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<abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Resumen El efecto que tiene la radiación solar sobre la morfología, biomasa y distintos compuestos químicos presentes en las plantas es de interés para la seguridad alimentaria frente al cambio climático. Este estudio tiene como objetivo contribuir al conocimiento del efecto de radiación infrarroja (IR) y ultravioleta (UV-A, UV-B) sobre la concentración de ácido oxálico, la biomasa y morfología en Oxalis triangularis (Oxalidaceae). Para esto, la especie fue expuesta a luz visible con radiación IR, UV-A o UV-B por separado y se estableció un grupo de control expuesto únicamente a luz visible. Cinco semanas después se contabilizó el número de hojas, se observaron los cambios morfológicos, se obtuvo el peso fresco y seco de las hojas y rizomas de cada espécimen, y la cuantificación de ácido oxálico se realizó por espectrofotometría UV/Visible. Los resultados mostraron que la biomasa, altura y número de hojas aumenta con la exposición a la radiación infrarroja, mientras que no se determinaron diferencias significativas en estos parámetros con la radiación UV-A. Con la radiación UV-B se observó despigmentación en los foliolos, un cierto brillo en los mismos por aumento probable de las ceras y una disminución en la altura del peciolo. Respecto a la concentración de ácido oxálico no se observaron diferencias significativas con los diferentes tratamientos, aunque se observa una tendencia a disminuir con IR y aumentar con UV-B. Estos hallazgos podrían tener implicaciones en plantas que contengan ácido oxálico por su valor nutricional, por esta razón se debe continuar con más estudios.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align=right><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>DOI: </b>10.34098/2078-3949.37.5.2<b>    <br>   ART&Iacute;CULOS ORIGINALES COMPLETOS</b></font></p>     <p align=right>&nbsp;</p>     <p align="center"><strong><font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Measurement of morphological and biomass changes, and of the  oxalic acid     <br>   contents, after IR and UV radiation in Oxalis Triangularis</font></strong></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Medici&oacute;n de  los cambios morfol&oacute;gicos y de biomasa, y del contenido de &aacute;cido     <br>   ox&aacute;lico,  despu&eacute;s de irradiaci&oacute;n IR y UV en Oxalis Triangularis</strong></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align=center><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Ruth Nina<sup>1</sup>, Carla Maldonado<sup>1</sup>,   Esther Valenzuela<sup>1</sup>, Santiago Tarqui<sup>2</sup>, Armando   R. Ticona-Bustillos<sup>3</sup>    <br>   Flavio Ghezzi<sup>3</sup>, Giovanna R. Almanza<sup>2,*</sup></strong><sup></sup></font>    <br>   <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><sup>1 </sup>National     Herbarium of Bolivia LPB, Instituto de Ecolog&iacute;a IE, Department of Biology,     Facultad de Ciencias     <br>     Puras y Naturales FCPN, Universidad Mayor de San Andr&eacute;s     UMSA, P.O. Box 10077, Calle Andr&eacute;s     <br>     Bello s/n,      Ciudad Universitaria Cota Cota,     phone +59122799459, La Paz, Bolivia, <a href="www.umsa.bo" target="_blank">www.umsa.bo</a>    <br>   </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><sup>2 </sup>Laboratory of     Bioorganic, Instituto de Investigaciones Qu&iacute;micas IIQ, Chemical Sciences     Department, Facultad de Ciencias     <br>     Puras y Naturales FCPN, Universidad Mayor de     San Andr&eacute;s UMSA, P.O. Box 303, Calle Andr&eacute;s Bello s/n, Ciudad Universitaria     <br>     Cota Cota, phone +59122792238, La Paz, Bolivia, <a href="www.iiq.umsa.bo" target="_blank">www.iiq.umsa.bo</a></font>    <br>   <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><sup>3 </sup>Instituto de     Investigaciones F&iacute;sicas IIF, Department of Physics, Facultad de Ciencias Puras     y Naturales FCPN, Universidad     <br>     Mayor de San Andr&eacute;s UMSA, P.O. Box 635, Calle     Andr&eacute;s Bello s/n, Ciudad Universitaria Cota Cota,     ]]></body>
<body><![CDATA[<br>     phone +59122792999, La Paz, Bolivia, <a href="www.umsa.bo" target="_blank">www.umsa.bo</a>     <br>   <sup>*</sup><b> </b>Correspondent author: <a href="mailto:galmanza@fcpn.edu.bo">galmanza@fcpn.edu.bo</a></font>    <br>   <font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Received </b>09 16 2020&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;<b>Accepted </b>12 17     2020&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;<b>Published </b>12 30 2020</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p> <hr>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>Abstract</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">In the face of climate change, the effect of solar radiation on morphology, biomass and different chemical compounds present in plants is of interest for food security. The present study seeks to contribute to knowledge of the effect of infrared (IR) and ultraviolet (UV-A, UV-B) radiation on oxalic acid concentration, biomass and morphology in <i>Oxalis triangularis </i>(Oxalidaceae). The species was exposed to visible light with IR, UV-A or UV-B radiation separately and a control group exposed only to visible light was established. Five weeks later, the number of leaves</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">was counted and morphological changes were observed. Also, íresh and dry weights oí leaves and rhizomes were obtained from each specimen, and the quantification of oxalic acid was performed using UV/Visible spectrophotometry. The results show that biomass, height and number of leaves increase with exposure to infrared radiation, while no significant differences in these parameters are found with UVA radiation. With UVB radiation, a depigmentation of the leaflet and a certain glossiness of the leaflets due to a probable increase in waxes and a decrease in petiole height were observed. With respect to oxalic acid concentration, no significant differences were observed with the different treatments, although a tendency to decrease with IR and increase with UVB was seen. These findings may have implications for the nutritional valué of plants containing oxalic acid, for this reason further studies are needed.