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<journal-title><![CDATA[Revista Boliviana de Química]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Quality assessment of glucose syrup produced by enzymatic hydrolysis of alpha-amylase and Amyloglucosidase from starch of manihot esculenta (yuca)]]></article-title>
<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Evaluación de la calidad de jarabe de glucosa producido por hidrólisis enzimatica a partir de almidón de yuca (Manihot esculenta)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Evaluación de calidad de jarabe de glucosa, producido durante la hidrólisis enzimática de alfa-amilasa BAN 480L y amiloglucosidasa Dextrozyme DX 1.5x, por tres métodos: polarimétrico, espectrofometrico y de Resonancia Magnética Nuclear, a partir de yuca (Manihot esculenta)]]></p></abstract>
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<kwd lng="en"><![CDATA[reducing sugar]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font face="Verdana" size="2"><b>ART&Iacute;CULOS ORIGINALES</b> </font></p>     <p align="right">&nbsp;</p>     <p align="center"><b><font size="4" face="Verdana">Quality  assessment of glucose syrup produced by enzymatic hydrolysis of alpha-amylase  and Amyloglucosidase from starch of manihot esculenta (yuca)</font></b></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="3"><b>Evaluaci&oacute;n de la calidad de jarabe de glucosa producido por hidr&oacute;lisis enzimatica a partir de almid&oacute;n de yuca (Manihot esculenta)</b></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2">Susana Huanca López, Christian Espinal, Patricia Mollinedo*</font>    <br> <font face="Verdana" size="2">Department of Chemistry, Laboratorio de Pruebas Biológicas, Instituto de Investigaciones en Productos Naturales IIPN, Universidad Mayor de San Andrés UMSA, P.O. Box 303, Calle Andrés Bello s/n, Ciudad Universitaria Cota Cota, Tel. 59122792238, La Paz, Bolivia. </font><font size="2" face="Verdana"><a href="mailto:pattymollinedo@gmail.com">pattymollinedo@gmail.com</a></font>    <br>   <font face="Verdana" size="2"><b>*Corresponding author: </b><a href="mailto:pattymollinedo@gmail.com">pattymollinedo@gmail.com</a><b></b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center">&nbsp;</p> <hr>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Abstract</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Quality assessment of glucose syrup produced during enzymatic hydrolysis of alpha-amylase and amyloglucosidase Dextrozyme BAN 480L  1.5x DX by three methods: polarimetric, spectrophotometric and Nuclear Magnetic</font> <font face="Verdana" size="2">Resonance from cassava <i>(Manihot esculenta).</i></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Keywords: </b><i>Enzymatic hydrolysis, Manihot esculenta, reducing sugar.</i></font></p> <hr>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Evaluaci&oacute;n de calidad de jarabe de glucosa, producido durante la hidr&oacute;lisis enzim&aacute;tica de alfa-amilasa BAN 480L y amiloglucosidasa Dextrozyme DX 1.5x, por tres m&eacute;todos: polarim&eacute;trico, espectrofometrico y de Resonancia Magn&eacute;tica Nuclear, a partir de yuca <i>(Manihot esculenta).</i></font></p> <hr>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="3"><b>INTRODUCCION</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">La hidrólisis enzimática de almidones ha tenido un desarrollo acelerado, ya que desde 1920 se han realizado numerosos ensayos y técnicas sobre ella. En 1945 se desarrollaron técnicas industriales novedosas que permitieron la obtención de un producto de gran pureza, estudios en base a diferentes enzimas demostraron que el uso de maltasa, glucoamilasa, amilasas tiene gran extensión específica y selectiva para la obtención de glucosa. [1]. Las amilasas principalmente la  <img src="/img/revistas/rbq/v32n2/a01_figura01.gif" width="10" height="11">- amilasa, <img src="/img/revistas/rbq/v32n2/a01_figura02.gif" width="10" height="17"> - amilasa, amiloglucosidasa y pulunanasa son producidas por bacterias y hongos, son enzimas que degradan el almidón y tienen numerosas aplicaciones biotecnológicas, un ejemplo de ello es la producción de jarabes, que contiene oligosacáridos como maltosa y glucosa. [2]</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Una de las propiedades químicas importantes del almidón de yuca está relacionada con la facilidad con que el enlace polimérico se hidroliza con enzimas convirtiéndose en D - glucosa, como ocurre en la producción comercial de los jarabes de almidón [3], sus gránulos son más blandos que los gránulos de maíz, su estructura es más rígida y compacta, se rompen al alcanzar los 70&deg;C, siendo menos estables que los gránulos de arroz, maíz, trigo, cebada y papa. [4]</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Los jarabes de D-glucosa son una mezcla entre una solución acuosa de D - glucosa, maltosa y otros oligosacáridos llamados dextrinas [5].En la industria se consideran jarabes glucosados a hidrolizados a partir de un DE de 20 un jarabe que presenta un poder reductor similar al de una solución con 20% de glucosa [6].