + B+ C + D); valor predictivo positivo del 94 % (A </i>/ <i>A + B) y un valor predictivo negativo del 100% (D/C +         D).</i></font></p></td>     <td width="25%">&nbsp;</td>   </tr> </table>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La <a href="#t1">tabla 1</a> muestra los resultados del an&aacute;lisis de la tabla de cuatro casillas, donde el   ELISA-HID mostr&oacute;: una   sensibilidad del 100 %, especificidad del 96 %, precisi&oacute;n del 97%, valor   predictivo positivo del 94 % y&nbsp; valor predictivo negativo del 100 %.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Estudio de las   reacciones cruzadas</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La <a href="#t2">tabla 2</a> muestra la evaluaci&oacute;n del test de ELISA -HID frente a un panel de 9 sueros (6 de   pacientes con Cisticercosis, 1 de paciente con Chagas, 1 paciente con Toxoplasmosis y 1   paciente con Hymenolepis   nana), empleando como ant&iacute;geno l&iacute;quido hidat&iacute;dico. Dos de 6 muestras de sueros de pacientes con cisticercosis, dieron   riesgo de reacciones   cruzadas. No se encontro resultados falsos positivos con ninguna otra muestra de sueros testados por el test de ELISA - HID.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="t2" id="t2"></a></font></p>     <p align="center"><img src="/img/revistas/gmb/v29n1/a02_tabla_02.gif" /></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Tabla 2: Reacciones cruzadas</b></font></p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>DISCUSION</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La Hidatidosis humana est&aacute; catalogada entre una de las m&aacute;s peligrosas enfermedades producidas por cestodos por lo cual su investigaci&oacute;n es importante.   Se realiz&oacute; un gran esfuerzo para la   identificaci&oacute;n del par&aacute;sito, como la   purificaci&oacute;n del ant&iacute;geno para la aplicaci&oacute;n en el ELISA. Sin embargo   pese a estos factores es dif&iacute;cil obtener   suficiente cantidad de este ant&iacute;geno   para su uso extensivo, este mismo hecho lo menciona Liance M. (2000). El inmunodiagn&oacute;stico es una importante herramienta en el diagn&oacute;stico de la infecci&oacute;n de quistes hidat&iacute;dicos,ya que juega un   papel importante en   la confirmaci&oacute;n del diagn&oacute;stico cl&iacute;nico   y en estudios epidemiol&oacute;gicos.<sup>3</sup> En adici&oacute;n a las t&eacute;cnicas de imagen, un   confiable serodiagn&oacute;stico, mejora el   diagn&oacute;stico cl&iacute;nico del paciente en cuesti&oacute;n.   Las t&eacute;cnicas serol&oacute;gicas convencionales estan basadas primeramente sobre test   de screennig tal como un ELISA y una subsecuente confirmaci&oacute;n por test como el Arco - 5 o el Immunobloting para el 8 Kd antfgen.<sup>3,14,17 </sup>El   presente estudio se realiz&oacute; para   determinar el valor diagn&oacute;stico de la t&eacute;cnica de ELISA-HID estandarizada en nuestro laboratorio, empleando ant&iacute;genos propios, para este objetivo sueros controles negativos y sueros controles   positivos confirmados por test   serol&oacute;gicos (ARCO-5 y ELISA) y la   presencia del quiste en los tejidos, fueron testados por el ELISA-HID.   Nuestras estrategia de evaluaci&oacute;n inclu&iacute;a   determinar la sensibilidad, especificidad,   Valor predictivo positivo y negativo, as&iacute; como la precisi&oacute;n del ELISA-HID. Nosotros mostramos que la sensibilidad   y especificidad de la t&eacute;cnica de   ELISA fue del 100% y 96% respectivamente, lo que demuestra su buena sensibilidad y especificidad. Otros autores obtuvieron similares resultados   como Poretti et. al. (1999) quien obtuvo una sensibilidad del 91 % y   especificidad del 82 % del ELISA o Verastegui, M. et. al. (1992) que hallo una   sensibilidad y especificidad del 80   %, empleando l&iacute;quido hidat&iacute;dico como   ant&iacute;geno. Estas variaciones de sensibilidad   y especificidad estan relacionadas con la calidad, naturaleza, (preparaci&oacute;n y purificaci&oacute;n del extracto antigenico), inmovilizaci&oacute;n del ant&iacute;geno, como tambi&eacute;n de la metodolog&iacute;a seleccionada para la actividad enzimatica, conjugado, substrata,   diluci&oacute;n empleada en los sueros o el criterio empleado para el calculo del Cut   - Off.<sup>9,17</sup> El empleo de extractos totales como ant&iacute;geno incrementa la sensibilidad de las pruebas de ELISA, sin embargo   la gran desventaja es que   provee un elevado porcentaje de reacciones cruzadas especialmente con cisticercosis y otras   infecciones helm&iacute;nticas.