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Keywords: </b>Oxalic acid, Biomass, Oxalis triangularis, Infrared radiation, Ultraviolet radiation.</font></p> <hr>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><strong>Resumen</strong></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El efecto que tiene la radiación solar sobre la morfología, biomasa y distintos compuestos químicos presentes en las plantas es de interés para la seguridad alimentaria frente al cambio climático. Este estudio tiene como objetivo contribuir al conocimiento del efecto de radiación infrarroja (IR) y ultravioleta (UV-A, UV-B) sobre la concentración de ácido oxálico, la biomasa y morfología en <i>Oxalis triangularis </i>(Oxalidaceae). Para esto, la especie fue expuesta a luz visible con radiación IR, UV-A o UV-B por separado y se estableció un grupo de control expuesto únicamente a luz visible. Cinco semanas después se contabilizó el número de hojas, se observaron los cambios morfológicos, se obtuvo el peso fresco y seco de las hojas y rizomas de cada espécimen, y la cuantificación de ácido oxálico se realizó por espectrofotometría UV/Visible. Los resultados mostraron que la biomasa, altura y número de hojas aumenta con la exposición a la radiación infrarroja, mientras que no se determinaron diferencias significativas en estos parámetros con la radiación UV-A. Con la radiación UV-B se observó despigmentación en los foliólos, un cierto brillo en los mismos por aumento probable de las ceras y una disminución en la altura del peciolo. Respecto a la concentración de ácido oxálico no se observaron diferencias significativas con los diferentes tratamientos, aunque se observa una tendencia a disminuir con IR y aumentar con UV-B. Estos hallazgos podrían tener implicaciones en plantas que contengan ácido oxálico por su valor nutricional, por esta razón se debe continuar con más estudios.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Palabras clave</b><i>: </i>&Aacute;cido ox&aacute;lico, Biomasa, Oxalis triangularis, Radiaci&oacute;n infrarroja, Radiaci&oacute;n ultravioleta.</font></p> <hr>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"><strong>INTRODUCCIÓN</strong></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La radiación solar es importante para la vida de los organismos en el planeta, que por lo general es beneficiosa en el desarrollo de las plantas; sin embargo, altas intensidades pueden afectar importantes procesos en las plantas [1] como cambios en la morfología, anatomía, procesos fisiológicos y bioquímicos [2,3]. Por lo mismo, se han realizado numerosos estudios sobre los efectos de la radiación solar en las plantas y se ha demostrado que si bien hay efecto de la radiación en el crecimiento [3], también lo hay en la biosíntesis de compuestos químicos [2,4].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La radiación solar puede dividirse según la longitud de onda, y en nuestro estudio tendremos a la radiación ultravioleta (UV-B, 280-320 nmy UV-A, 320-400 nm), que tiene longitudes menores a la luz visible (400-700 nm) y la radiación infrarroja (IR, 700-1000 nm) con longitudes mayores a la visible [5]. La intensidad de radiación ultravioleta que recibe la tierra, naturalmente puede variar según el ángulo del sol, la latitud y la altitud [5]. En los últimos años, la intensidad de la radiación UV-B se incrementó en los polos de la Tierra por el adelgazamiento de la capa de ozono [6], y aumentó la temperatura por los gases del efecto invernadero [7], a consecuencia de las actividades antropogénicas.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Algunos estudios han demostrado que, como respuesta a altas radiaciones solares, las plantas producen ciertos compuestos que les sirven para minimizar los efectos negativos de las mismas [3,8]. El ácido oxálico es un ácido dicarboxílico (HOOC-COOH) que forma sales solubles e insolubles como ion oxalato [9] y cumple diferentes funciones en la planta [9-11], por ejemplo la formación de cristales de oxalato de calcio depositados sobre las hojas podría reflejar la radiación solar recibida [12]. Los oxalatos están presentes tanto en hojas, frutos, semillas o estructuras subterráneas de interés alimenticio [9]. Sin embargo, el consumo de alimentos con concentraciones elevadas de oxalatos, podría tener un efecto negativo dando lugar a cálculos renales, por la formación de cristales de oxalato de calcio. Además, en las mujeres después de la menopausia disminuye la capacidad de absorción del calcio, y el consumo de alimentos ricos en oxalato agudiza esta deficiencia [9].</font></p>      <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Por lo mencionado, es de interés conocer si diferentes tipos de radiación podrían influir en la producción de ácido oxálico en las plantas y si esto guardaría relación con el aumento de la biomasa. Entre las principales familias de plantas que producen oxalatos está la familia Oxalidaceae [9]. Algunas de sus especies son comestibles (Ejemplo la oca <i>Oxalis tuberosa </i>Mol.), por lo que especies del género <i>Oxalis </i>resultan interesantes para su estudio en cuanto al efecto que pueda tener la radiación solar sobre su crecimiento y producción de ácido oxálico. En el presente estudio escogimos a <i>Oxalis triangularis, </i>una especie fácil de trabajar, pequeña e ideal para condiciones de laboratorio, ya que pueden crecer tanto con poca luz como a plena luz solar. En base a la información expuesta, este estudio pretende determinar el efecto de la radiación UV-A, UV-B e IR, sobre la concentración de ácido oxálico, biomasa y características morfológicas en <i>Oxalis triangularis.