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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Objectives: The aim of this research was isolate kinetoplastid protozoan from wild mammals in three departments of Bolivia, to identify Trypanosomatids reservoirs that could cause infection in different reservoirs and disease in humans. Methods: The wild mammals were caught in the Chaco, valleys and the tropical zone of Bolivia, using Sherman, Havahard and Tomahawk traps. Captured animals were anesthetized and xenodiagnosis and blood cardiac puncture was performed; trypanosomatides isolation using blood culture was done in NNN culture media and the respective identification was performed by PCR-RFLP techniques in the molecular biology laboratory of IIBISMED. Results: 236 wild mammals belonging to 30 species were captured, of which 7 species showed infection by hemoflagellates. Trypanosoma cruzi was isolated from Didelphis marsupialis, D. albiventris, Galea musteloides, Graomys domorum and Andalgalomis pearsoni; T.c. marinkellei and T. dionisii were isolated from Carolia perspicillata (bats) and other kinetoplastid not identified by available molecular tools were also isolated from Andalgalomys and Graomys mammals genus, from Campero and Cordillera provinces of Cochabamba and Santa Cruz. Conclusions: The T. cruzi, T.c. marinkellei, T. dionisii and other trypanosomatids are infecting marsupials (Didelphis), rodents (Graomys and Andalgalomys) and wild guinea pigs (Galea) which are found in a sylvatic cycle in the studied areas.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <h1 align="right"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Art&iacute;culo Original</b></font></h1>     <p align="right">&nbsp;</p> <h1 align="center"><b><font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Tripanosom&aacute;tidos aislados de mam&iacute;feros silvestres en tres departamentos de Bolivia (Cochabamba, Potos&iacute; y Santa Cruz de la Sierra)</font></b></h1>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><b><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Trypanosomatidae isolated from wild mammals in three departments of Bolivia (Cochabamba, Potosi and Santa Cruz de la Sierra)</font></b></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Torrico M.C.<sup>1,a</sup>, T&eacute;llez T.<sup>1,b</sup>, Tenorio O.<sup>1,b</sup>, Rojas L.<sup>1,a</sup>, Huaranca J.C.<sup>1,b</sup>, De la Barra A.<sup>1,a</sup>, Garc&iacute;a A.L.<sup>1,b</sup>, Torrico F.<sup>1,c</sup></b><sup></sup></font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><sup>1</sup>Laboratorio de Parasitolog&iacute;a y Laboratorio de Biolog&iacute;a Molecular-Instituto de Inves-tigaci&oacute;nes Biom&eacute;dicas (IIBISMED), Facultad de Medicina, Universidad Mayor de San Sim&oacute;n. Cochabamba, Bolivia. <sup>a</sup>Bioqu&iacute;mico-farmac&eacute;utico; <sup>b</sup>Bi&oacute;logo; <sup>c</sup>M&eacute;dico Tropicalista.</font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">*Correspodencia a: Mary Cruz Torrico Rojas,Correo electr&oacute;nico: <a href="mailto:mctorrico@gmail.com">mctorrico@gmail.com</a></font></p>     <p align="left"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Recibido el 8 de abril de 2013. </font></p>     <p align="left"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Aceptado el 20 de mayo de 2013.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="left">&nbsp;</p>     <p align="left">&nbsp;</p> <hr>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Resumen</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Objetivos</b>: el objetivo de la investigaci&oacute;n fue aislar protozoarios kinetopl&aacute;stidos a partir de mam&iacute;feros silvestres en tres departamentos de Bolivia, con la finalidad de identificar reservorios de tripanosom&aacute;tidos que podr&iacute;an causar infecci&oacute;n en diferentes reservorios y enfermedades en el humano. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>M&eacute;todos:</b> Los mam&iacute;feros silvestres fueron capturados en el Chaco, valles interandinos y la zona tropical de Bolivia, utilizando trampas Sherman, Havahard y Tomahawk. Los animales capturados fueron anestesiados para realizar el xenodiagn&oacute;stico y la extracci&oacute;n de sangre por punci&oacute;n cardiaca; el aislamiento de tripanosom&aacute;tidos se realiz&oacute; por hemocultivo utilizando medios de cultivo NNN y su respectiva identificaci&oacute;n por las t&eacute;cnicas de PCR-RFLP en el laboratorio de Biolog&iacute;a molecular IIBISMED.