<sup>14</sup> Es evidente que el empleo de ant&iacute;genos purificados mejora la   especificidad del ensayo pero conduce a una   baja sensibilidad <sup>14</sup>, pese a   esto, varios autores mencionan que trabajar con ant&iacute;genos purificados provee un   confiable serodiagn&oacute;stico diferencial   entre hidatidosis, cisticercosis y teniasis.<sup>2</sup> Sin embargo la sensibilidad y especificidad no solo dependen de la estandarizaci&oacute;n de las t&eacute;cnicas, tambi&eacute;n depende de la respuesta inmune del hospedero, localizaci&oacute;n , n&uacute;mero y estado evolutivo del   par&aacute;sito .<sup>4</sup> Con respecto a este hecho Verastegui (1992) menciona que los pacientes con quistes hidat&iacute;dicos   hepaticos son los que mejor respuesta inmunologica presentan en comparaci&oacute;n con pacientes con quistes pulmonares o en otras localizaciones. Las reacciones cruzadas halladas con cisticercosis   empleando el ELISA-HID fue de 33%,   este porcentaje hallado era de   esperarse ya que varios estudios muestran   que una mayor&iacute;a de los test serol&oacute;gicos exhiben algo de reacciones cruzadas con sueros de pacientes con otras   helmintiasis particularmente con cisticercosis causada por Taenia solium o   hidatidosis causada por E. multilocularis, m&aacute;s aun si se emplea extractos totales de l&iacute;quido hidat&iacute;dico como   ant&iacute;geno <sup>12, 14, 16, 17</sup> Con respecto a este hecho Poretti D. encontro un 58% de reacciones cruzadas con sueros   de pacientes con cisticercosis empleando su EgHF-ELISA Sin embargo estas   dos infecciones son cl&iacute;nicamente muy   diferentes, en aquellos pacientes que presentan   desordenes neurol&oacute;gicos, tumores o lesiones en el cerebro quienes presentan una serolog&iacute;a positiva para hidatidosis, el problema puede estar   descartado testando el suero del   paciente con un test para   cisticercosis.<sup>14</sup> En este estudio no se pudo determinar el porcentaje de reacciones cruzadas con otras helmintiasis ya que no se encontro   resultados falsos positivos con   ninguna de las muestras de sueros testados, sin embargo segun los reportes   citados en este trabajo, existe   reacciones cruzadas con H. nana,   strongyloidiasis, toxocariasis, onchocercosis, y angiotrongyloidiasis o infecciones causados por nematodos. <sup>16</sup> Con respecto a este   hecho, podemos indicar que nuestro   n&uacute;mero de muestras testadas para   estas infecciones es muy bajo lo que no nos permite realizar una comparaci&oacute;n m&aacute;s real con otros reportes. Con   referencia a este hecho Coltorti et. al. (1990) mencionan que macromoleculas de diversos pesos moleculares portadoras de   h&aacute;ptenos fosforilcolina (FC) han sido detectadas tanto en extractos como en productos de excreci&oacute;n de origen parasitario. Este h&aacute;pteno esta ampliamente distribuido en la naturaleza y se lo considera como una de las causas de las reacciones cruzadas que se observa en el inmunodiagn&oacute;stico de enfermedades parasitarias.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Shepheerd y Mcmanus identiticaron el h&aacute;pteno FC asociado a macromoleculas del l&iacute;quido hidat&iacute;dico y sugirieron su presencia en el Arco 5. El l&iacute;quido hidat&iacute;dico empleado contiene componentes s&eacute;ricos de la especie de la cual se obtuvieron los quistes y se ha sugerido que estos componentes podr&iacute;an ser causa de las reacciones cruzadas.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>CONCLUSION</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Este estudio&nbsp; revelo el&nbsp; considerable potencial&nbsp; del ELISA -HID para el diagn&oacute;stico   de la Hidatidosis, sin embargo no podemos comparar su sensibilidad y especificidad con los del Inmunoblot, pero el ELISA es m&aacute;s barato y f&aacute;cil de desarrollar cuando varios sueros necesitan ser testados, por lo cual el ELISA- HID estandarizado en laboratorio puede ser empleado como   test serol&oacute;gico de screening, donde todos los casos positivos por el ELISA deber&iacute;an entonces necesitar ser confirmados por el DD5 y EITB test. Con referencia a las reacciones cruzadas que presenta con muestras con cisticercosis, se puede superar testando un suero con&nbsp; un&nbsp; ELISA-HID positivo con un   segundo test confirmatorio, para esto nosotros recomendamos usar el Inmunobloting o la t&eacute;cnica del ARCO-5, ya que al combinar el ELISA con los test confirmatorios&nbsp;respectivos se asegura el hecho de discriminar entre hidatidosis y cisticercosis y descartar las reacciones falso positivas que ocurren con otras helmintiasis. </font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>BIBLIOGRAFIA</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">1. Acha P.N., Szyfres B. Zoonosis y Enfermedades Transmisibles al Hombre y los Animales. Publicaci&oacute;n Cient&iacute;fica No 503. Washington DC. 2da. Edici&oacute;n 1986 PP 734-751.