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><i><b>Métodos de determinación de azucares Método de Polarimetría</b></i></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Emplea el uso del polarímetro, instrumento que mide la rotación del plano de la luz polarizada, tiene una celda que contiene una solución del material ópticamente activo y un sistema para pasar a luz polarizada a través de la solución, para medir la rotación de la luz que emerge se lee la rotación observada en la escala. Esta se simboliza mediante la letra griega alfa (<img src="/img/revistas/rbq/v32n2/a01_figura01.gif" width="10" height="11">) [7].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><i><b>Método del Ácido 3,5 dinitrosalicílico (DNS)</b></i></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Es uno de los diversos métodos espectrofotométricos existentes para la estimación de azucares reductores, el cual se basa en la reducción del DNS (de color amarillo) por la glucosa u otro azúcar reductor, al ácido 3-amino-5-nitrosalicílico (de color rojo ladrillo), cuya presencia puede detectarse por lectura de la absorbancia en la zona de 540 -570nm[8], [9].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><i><b>Obtención de la Curva Patrón de Glucosa</b></i></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">La curva de calibración de glucosa fue obtenida usando dos métodos: por polarimetría (<a href="#g1">Gráfica N&deg;1</a>) y por el método DNS (<a href="#g2">Grafica N&deg;2</a>), ambas curvas presentan una tendencia lineal, con un coeficiente de correlación (R) igual a 0.99, valor elevado que nos indica que los datos se ajustan a una línea recta. En el caso del segundo método el valor de R también nos indica que la absorbancia varía en forma lineal con respecto a la concentración.</font></p>     <p align="center"><a name="g1"></a><img src="/img/revistas/rbq/v32n2/a01_figura03.gif" width="406" height="287"></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="g2"></a><img src="/img/revistas/rbq/v32n2/a01_figura04.gif" width="572" height="293"></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Comparando ambos métodos se determinó que el método espectrofotométrico DNS (ácido 3,5 -dinitrosalicílico) es adecuado para determinar concentraciones de glucosa en un rango de 0.02 % - 0.14 % y el método polarimétrico es recomendable para determinar concentraciones de glucosa dentro de un intervalo de 0.1 % -80 %. Motivo por el cual se utilizó el polarímetro para determinar la concentración de glucosa en las muestras hidrolizadas ya que estas presentan concentraciones mayores al 0.2%.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><i><b>Determinación de la Concentración de Azucares Equivalentes de Glucosa</b></i></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">En la primera etapa de la hidrólisis (licuefacción) se llegó a obtener oligosacáridos (ver <a href="#t1">Tabla N&deg;1</a>), en la cual se observa que la muestra 4 presenta la mayor concentración de este producto igual a 89.8% en un tiempo de reacción de 90 minutos. En la etapa de sacarificación la muestra 20 presenta la mayor concentración de glucosa (95.9%) lo que indica que la mayor actividad de la segunda enzima se logra en un tiempo de 72 horas, dentro del intervalo de tiempo tomado para la incubación (ver <a href="#t2">Tabla N&deg;2</a>).</font></p>     <p align="center"><a name="t1"></a><img src="/img/revistas/rbq/v32n2/a01_figura05.gif" width="702" height="103"></p>     <p align="center"><a name="t2"></a><img src="/img/revistas/rbq/v32n2/a01_figura06.gif" width="728" height="198"></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">El contenido de dextrosa correspondiente a la última muestra tomada del proceso de hidrólisis de almidón de yuca <i>(Manihot esculenta) </i>fue DE = 72.7 &plusmn; 0.2, lo que nos indica que el jarabe obtenido es del tipo III, de alta conversión (DE &gt; 55), dentro de la clasificación de jarabes de glucosa según su equivalente de dextrosa [10], [11].