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <b>Resultados</b>: fueron capturados 236 mam&iacute;feros silvestres pertenecientes a 30 especies, de las cuales 7 especies presentaron infecci&oacute;n por hemoflagelados. Trypanosoma cruzi fue aislado de Didelphis marsupialis, D. albiventris, Galea musteloides, Graomys domorum y Andalgalomis pearsoni; T.c marinkellei y T. dionisii fueron aislados de Carolia perspicillata (murci&eacute;lagos) y otros kinetopl&aacute;stidos no identificados por herramientas moleculares disponibles fueron aislados de mam&iacute;feros del g&eacute;nero Graomys y Andalgalomys, capturados en las provincias Campero de Cochabamba y Cordillera del departamento de Santa Cruz. Conclusiones: El T. cruzi, T.c. marinkellei, T. dionisii y otros tripanosom&aacute;tidos se encuentran infectando a marsupiales (Didelphis), roedores (Graomys y Andalgalomys) y cobayos silvestres (Galea) los cuales se encuentran en su ciclo silvestre en las zonas estudiadas.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Palabras claves</b>: Trypanosoma cruzi; mam&iacute;feros; infecci&oacute;n; roedores; murci&eacute;lagos; Bolivia.</font></p> <hr>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Abstract</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Objectives</b>: The aim of this research was isolate kinetoplastid protozoan from wild mammals in three departments of Bolivia, to identify Trypanosomatids reservoirs that could cause infection in different reservoirs and disease in humans. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Methods</b>: The wild mammals were caught in the Chaco, valleys and the tropical zone of Bolivia, using Sherman, Havahard and Tomahawk traps. Captured animals were anesthetized and xenodiagnosis and blood cardiac puncture was performed; trypanosomatides isolation using blood culture was done in NNN culture media and the respective identification was performed by PCR-RFLP techniques in the molecular biology laboratory of IIBISMED.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> <b>Results</b>: 236 wild mammals belonging to 30 species were captured, of which 7 species showed infection by hemoflagellates. Trypanosoma cruzi was isolated from Didelphis marsupialis, D. albiventris, Galea musteloides, Graomys domorum and Andalgalomis pearsoni; T.c. marinkellei and T. dionisii were isolated from Carolia perspicillata (bats) and other kinetoplastid not identified by available molecular tools were also isolated from Andalgalomys and Graomys mammals genus, from Campero and Cordillera provinces of Cochabamba and Santa Cruz. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Conclusions</b>: The T. cruzi, T.c. marinkellei, T. dionisii and other trypanosomatids are infecting marsupials (Didelphis), rodents (Graomys and Andalgalomys) and wild guinea pigs (Galea) which are found in a sylvatic cycle in the studied areas.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Keywords</b>: Trypanosoma cruzi; mammals; infection; rodentia; bats; Bolivia.</font></p> <hr>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Diferentes especies de protozoarios kinetopl&aacute;stidos han sido aislados de diversas especies de mam&iacute;feros silvestres, alguno de los cuales al ser transmitidos al hombre pueden producir patolog&iacute;as, como la enfermedad de Chagas causada por T. cruzi, y las leishmaniasis por diferentes especies de Leishmania<sup>1-3</sup>.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Seg&uacute;n investigaciones realizadas fueron identificados T. lewisi y T. rangeli en roedores, marsupiales, murci&eacute;lagos, etc<sup>1,4-7</sup>. En el nuevo mundo los perezosos constituyen los reservorios importantes de L. guyanensis / L. panamensis, los marsupiales (g&eacute;nero Didelphis, Caluromys, etc.) y los roedores son reservorios de L. mexicana, L. amazonensis y L. lainsoni. Por otro lado se ha observado infecci&oacute;n natural Rattus spp con L. (V.) guyanensis<sup>2</sup>.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Otros tripanosom&aacute;tidos que se encuentra infectando a los murci&eacute;lagos son T cruzi, T. vespertilionis, T. dionisii y T.c ma-rinke&uuml;ei<sup>7Al</sup>.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Trypanosoma cruzi tiene como reservorio aproximadamente a ochenta especies de mam&iacute;feros silvestres en diferentes pa&iacute;ses de Latinoam&eacute;rica, donde los mam&iacute;feros del g&eacute;nero Didelphis (D. albiventris y D. marsupialis) constituyen sus principales reservorios, alcanzado hasta un 50% de infecci&oacute;n<sup>1,4,5,12-14</sup>. Por este motivo estos mam&iacute;feros tendr&iacute;an que considerarse como una fuente potencial de ingreso de T. cruzi al ciclo dom&eacute;stico, debido a su capacidad de invadir el peridomicilio<sup>15,16</sup>. La transmisi&oacute;n de Trypanosoma cruzi en las especies del g&eacute;nero Didelphis puede ocurrir tanto por la deposici&oacute;n de las heces de triatominos en la piel lastimada y en las mucosas, como por v&iacute;a oral (alimentaci&oacute;n con murci&eacute;lagos, roedores o vectores infectados)<sup>17</sup>. Por otra parte los roedores son considerados reservorios secundarios de T. cruzi entre los que podemos mencionar al g&eacute;nero Akodon, Oligoryzomys, Calomys, etc. armadillos (Dasypus) y murci&eacute;lagos (Carolia)<sup>17-20</sup>.