</i></font></p>      <p align="justify">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"><b>EXPERIMENTAL</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><strong>Descripción de la especie de estudio</strong></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><i>Oxalis, </i>un género de la familia Oxilidaceae, posee una distribución cosmopolita con más de 800 especies, tiene un amplio rango altitudinal de distribución y se encuentra en diferentes climas. Presenta órganos subterráneos que le permiten pasar la estación desfavorable bajo el suelo en forma de tubérculos, rizomas o bulbos. En Bolivia se tiene el registro de 57 especies de las cuales 12 son endémicas y entre las especies alimenticias la más conocida esta <i>Oxalis tuberosa </i>por sus tubérculos [15,16].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En este estudio se trabajó con <i>Oxalis triangularis, </i>poco conocida como comestible [15] y son más utilizadas en la jardinería. Está especie tiene rizomas anaranjados, hojas compuestas trifoliadas, con foliólos triangulares de color púrpura oscuro y peciolos de 12-20 cm. La inflorescencia está dispuesta en cimas, las flores son de color rosado, con pedúnculos de similar tamaño de los peciolos (<a href="#f1">Figura 1</a>). Es originaria de Bolivia, Brasil, Paraguay y el norte de Argentina [16].</font></p>     <p align="center"><a name="f1"></a><img src="/img/revistas/rbq/v37n5/a02_figura01.gif" width="639" height="337"></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><strong>Obtención del material vegetal</strong></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En el vivero del Jardín Botánico La Paz, ubicado en el Campus Universitario de Cota Cota, de la Universidad Mayor de San Andrés (16&deg;30'S, 68&deg;7'O), se sembraron aproximadamente 20 plantines de esta especie con rizomas, que se obtuvieron de un vivero comercial de Cota Cota. A partir de éstos se obtuvieron más rizomas en el transcurso de un año (aproximadamente entre 6 a 16 rizomas por plantín). Éstos fueron puestos en macetas que contenían turba, abono y tierra negra (3:1:1) y la frecuencia de riego fue de dos veces por semana. Al finalizar este periodo el total de rizomas que se obtuvieron, y con los que empezamos el trabajo, fue de 128.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><strong>Tratamientos de experimentación</strong></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Los 128 rizomas se dividieron en cuatro grupos de 32. El primero fue tratado como el grupo control, sometido durante toda la experimentación a la radiación de 8 lámparas fluorescentes que emiten luz visible (Philips TL-D 36W/54-765) por 12 horas/día. Los otros tres grupos de individuos tuvieron las mismas condiciones que el grupo control, incluida la radiación visible, pero además se adicionaron tres distintos tipos de radiaciones a cada uno:</font></p>     <blockquote>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>- TRATAMIENTO 1: IR, </b>dos lámparas incandescentes infrarrojas (Alie 250 W, E27) 6 horas/día. </font></p>       <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>- TRATAMIENTO 2: UV-A, </b>cuatro lámparas UVA (F40T12 40 W) 8 horas/día.</font></p>       <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><b>- TRATAMIENTO 3: UV-B, </b>una lámpara UVB (FS40T12-UVB-BP) lhora/día, descontinuada es decir 15 minutos por cada dos horas.</font></p> </blockquote>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La temperatura, humedad relativa, PAR (radiación fotosintéticamente activa), intensidad de radiación UV-A, UV-B, así como el tiempo de irradiación a los que fueron sometidos cada uno de los tratamientos se presenta en la <a href="#t1">Tabla 1</a>. Todas las lámparas estaban dispuestas aproximadamente a 50 cm de altura sobre los plantines.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Después de dos semanas de irradiación, se observó que no todos los plantines habían brotado, por lo que, a fin de contar con individuos expuestos por un mismo periodo de tiempo a las distintas radiaciones, se eliminaron de la experimentación aquellas que no habían brotado, lo que nos dejó con un número reducido de individuos por tratamiento: 19 para IR, 15 para UV-A, 18 para UV-B y 19 para el control. Estos individuos quedaron entonces expuestos por un total de cinco semanas de irradiación.</font></p>     <p align="center"><a name="t1"></a><img src="/img/revistas/rbq/v37n5/a02_figura02.gif" width="744" height="315"></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><strong>Toma de datos morfológicos</strong></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Al finalizar las cinco semanas de irradiación se tomaron los datos morfológicos. Se anotaron las características morfológicas en cada caso, como ser color, brillo y rigidez de la hoja, y luego se procedió a contar el número de hojas presentes. Finalmente, se colectaron las hojas (foliólos y peciolos por separado) y rizomas para pesarlos y así obtener el peso fresco y seco de cada individuo. Para obtener el peso seco, se dejó a temperatura ambiente en oscuridad aproximadamente dos meses y los rizomas que continuaban húmedos se los puso en un liofilizador.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><strong>Análisis de ácido oxálico</strong></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><strong>-    Extracción</strong></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Para esta fase, se consideraron a los individuos que alcanzaron el peso fresco de 1 g de foliólos por planta. Como en cada tratamiento quedó un número distinto de individuos, se decidió trabajar en todos los casos con 11 individuos de <i>Oxalis triangularis </i>por cada tratamiento. La extracción se realizó mediante la metodología de Presswood <i>et al. </i>[17]. Se utilizó lg fresco de foliólos que posteriormente se secaron, estos fueron picados aproximadamente 1 mm y puesto en un matraz con 20 mi de HC1 0.2 M. La mezcla se llevó a baño María a 80 &deg;C por 20 min, luego se dejó enfriar a</font> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">temperatura ambiente por 10 min. Una vez frío se filtró y se aforó a 25 mi con HC10.2 M. Esta solución se centrifugó a 2800 rpm por 15 min (Centrífuga Macro Presvac DCS-16 RV), y se conservó el sobrenadante de la extracción.