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><i><b>Identificación Estructural del Producto Final de la Hidrólisis Enzimática por RMN</b></i></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Se realizaron espectros de Resonancia Magnética Nuclear <sup>1</sup>H y <sup>13</sup>C (Ver <a href="#f1">Figura N&deg; 1</a>, <a href="#f2">2</a>, <a href="#f3">3</a> y <a href="#f4">4</a>) a una muestra de glucosa p.a. y al producto final obtenido a las 72 horas del proceso de hidrólisis enzimática de almidón de yuca. Los espectros se registraron en un equipo Brucker 300 MHz, se empleó D<sub>2</sub>O (agua deuterada) como disolvente y se trabajó a una temperatura de 20 &deg; C.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">La comparación entre los valores de desplazamiento químico asignado a cada señal presente en el espectro de <sup>13</sup>C-RMN de la glucosa p.a. y de la muestra 20, se muestra en la <a href="#t3">Tabla N&deg;3</a>, observando de esta manera que los valores coinciden por tanto con este análisis llegamos a verificar que efectivamente en el producto final de la hidrólisis de almidón de yuca empleando enzimas se llegó a obtener glucosa.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="3"><b>EXPERIMENTAL</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><i><b>Hidrólisis enzimática de almidón de yuca</b></i></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Se preparó una solución de almidón de yuca al 30%, a esta solución se añadió Ca 2+(100ppm). En la etapa de licuefacción se trabajó con la enzima BAN 480L en la siguiente condiciones: pH=6.0, temperatura 70&deg;C y tiempo de reacción 90 minutos. Posteriormente se descativo esta enzima para dar paso a la etapa de sacarificación, en la cual se trabajó con la enzima Dextrozyme DX 1.5x, en las siguientes condiciones: pH=4.02-4.05, temperatura de incubación 60&deg;C y un tiempo de reacción de 72 horas.</font></p>     <p align="center"><a name="f1"></a><img src="/img/revistas/rbq/v32n2/a01_figura07.gif" width="518" height="410" border="0"></p>     <p align="center"><a name="f2"></a><img src="/img/revistas/rbq/v32n2/a01_figura08.gif" width="515" height="402" border="0"></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><i><b>Determinación de concentración de azucares equivalentes a glucosa</b></i></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Ésta determinación se realizó por el método polarimétrico, usando el polarímetro se obtuvo las lecturas del ángulo de rotación de las muestras hidrolizadas y con ayuda de la curva patrón de glucosa se determinó la concentración de azúcar.</font></p>     <p align="center"><a name="f3"></a><img src="/img/revistas/rbq/v32n2/a01_figura09.gif" width="511" height="396"></p>     <p align="center"><a name="f4"></a><img src="/img/revistas/rbq/v32n2/a01_figura10.gif" width="526" height="396"></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><i><b>Determinación del Equivalente de Dextrosa</b></i></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">La determinación de glucósidos reductores se realizó por el método de DNS. Para la determinación de sólidos totales primero se registró el peso de una caja Petri seca, vacía y limpia. Luego se pesó de 2 a 3 gramos del jarabe y se llevó a la estufa a 100 &deg; C por tres horas, posteriormente se depositó en un desecador y se pesó cada media hora hasta obtener un peso constante.</font></p>     <p align="center"><a name="t3"></a><img src="/img/revistas/rbq/v32n2/a01_figura11.gif" width="682" height="288"></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="3"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Las enzimas alfa-amilasa BAN 480L y amiloglucosidasa Dextrozyme DX 1.5x hidrolizan efectivamente las cadenas de almidón de yuca, llegando a obtener una concentración de oligosacáridos igual a 89.8% en la etapa de licuefacción, con respecto a la etapa de sacarificación se llegó a obtener una concentración de glucosa igual a 95.9%, resultados obtenidos empleando el método polarimétrico. Para la hidrólisis las condiciones experimentales de operación fueron: de almidón con la primera enzima temperatura de 70&deg;C, pH 6.0 y tiempo de reacción 90 minutos para la enzima BAN 480L y de 60-62&deg;C, pH 4.02 - 4.05 y tiempo de incubación 72 horas para la enzima Dextrozyme DX 1.5x. De esta manera se llegó a obtener un jarabe de glucosa de alta conversión con un DE = 72.7 &plusmn; 0.2.