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=043031&pid=S1012-2966200600010000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">2. Akira I.   Basic and Applied Immunology&nbsp; in Cestodes Infection: From&nbsp;&nbsp; Hymenolepis&nbsp; to&nbsp; Taenia&nbsp;and&nbsp;Echinococcus.&nbsp;International Journal for   Parasitology. 1997;   27(10). pp. 1203-1211</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">3. Akira I., Liang MA., Schantz P.M.,&nbsp;Liu   YH., et al. Diferential Serodiagnostic tor   Cystic and Alveolar Echinococcosis Using Fraction of Echinococcus granulosus Cyst   Fluid (Antigen B) and E. Multilocularis   Protoscolex (EM 18). The American   Society of Tropical Medicine and   Hygiene. 1999: 60(2). pp. 188-192.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">4. Amelung G. Hidatidosis   y Enfermedad Hidatidica. Monograias.com</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">5.   Botero&nbsp;D., Restrepo M. Parasitosis Humana. 3ra. Edici&oacute;n .&nbsp;Ed.Corporaci&oacute;n para Investigaciones Biologicas. Medellin Colombia 1998.&nbsp;   pp. 342 - 367.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=043035&pid=S1012-2966200600010000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">6. Caron, A. Servicio de Production d   Antigenes Parasitaires. Institut   Pasteur. Lille- Francia, 2001.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=043036&pid=S1012-2966200600010000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">7.   Coltorti   E. A.,&nbsp;&nbsp; E. Fernandez.. E.R. Marget., J. D. Scozzina., E.A.Cuarnera.&nbsp;&nbsp;   Detecci&oacute;n    de&nbsp; portadores Asintomaticos&nbsp; de Quistes Hidat&iacute;dicos:   Aumento de la especificidad del ensayo Inmunoenzimatico. Rev. Inst.   Med. Trop. Sau Paulo. Julho-Agosto 1990; 32 (4)   pp.   275-284.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">8.   Clavel A., Varea M., Doiz O., Lopez L., Quilez J., Castillo F.J., Rubio   C, Gomez L. Visualization of Elements: Comparason of several Technicques. Journal of Clinical Microbiology. 1999; pp. 1561-1563.   .</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">9. Gonzales,   G., Lorenzo C, Nieto A., Improved Immunodiagnostic   of Cystic Hidatid Disease by Using a Sinthetic Pectide with Higher Diagnostic Value   than that of its Parent Protein, Echinococcus granulosus Antigen B. Journal of&nbsp; Clinical   Microbiology. Nov. 2000, P.1561-1563.</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">10. Gonzales C. Epidemiologia. Ed.   Addison-Wesley Iberoamericana S A. Wilmington, Deloware. E.U.A. 1486.   pp. 175-181.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=043040&pid=S1012-2966200600010000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">11.   Joklin, Willelt, Amos, Wilfert, Zinsser. Microbiologia. 20a edition. Ed.   Panamericana. Buenos Aires Argentina. 1996. pp 1604-1605</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=043041&pid=S1012-2966200600010000200011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">12. Kharebov A.,&nbsp; Nahmias J.,&nbsp; EL-ON J.,&nbsp; Cellular and Humoral Immune Response of Hidatidosis Patients to Echinococcus Granulosus Purified Antigens. Am. J.   Trop. Med. Hyg. 1997;&nbsp;57(5)<i>. </i>pp. 619-625.</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">13. Koneman. Allen. Dowell. Janda.   Sommers. Winn. Diagnostico Microbiol&oacute;gico.   3ra. edici&oacute;n . Editorial Panamericana. Mexico DF. 1997. pp 753-759.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=043043&pid=S1012-2966200600010000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">14. Lianc&nbsp;   M., Janin V., Bresson - Hadni S., et. al. Immunodiagnosis of&nbsp;   Equinococcus&nbsp; Infection: Confirmatory&nbsp; Testing&nbsp; and&nbsp; Species Differentiation   by a New Commercial Western Blot. Journal Of Clinical Microbiology.   Oct. 2000, p. 3718-3721. </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">15. Ministerio de prevision Social y salud   P&uacute;blica 1994. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=043045&pid=S1012-2966200600010000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">16.Planchart,   S., Botto C, Alarcon De Noya B., Bonifacino R., Vivas L., Spencer L., Vivas   S. Evaluation of the double difusion, Enzime Immunoassay and   Immunoblotting Techniques, for the Diagnosis of Human Hydatid disease   in Tropical Areas. Rev. Inst. Trop. Sau Paulo. Maio-Junho 1994;   36(3). pp. 295-210.</font></p>     ]]></body>
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