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><strong>-&nbsp; &nbsp; Extracción en fase sólida (SPE)</strong></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Para eliminar antocianinas y fenólicos del sobrenadante de la extracción, se realizó extracción en fase sólida. Se utilizaron cartuchos con 100 mg de Silicagel C18 (Discovery DSC-18 SPE 100 mg), acondicionados con 0.4 mi de metanol y 0.6 mi de agua desionizada. Posteriormente se hizo pasar por los cartuchos 1.4 mi del sobrenadante de la extracción, recuperándose una solución transparente que se usó para realizar la cuantificación de oxalatos por espectrofotometría visible. Este procedimiento se realizó para cada muestra por triplicado.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><strong>-&nbsp; &nbsp; Espectrofotometría visible</strong></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Las mediciones de ácido oxálico por espectrofotometría visible (Espectrofotómetro SPEXTRO QUANT Pharo 300) se realizaron utilizando 1 mi de solución de la muestra obtenida por SPE por triplicado de cada planta, mediante el método de Zhai <i>et al. </i>[18]. En un vaso de precipitado de 50 mi, se vertió 2 mi H2SO4 0.1 M, y 0.8 mi de RhB (rodamina B) 1.75 x 10<sup>-5</sup> M. Después se agregó lml de la solución obtenida de la muestra por SPE y 0.4 mi de K<sub>2</sub>Cr<sub>2</sub>O<sub>7</sub> 3.0x 1O<sup>-5</sup> M, esta mezcla se calentó a 50 &deg;C durante 10 min. Luego se dejó enfriar a temperatura ambiente por 10 minutos. Finalmente, se agregó 0.8 mi de NaOH 4.0 M y se trasvasó la solución a un matraz aforado de 10 mi, aforando con agua des ionizada.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La determinación de la concentración de ácido oxálico se realizó a 552 nm, con la curva de calibración previamente obtenida con la metodología de Zhai <i>et al. </i>[18] (<a href="#f2">Figura 2</a>).</font></p>     <p align="center"><a name="f2"></a><img src="/img/revistas/rbq/v37n5/a02_figura03.gif" width="748" height="288"></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><strong>Análisis estadístico</strong></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Para analizar el efecto de la radiación en la biomasa y concentración de ácido oxálico en <i>Oxalis triangularis </i>se revisó la normalidad de los datos con la prueba de Shapiro-Wilk y homogeneidad de varianzas con la prueba de Levene, y se escogió utilizar la prueba de Kruskal-Wallis para muestras no paramétricas, seguida de una comparación entre pares, mediante la corrección de Bonferroni con un nivel de significancia de 0.05 %. La prueba estadística y gráficos se realizaron con el software RStudio [19].</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"><b>RESULTADOS Y DISCUSIÓN</b></font></p>     <p align="justify"><strong><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Características morfológicas</font></strong></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Después de las cinco semanas de exposición, los individuos de <i>Oxalis triangularis </i>mostraron las siguientes características que se detallan en la <a href="#t2">Tabla 2</a> y la <a href="#f3">Figura 3</a>.</font></p>     <p align="center"><a name="t2"></a><img src="/img/revistas/rbq/v37n5/a02_figura04.gif" width="732" height="221"></p>     <p align="center"><a name="f3"></a><img src="/img/revistas/rbq/v37n5/a02_figura05.gif" width="710" height="218"></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La coloración rojiza que presentaron los individuos en el tratamiento con radiación IR (<a href="#t2">Tabla 2</a>, <a href="#f3">Figura 3B</a>), podría deberse a niveles de FR (rojo lejano). Esta suposición se basa en otros estudios que probaron que ante FR, la concentración tanto de clorofila como de antocianinas tienden a disminuir [20]. El grupo control en este estudio muestra que las hojas tienen una coloración púrpura debida a la presencia de antocianinas en sus hojas [17,23], por lo que, la perdida de coloración púrpura de los foliólos de <i>Oxalis triangularis </i>pudo haber ocurrido por la disminución de esos pigmentos, ya que este tratamiento tiene lámparas incandescentes infrarrojas que emiten principalmente en FR.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Otro carácter morfológico de <i>Oxalis triangularis </i>que cambió notablemente con la radiación IR fue la altura de los peciolos (<a href="#t2">Tabla 2</a>, <a href="#f3">Figura 3B</a>). Estudios en las especies como <i>Stellaria longipes </i>y <i>Arabidopsis thaliana, </i>muestran tallos más grandes con niveles bajos del cociente R/FR (rojo/rojo lejano) [24,25]. Sin embargo, cuando crecen solo bajo radiación infrarroja son más pequeñas como <i>en Avena sativa </i>[24]. En el tratamiento IR, como se mencionó, tenía lámparas infrarrojas más luz visible, y cuando hay niveles bajos de R/FR se alargan los tallos para evitar la sombra por otras plantas que es percibida por la calidad de la luz [27,28]. Por lo tanto, el aumento de crecimiento de peciolos pudo ser respuesta para alcanzar luz.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Los individuos expuestos al tratamiento UV-A, no mostraron diferencias en tamaño o características morfológicas respecto al Control (<a href="#t2">Tabla 2</a>, <a href="#f3">Figura 3C</a>). Con <i>Betula péndula </i>encontraron que ni la radiación UV-A ni la UV-B tenían efecto sobre la altura de la planta [29,30], sin embargo, otra investigación con <i>Mentha piperita </i>mostró que el tamaño de las hojas podría aumentar con la radiación UV-A [29]. En <i>Lactuca sativa </i>aumentó el tamaño de las hojas además del peso seco con UV-A a 402 nm más luz roja y azul, pero ambos caracteres disminuyeron a 387 y 367 nm más luz roja y azul [30]. Es probable que la UV-A tenga un efecto diferente en cada especie y según la longitud de onda del rango UV-A, siendo que en algunas induce al crecimiento foliar y en otros no. Las lámparas UV-A que tuvimos en este estudio presentan el pico emisión a 350 nm, y no se observó ningún efecto notable en la especie de estudio.