</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="3"><b>REFERENCIAS</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">1. Soto Ibañez, R. <b>1976. </b>Aplicación de hidrólisis enzimática de almidones para producción de glucosa. Memoria de grado, Universidad Mayor de San Andrés. La Paz - Bolivia, p. 4.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=685316&pid=S0250-5460201500020000100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">2. Vargas Apaza, S. L. <b>1983. </b>Selección y evaluación de bacterias del género Bacillus productoras de amilasa en cultivo sumergido. Tesis. Universidad Nacional Mayor de San Marcos, Lima Perú.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=685318&pid=S0250-5460201500020000100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">3. Fermena, O. 2000.Química de los alimentos. 2da ed. Editorial ACRIBTA, Zaragoza, España 2000. pp. 228-240.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=685320&pid=S0250-5460201500020000100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">4. Peña Piza, A. <b>2009. </b>Hidrólisis de almidón de yuca mediante la utilización de preparaciones solubles e insolubilizadas de alfa-amilasa (Aspergillus Níger). Tesis, Universidad Industrial de Santander, Bucaramanga, pp. 30-32, 38-39.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=685322&pid=S0250-5460201500020000100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">5. Sánchez, Alberto L. <b>2002. </b>Obtención de jarabe de glucosa por hidrólisis enzimática de almidón extraído de tres variedades de yuca (Amarga, Armenta y Chile) cultivadas en la provincia de Guanentá (Santander).Tesis, Universidad Industrial de Santander, Bucaramanga, pp. 40 - 43</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=685324&pid=S0250-5460201500020000100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">6. García, Mariano G. Quintero, Rodolfo, R. López, Agustín M. Biotecnología Alimentaria. Primera edición. Editorial Limusa, México <b>1993, </b>pp. 525- 534A.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=685325&pid=S0250-5460201500020000100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref -->J. Rodríguez, Estudios Electroquímicos de la interacción del Complejo cis- diamino (1,1-ciclobutanodicarboxilato) platino (II) con Bases Nitrogenadas. Tesis para optar el título de Magíster en química, Universidad de Puerto Rico- Recinto Universitario de Mayagüez, 2001.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=685326&pid=S0250-5460201500020000100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">7. Wade JR, L.G., Química Orgánica, Segunda edición. Editorial Pearson. <b>1993, </b>pp. 256-257.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=685328&pid=S0250-5460201500020000100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">8. Tena Aldave, M. Jorrín Novo, J. V. <b>2008. </b>Extracción y ensayo de la actividad invertasa de levadura de panadería. Curso académico: Industria de alimentos - productos de panadería, departamento de Bioquímica y Biología Molecular, Universidad de Córdoba, Argentina.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=685330&pid=S0250-5460201500020000100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">9. Fajardo Castillo, E. E. Sarmiento Forero, S. C. <b>2007.   </b>Evaluación de melaza de caña como sustrato para la producción de Saccharomyces cerevisiae. Tesis, Pontificia Universidad Javeriana, Bogotá, D.C., pp. 48-49.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=685332&pid=S0250-5460201500020000100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">10. Ruiz Camacho, M. I<b>. 2009. </b>Obtención de jarabes de glucosa a partir de almidón de yuca por hidrólisis enzimática, para ser usados como sustrato en la producción de bioetanol. Tesis, Universidad Industrial de Santander, Bucaramanga, p. 24.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=685334&pid=S0250-5460201500020000100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">11. Vidal Tovar, C.R. <b>2010. </b>El ñame espino (Dioscorea rotundata Poir.): una opción en la producción de jarabes edulcorantes intermedios para la industria alimentaria. Universidad Nacional Abierta y a Distancia (UNAD) - Colombia, p. 21.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=685336&pid=S0250-5460201500020000100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
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