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En Bolivia pocos estudios fueron publicados referentes a la identificaci&oacute;n de protozoarios tripanosom&aacute;tidos en mam&iacute;feros silvestres, entre los cuales solo podemos evidenciar a T. cruzi infectando a murci&eacute;lagos y marsupiales. Los marsupiales son principales reservorios silvestres de este kinetopl&aacute;sti-do<sup>17,18</sup>. Por otra parte en un estudio realizado por Cortez MR y col. en 2006, en la localidad de Cotapachi de Cochabamba, reporta que el 47,5 % de roedores (Bolomys lactens y Akodon boliviensis) y 26,7 % de marsupiales (Thylamys elegans) capturados presentaron infecci&oacute;n por T. cruzi<sup>21</sup>. Basados en este hecho es que la presente investigaci&oacute;n tiene por objetivo aislar protozoarios kinetopl&aacute;stidos a partir de mam&iacute;feros silvestres en tres departamentos de Bolivia, con la finalidad de identificar reservorios de Tripanosom&aacute;tidos que podr&iacute;an causar ciertas enfermedades en el humano.</font></p> <h2 align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Materiales y m&eacute;todos</font></h2>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Área de estudio</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El estudio fue realizado en las zonas de los Valles interandinos correspondientes a las provincias de Campero (Sud 17&deg;54&rsquo;09&rdquo; a 18&deg;40&rsquo;50&rdquo;) y Mizque (-17&deg; 56&rsquo; 27 S) del departamento de Cochabamba, la provincia Charcas (Toro Toro 18&deg; 02&rsquo; 00&rsquo;&rsquo; S) del departamento de Potos&iacute; y Carrasco tropical (O 64&deg;51&rsquo;19; S 17&deg; 0&rsquo;14.8&rdquo;) del departamento de Cochabamba; el chaco boliviano correspondiente a la provincia Cordillera (24&deg;50&rsquo; y 25&deg;30&rsquo; de latitud sur y los meridianos 57&deg;30&rsquo; y 56&deg;27&rsquo;) del departamento de Santa Cruz.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Capturas de mam&iacute;feros silvestres</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Para la captura de los mam&iacute;feros se utiliz&oacute; trampas tipo Sherman, Tomahok y Havahard, dispuestas en transectas de 100 a 200 metros de distancia perpendiculares al camino, las cuales estuvieron activas por siete noches consecutivas. En cada transecta se instal&oacute; 40 trampas altern&aacute;ndose por cada cinco trampas Sherman una Tomahow, la distancia entre trampas fue de aproximadamente 5 m, dispuestas de forma equidistante entre ellas. Las trampas fueron cebadas con una mezcla de avena, esencia de vainilla, carne enlatada, mantequilla de man&iacute;, at&uacute;n y pasas de uvas (Tarifa &amp;&nbsp;Yensen 2001; Vargas &amp;&nbsp;Simonetti. 2004)<sup>22,23</sup>. La revisi&oacute;n de trampas se realiz&oacute; cada 24 horas, recolect&aacute;ndose los animales que hayan sido capturados y receb&aacute;ndose las mismas (figura 1).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los mam&iacute;feros capturados fueron anestesiados previamente con ketamina (20 mg/kg) por v&iacute;a intramuscular antes de someterlos a la identificaci&oacute;n taxon&oacute;mica, la toma de muestras para xenodiagn&oacute;stico y hemocultivo con la finalidad de aislar y tipificar los tripanosom&aacute;tidos que infectan a los mam&iacute;feros. Despu&eacute;s de la toma de muestras los animales fueron liberados y las muestras tomadas fueron transportadas al Laboratorio de Parasitolog&iacute;a, Instituto de Investigaciones Biom&eacute;dicas (IIBISMED) de la Universidad Mayor de San Sim&oacute;n (UMSS) para continuar su procesamiento.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Xenodiagn&oacute;stico</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">A todos los animales capturados se les realiz&oacute; xenodiagn&oacute;stico utilizando 6 ninfas de 3&deg; estadio de Triatoma infes</font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">tans contenidos en un cilindro y colocados sobre el vientre del animal por el lapso de 15 minutos (figura 1).