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En el tratamiento con UV-B, los foliólos de <i>Oxalis triangularis </i>se curvaron hacia el haz y se mostraron más brillosos que en los otros tratamientos (<a href="#f3">Figura 3D</a>), esta sería una respuesta fotomorfogénica para disminuir el área expuesta a los rayos ultravioleta [31] y un incremento de ceras en la cutícula para refractar la radiación ultravioleta [32] como se obtuvo en hojas de <i>Lactuca sativa </i>[33]. Asimismo, los foliólos de <i>Oxalis triangularis </i>presentaban una despigmentación, esto podría ser por las quemaduras de la radiación, a consecuencia de la inhibición acumulada de</font> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">clorofilas y antocianinas en los foliólos [34]. Por lo que, estos cambios observados serían producto de la UV-B, ya que, en el Control, donde la exposición fue únicamente a luz visible, las hojas son púrpura por las antocianinas presentes.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Por otro lado, el largo de los peciolos fue menor en el tratamiento UV-B (<a href="#t2">Tabla 2</a>, <a href="#f3">Figura 3D</a>). Siendo que la UV-B puede interferir con el metabolismo del ácido indolacético, que a su vez inhibiría el crecimiento de las plantas [35], este es uno de los efectos documentados que se observa cuando se induce a las plantas a UV-B [31] y en comparación del Control, este grupo de individuos presentaron el menor crecimiento.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><strong>Biomasa</strong></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La biomasa de rizomas para los diferentes tratamientos no fue significativamente diferente respecto al Control (x<sup>2 </sup>=2.31, gl=3, p=0.51). En el tratamiento IR, aumentó la biomasa de foliólos (x<sup>2</sup> =31.83, gl=3, p&lt;0.05) y peciolos (x<sup>2 </sup>=45.57, gl=3, p&lt;0.05). En los tratamientos UV-A y UV-B, no se observaron diferencias en cuanto a la biomasa respecto el Control (<a href="#f4">Figura 4 </a>D, E y F). Sin embargo, se observa una tendencia de disminución de la biomasa de foliólos y peciolos en el tratamiento UV-B.</font></p>     <p align="center"><a name="f4"></a><img src="/img/revistas/rbq/v37n5/a02_figura06.gif" width="693" height="295"></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">El aumento de la biomasa de foliólos y peciolos de los individuos bajo el tratamiento IR, estaría directamente relacionado con el tamaño y el aumento en el número de hojas (<a href="#f4">Figura 4B</a>, 6). En <i>Lactuca sativa </i>se obtuvo que luz visible más FR aumenta la altura del tallos, tamaño de las hojas y la biomasa seca y fresca [20]. Esta podría ser respuesta a niveles bajos de R/FR dado que este valor se constituye en una señal de advertencia de la presencia de vegetación competidora estimulando el crecimiento de las plantas para alcanzar fuentes de luz [36]. En <i>Stellaria longipes, </i>aumenta de tamaño del tallo, debido a la regulación de genes que llevan a la expansión de la pared celular cuando los niveles de R/FR son bajos [23], es probable que <i>Oxalis triangularis </i>al aumentar de tamaño también incremento en biomasa por las condiciones del tratamiento. Por otro lado, en los tratamientos UV-A y UV-B, la biomasa de rizomas, foliólos y peciolos no mostró diferencia estadísticamente significativa con el Control (<a href="#f4">Figura 4</a>). Similar resultado se obtuvo en <i>Betulapéndula </i>[29,30].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2"><strong>Concentración de ácido oxálico</strong></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En la <a href="#f5">figura 5</a> se observa que, aunque hay una ligera tendencia de incremento de ácido oxálico con el tratamiento UV-B, una disminución con el tratamiento IR, y ninguna reacción del tratamiento UV-A comparado con el Control, estadísticamente no hay una diferencia significativa entre tratamientos (x<sup>2</sup> =7.12, gl=3, p=0.07).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Un análisis de componentes principales (<a href="#f6">figura 6</a>) confirma que las variables de biomasa están positivamente correlacionadas con la exposición a radiación IR. Sin embargo, la producción de ácido oxálico parece tener más relación con la exposición a las radiaciones UV-B, seguida de UV-A.</font></p>     <p align="center"><a name="f5"></a><img src="/img/revistas/rbq/v37n5/a02_figura07.gif" width="724" height="238"></p>     <p align="center"><a name="f6"></a><img src="/img/revistas/rbq/v37n5/a02_figura08.gif" width="747" height="386"></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">La inexistencia de una diferencia significativa en producción de ácido oxálico entre tratamientos podría deberse al tiempo de crecimiento de la especie en estudio. Estudios con <i>Capsicum annuum </i>(hierba anual de hasta un metro de alto), mostraron cristales de oxalato de calcio casi ausentes en plantas con 3 semanas de crecimiento [37] que crecieron con bajos niveles FR/R y con <i>Beta vulgaricus </i>(hierba de hasta 2 m de alto) se vio un incremento en la concentración de ácido oxálico con la radiación UV-B después de 8 semanas de crecimiento [17]. Estas especies, si bien tienen una rapidez de crecimiento distinto, muestran también producción de ácido oxálico en diferentes etapas. En nuestro caso, <i>Oxalis triangularis </i>es una hierba que no sobrepasa los 30 cm de altura y se esperó que la planta llegue a su producción máxima después de 5 semanas, sin embargo, puede ser que con un tiempo más de exposición, hubiésemos tenido otros resultados. Aunque, en otro estudio menciona que los cultivares con rápido crecimiento de <i>Spinacia olerácea </i>(hierba de hasta 1 m de altura), disminuye el contenido de ácido oxálico en hojas muestreadas después de casi 7 semanas [38], talvez el análisis de ácido oxálico podría depender de la especie de estudio y en este caso, valdría la pena hacer un seguimiento de los niveles de concentración de ácido oxálico en varias etapas de crecimiento.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">En nuestro estudio, la respuesta de ácido oxálico que tuvo la UV-A fue menos evidente (<a href="#f6">Figura 6</a>). El efecto que puede producir la UV-A es menor que el que se tiene con la UV-B en el sistema fotosintético [39], tal vez la producción de ácido oxálico no se ve influenciada por longitudes de onda menos energéticas como es la UV-A a comparación de la UV-B. Además que la UV-A puede activar la expresión de un conjunto de genes distintos a los que produce la UV-B [39].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Se conoce que existen moléculas precursoras de otras y en estudios se ha comprobado que la UV-B puede incrementar la concentración de moléculas como el ácido ascórbico [40,41] este es el principal precursor del ácido oxálico [9,42], y se podría pensar que debido a esto el ácido oxálico se incrementaría con UV-B. Aunque, otros estudios muestran que en <i>Spinacia olerácea </i>[43] y el <i>Hibiscus sabdariffa, </i>no hubo relación entre ambas moléculas, ya que fue mayor el contenido de ácido ascórbico y menor el de ácido oxálico en hojas que crecieron con mayor intensidad de luz [44].</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Nuestros principales resultados mostraron que, de los tres tipos de radiación utilizados, sólo la luz IR tiene efecto positivo sobre el aumento de la biomasa en <i>Oxalis triangularis, </i>éste aumento fue de casi 120% en hojas con relación a nuestro control, 70% en el peciolo y 25% en número de hojas. Sin embargo, no encontramos una relación clara de la producción de ácido oxálico en ninguno de los casos, aunque si una ligera tendencia de aumento con UV-B y disminución con IR. Estas tendencias, coinciden con otros estudios para otras especies [17,37], por lo que valdría la pena analizar otras variables o ampliar el estudio tomando en cuenta por ejemplo más tiempo de exposición a diferentes radiaciones o una combinación de ellas.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"><b>RECONOCIMIENTOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="2">Este trabajo se realizó gracias a una beca &quot;Erika Geyger&quot; del Instituto de Ecología a Ruth Nina. Agradecemos también al Dr. Carlos Molina por el apoyo en el análisis estadístico y a Magaly Mercado por las sugerencias al manuscrito.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size="3"><b>REFERENCIAS</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">1. &nbsp;Carrasco-R&iacute;os, L. 2009, Efecto de la radiaci&oacute;n ultravioleta-B en plantas, <i>Idesia (Arica), 27</i>(3), 59-76. DOI: 10.4067/S0718-34292009000300009</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=702759&pid=S0250-5460202000050000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">2. &nbsp;Kataria, S.,   Baroniya, S. S., Kanungo M., Bhaghel, L. 2014, Effect of Exclusion of   Solar UV radiation on Plants, <i>Plant Science Today, 1</i>(4), 224-232. DOI: <a href="https://doi.org/10.14719/pst.2014.1.4.61">10.14719/pst.2014.1.4.61</a></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=702760&pid=S0250-5460202000050000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">3. &nbsp;Neugart, S.,   Schreiner, M. 2018, UVB and UVA as eustressors in horticultural and   agricultural crops.&nbsp;<i>Scientia Horticulturae&nbsp;234,</i> 370-381. DOI: <a href="https://doi.org/10.1016/j.scienta.2018.02.021" target="_blank" title="Persistent link using digital object identifier">10.1016/j.scienta.2018.02.021</a></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=702761&pid=S0250-5460202000050000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">4. &nbsp;Zhang, W. J., Bj&ouml;rn, L. O. 2009,   The effect of ultraviolet radiation on the accumulation of medicinal compounds   in plants, <i>Fitoterapia, 80</i>(4), 207-218.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">5. &nbsp;Madronich, S.,   McKenzie, R. L., Bj&ouml;rn, L. O., Caldwell M. M. 1998, Changes in   biologically active ultraviolet radiation reaching the Earth's surface. <i>Journal     of Photochemistry and Photobiology B: Biology 46</i>(1-3), 5-19. DOI: <a href="https://doi.org/10.1016/S1011-1344(98)00182-1" target="_blank" title="Persistent link using digital object identifier">10.1016/S1011-1344(98)00182-1</a> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">6. &nbsp;Wachowski, L.,   Kirszensztejn P., Foltynowicz, Z. 2001, Ecological replacements of   ozone-depleting substances, <i>Polish Journal of Environmental Studies, 10(</i>6), 415-435</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=702764&pid=S0250-5460202000050000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">7. &nbsp;Olivo, M. D. L.,   Soto-Olivo, A. 2010, Comportamiento de los gases de efecto invernadero y   las temperaturas atmosf&eacute;ricas con sus escenarios de incremento potencial, <i>Universidad,     Ciencia y tecnolog&iacute;a, 14</i>(57), 221-230.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=702765&pid=S0250-5460202000050000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">8. &nbsp;Bian, Z. H., Yang, Q. C., Liu, W.   K. 2015, Effects of light quality on the accumulation of phytochemicals   in vegetables produced in controlled environments: a review. <i>Journal of the     Science of Food and Agriculture, 95</i>(5), 869-877. DOI: 10.1002/jsfa.6789</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=702766&pid=S0250-5460202000050000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">9. &nbsp;Noonan S. N., Savage G. S. 1999,   Oxalate content of foods and its effect on humans, <i>Asia Pacific journal of     clinical nutrition, 8</i>(1), 64-74.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=702767&pid=S0250-5460202000050000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">10. &nbsp;Korth,   K. L., Doege, S. J., Park, S. H., Goggin, F. L., Wang, Q., Gomez, S. K.,   Nakata, P. A. 2006, <i>Medicago truncatula</i> mutants demonstrate the   role of plant calcium oxalate crystals as an effective defense against chewing   insects,&nbsp;<i>Plant Physiology</i>,&nbsp;<i>141</i>(1), 188-195. DOI:10.1104/pp.106.076737</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=702768&pid=S0250-5460202000050000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">11. &nbsp;Weir, T. L., Bais,   H. P., Stull, V. J., Callaway, R. M., Thelen, G. C., Ridenour, W. M., Vivanco,   J. M. 2006, Oxalate contributes to the resistance of <i>Gaillardia     grandiflora</i> and <i>Lupinus sericeus </i>to a phytotoxin produced by <i>Centaurea       maculosa</i>, <i>Planta, 223</i>(4), 785&ndash;795. DOI: 10.1007/s00425-005-0192-x</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">12. &nbsp;Jacobsen,   S. E., Mujica, A., Jensen, C. R. 2003, The resistance of quinoa (<i>Chenopodium     quinoa</i> Willd.) to adverse abiotic factors. <i>Food Reviews International,       19</i>(1-2), 99-109. DOI: 10.1081/FRI-120018872</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=702770&pid=S0250-5460202000050000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">13. &nbsp;Oberlander,   K. C., Emshwiller, E., Bellstedt, D. U., Dreyer, L. L. 2009, A model of   bulb evolution in the eudicot genus Oxalis (Oxalidaceae),&nbsp;<i>Molecular     Phylogenetics and Evolution</i>,&nbsp;<i>51</i>(1), 54-63. DOI:   10.1016/j.ympev.2008.11.022</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=702771&pid=S0250-5460202000050000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">14. &nbsp;J&oslash;rgensen   P. M., Nee M.H., Beck S.G. 2014, Cat&aacute;logo de las plantas vasculares de   Bolivia, Monographs in Systematic Botany from the Missouri Botanical Garden,   127(1&ndash;2), 1744.</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">15. &nbsp;Pazmi&ntilde;o-Dur&aacute;n, E.   A., Giusti, M. M., Wrolstad, R. E., Gl&oacute;ria, M. B. A. 2001, Anthocyanins   from <i>Oxalis triangularis</i> as potential food colorants, <i>Food Chemistry,     75</i>(2), 211-216. DOI: 10.1016/S0308-8146(01)00201-1</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=702773&pid=S0250-5460202000050000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">16. &nbsp;Lourteig,   A. 2000, Oxalis L. Subgenero Monoxalis (Small) Lourt., Oxalis y Trifidus   Lourt. Bradea, 7 (2):629. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=702774&pid=S0250-5460202000050000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">17. &nbsp;Presswood,   H., Hofmann, R., Savage, G. P. 2012, Effects of UV-B radiation on   oxalate content of silver beet leaves, <i>Journal     of Food Research, 1(</i>4),1&ndash;6. DOI:   10.5539/jfr.v1n4p1</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">18. &nbsp;Zhai, Q. Z., Zhang,   X. X., Liu, Q. Z. 2006, Catalytic kinetic spectrophotometry for the   determination of trace amount of oxalic acid in biological samples with oxalic   acid&ndash;rhodamine B&ndash;potassium dichromate system, <i>Spectrochimica Acta Part A:     Molecular and Biomolecular Spectroscopy, 65(</i>1), 1-4. DOI: <a href="https://doi.org/10.1016/j.saa.2005.07.080" target="_blank" title="Persistent link using digital object identifier">10.1016/j.saa.2005.07.080</a></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">19. &nbsp;RStudio   Team. 2020, RStudio: Integrated Development for R. RStudio, PBC, Boston,   MA URL <a href="http://www.rstudio.com/" target="_blank">http://www.rstudio.com/</a>.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=702777&pid=S0250-5460202000050000200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">20. &nbsp;Li, Q., Kubota, C. 2009,   Effects of supplemental light quality on growth and phytochemicals of baby leaf   lettuce, <i>Environmental and Experimental Botany, 67(</i>1), 59-64. DOI: <a href="https://doi.org/10.1016/j.envexpbot.2009.06.011" target="_blank" title="Persistent link using digital object identifier">10.1016/j.envexpbot.2009.06.011</a></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=702778&pid=S0250-5460202000050000200020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">21. &nbsp;Nielsen,   S. L., Simonsen, A. M. 2011, Photosynthesis and photoinhibition in two   differently coloured varieties of <i>Oxalis triangularis</i>-the effect of   anthocyanin content, <i>Photosynthetica, 49</i>(3), 346-352. DOI: 10.1007/s11099-011-0042-y</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=702779&pid=S0250-5460202000050000200021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">22. &nbsp;Alokam,   S., Chinnappa, C. C., Reid D. M. 2002, Red/far-red light mediated stem   elongation and anthocyanin accumulation in <i>Stellaria longipes</i>:   differential response of alpine and prairie ecotypes,&nbsp;<i>Canadian Journal     of Botany, 80</i>(1): 72-81. DOI: <a href="https://doi.org/10.1139/b01-137" target="_blank">10.1139/b01-137</a></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=702780&pid=S0250-5460202000050000200022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">23. &nbsp;Sasidharan,   R., Chinnappa, C. C., Voesenek, L. A., Pierik, R. 2008, The regulation   of cell wall extensibility during shade avoidance: a study using two   contrasting ecotypes of <i>Stellaria longipes</i>, <i>Plant Physiology, 148</i>(3),   1557-1569. DOI: 10.1104/pp.108.125518</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=702781&pid=S0250-5460202000050000200023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">24. &nbsp;Johnson,   C. F., Brown, C. S., Wheeler, R. M., Sager, J. C., Chapman, D. K., Deitzer, G.   F. 1996, Infrared light&#8208;emitting diode radiation   causes gravitropic and morphological effects in dark&#8208;grown   oat seedlings, <i>Photochemistry and photobiology, 63</i>(2), 238-242. DOI:   10.1111/j.1751-1097.1996.tb03020.x</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=702782&pid=S0250-5460202000050000200024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">25. &nbsp;Gommers,   C. M., Visser, E. J., St Onge, K. R., Voesenek, L. A., Pierik, R. 2013,   Shade tolerance: when growing tall is not an option, <i>Trends in plant     science, 18</i>(2), 65-71. DOI: 10.1016/j.tplants.2012.09.008</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=702783&pid=S0250-5460202000050000200025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">26. &nbsp;Carvalho,   R. F., Takaki, M., Azevedo, R. A. 2011, Plant pigments: the many faces   of light perception, <i>Acta Physiologiae Plantarum</i>, 33(2), 241-248.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=702784&pid=S0250-5460202000050000200026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">27. &nbsp;Kotilainen, T., Ven&auml;l&auml;inen, T., Tegelberg, R.,   Lindfors, A., Julkunen&#8208;Tiitto, R., Sutinen, S.,   Aphalo, P. J. 2009, Assessment of UV biological spectral weighting   functions for phenolic metabolites and growth responses in silver birch   seedlings, <i>Photochemistry and Photobiology, 85</i>(6), 1346-1355. DOI: <a href="https://doi.org/10.1111/j.1751-1097.2009.00597.x" target="_blank">10.1111/j.1751-1097.2009.00597.x</a></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=702785&pid=S0250-5460202000050000200027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">28. &nbsp;Morales, L. O., Tegelberg, R., Brosch&eacute;, M.,   Kein&auml;nen, M., Lindfors, A., Aphalo, P. J. 2010, Effects of solar UV-A   and UV-B radiation on gene expression and phenolic accumulation in <i>Betula     pendula</i> leaves, <i>Tree Physiology, 30</i>(7), 923-934. DOI: <a href="https://doi.org/10.1093/treephys/tpq051" target="_blank">10.1093/treephys/tpq051</a></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=702786&pid=S0250-5460202000050000200028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">29. &nbsp;Maffei, M., Canova, D., Bertea, C. M., &amp;   Scannerini, S. 1999, UV-A effects on photomorphogenesis and   essential-oil composition in <i>Mentha piperita</i>, <i>Journal of     Photochemistry and Photobiology B: Biology, 52(</i>1-3), 105-110. DOI: <a href="https://doi.org/10.1016/S1011-1344(99)00110-4" target="_blank" title="Persistent link using digital object identifier">10.1016/S1011-1344(99)00110-4</a></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=702787&pid=S0250-5460202000050000200029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">30. &nbsp;Samuolien&#279;, G., Vir&scaron;il&#279;, A., Miliauskien&#279;, J., Haimi, P.,   Lau&#382;ik&#279;, K., Jankauskien&#279;, J., Brazaityt&#279;, A. 2020, The Photosynthetic   Performance of Red Leaf Lettuce under UV-A Irradiation, <i>Agronomy, 10</i>(6),   761.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">31. &nbsp;Jansen,   M. A., Gaba, V., Greenberg, B. M. 1998, Higher plants and UV-B   radiation: balancing damage, repair and acclimation, <i>Trends in plant     science, 3</i>(4), 131-135.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=702789&pid=S0250-5460202000050000200031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">32. &nbsp;Holmes,   M. G. Keiller D. R. 2002, Effects of pubescence and waxes on the   reflectance of leaves in the ultraviolet and photosynthetic wavebands: a   comparison of a range of species, <i>Plant, Cell &amp; Environment, 25</i>(1),   85-93. DOI: <a href="https://doi.org/10.1046/j.1365-3040.2002.00779.x" target="_blank">10.1046/j.1365-3040.2002.00779.x</a></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=702790&pid=S0250-5460202000050000200032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">33. &nbsp;Lee,   M. J., Son, J. E., Oh, M. M. 2014, Growth and phenolic compounds of <i>Lactuca     sativa</i> L. grown in a closed&#8208;type plant production   system with UV&#8208;A, &#8208;B, or&#8208;C lamp,&nbsp;<i>Journal of the Science of Food and     Agriculture</i>,&nbsp;<i>94</i>(2), 197-204. DOI: <a href="https://doi.org/10.1002/jsfa.6227" target="_blank">10.1002/jsfa.6227</a></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=702791&pid=S0250-5460202000050000200033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">34. &nbsp;Liu,   Y., Chen, N., Zuo, C., Wu, Y., Che, F., Chen, B. 2019, The mechanism of   color fading in sunburned apple peel,&nbsp;<i>Acta Physiologiae Plantarum</i>,&nbsp;<i>41</i>(1),   2. DOI: 10.1007/s11738-018-2792-7</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=702792&pid=S0250-5460202000050000200034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">35. &nbsp;Ros,   J., Tevini, M. 1995, Interaction of UV-radiation and IAA during growth   of seedlings and hypocotyl segments of sunflower, <i>Journal of Plant     Physiology, 146</i>(3), 295-302.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=702793&pid=S0250-5460202000050000200035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">36. &nbsp;Franklin, K. 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R. 2001, Biosynthesis of L-ascorbic acid and conversion of carbons 1 and   2 of L-ascorbic acid to oxalic acid occurs within individual calcium oxalate   crystal idioblasts.&nbsp;<i>Plant Physiology</i>,&nbsp;125(2), 634-640. DOI:   10.1104/pp.125.2.634</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=702800&pid=S0250-5460202000050000200042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align=justify><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">43. &nbsp;Proietti,   S., Moscatello, S., Colla, G., Battistelli, Y. 2004, The effect of   growing spinach (<i>Spinacia oleracea</i> L.) at two light intensities on the   amounts of oxalate, ascorbate and nitrate in their leaves, <i>The Journal of     Horticultural Science and Biotechnology, 79</i>(4), 606-609. 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