</font></p>     <div align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><img src="/img/revistas/gmb/v36n1/v36n1a2-1.jpg" width="495" height="367"/></font> </div>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Figura 1. A la izquierda, marsupial (Didelphis albiventris) capturado en trampa Tomahok; a la derecha, toma de muestras para xenodiagn&oacute;stico en roedor (Proechimys brevicauda).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> Los triatominos utilizados proven&iacute;an del insectario de la Escuela T&eacute;cnica de Salud Boliviana-Japonesa de Cochabamba. Las lecturas de los xenodiagn&oacute;sticos se realizaron a los 30, 60 y 90 d&iacute;as despu&eacute;s de la ingesta de sangre, mediante observaci&oacute;n microsc&oacute;pica de las heces fecales utilizando objetivo 40x.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Hemocultivo</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Fue obtenida aproximadamente entre dos a tres ml de sangre por punci&oacute;n cardiaca, e inmediatamente inoculados en forma est&eacute;ril a dos tubos de medio de cultivo NNN-LIT, los tubos sembrados fueron incubados entre 24 a 26&deg;C de temperatura en una estufa refrigerada, los cultivos fueron examinados al microscopio a los 30, 60 y 90 d&iacute;as despu&eacute;s de la inoculaci&oacute;n. Los cultivos positivos fueron transferidos al Laboratorio de Biolog&iacute;a Molecular, IIBISMED de la UMSS, para la identificaci&oacute;n de los par&aacute;sitos por PCR-RFLP</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Aspectos &eacute;ticos</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los animales estudiados fueron capturados y manipulados con la autorizaci&oacute;n del Viceministerio de Medio Ambiente, Bio diversidad, Cambios Clim&aacute;ticos y Gesti&oacute;n y Desarrollo Forestal de Bolivia.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">An&aacute;lisis estad&iacute;stico</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El an&aacute;lisis de resultados se realiz&oacute; mediante tablas de frecuencia para indicar el n&uacute;mero y/o porcentaje, mediante el software Microsoft Excel 2010&reg;.</font></p> <h2 align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Resultados</font></h2>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En el &aacute;rea de estudio fueron capturados 236 mam&iacute;feros silvestres: 185 animales en las provincias de Carrasco, Mizque y Campero del departamento de Cochabamba; 41 animales en la provincia Cordillera del departamento de Santa Cruz y 10 animales en la provincia Charcas del departamento de Potos&iacute;. Las especies de mam&iacute;feros capturados en mayor n&uacute;mero</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Tabla 1. Especies de mam&iacute;feros capturados en los Departamentos de Cochabamba, Santa Cruz y Potos&iacute;.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><img src="/img/revistas/gmb/v36n1/v36n1a2-3.JPG" width="502" height="338"></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">fueron, Carolila perspicillata, Graomys domorum, Desmodus rotundus, Andalgalomys pearsoni, Didelphis albiventris, Thyla-mys venusta, Oryzomys cf. nitidus, Oligoryzomys microtis, Galea musteloides, Graomys griseoflavus, Tolypeutes matacus, Didelphis marsupialis y otros mam&iacute;feros en n&uacute;mero menor de ejemplares (tabla 1).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">De los 236 mam&iacute;feros, el 15% (n=37) present&oacute; infecci&oacute;n por tripanosom&aacute;tidos las especies Carollia perspicillata (n=18), Graomys domorum (n=3), Andalgalomys pearsoni (n=3), Didelphis albiventris (n=5), Galea musteloides (n=1), Graomys griseoflavus (n=4), Didelphis marsupialis (n=3), tal como se observa en la tabla 2.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los tripanosom&aacute;tidos aislados por hemocultivos y tipificaci&oacute;n molecular en el laboratorio de Biolog&iacute;a Molecular fueron identificados como Trypanosoma cruzi, T.c. marinkellei,</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">T. dionisii y par&aacute;sitos tripanosom&aacute;tidos no identificados por herramientas moleculares disponibles en nuestro laboratorio. Las especies Didelphis albiventris, Galea musteloides, Didelphis marsupialis capturadas en las zonas estudiadas, presentaron infecci&oacute;n solo por Trypanosoma cruzi, la especie Ca-rollia perspicillata (murci&eacute;lagos) capturadas en la provincia Carrasco present&oacute; infecci&oacute;n por T.c. marinkellei o T. dionisii; Graomys domorum, Andalgalomys pearsoni, presentaron infecci&oacute;n por T cruzi o por tripanosom&aacute;tidos no identificados y la especie Graomys griseoflavus present&oacute; infecci&oacute;n solo por tripanosom&aacute;tidos no identificados por las herramientas moleculares disponibles los cuales se encuentran circulando en las provincia Campero de Cochabamba y Cordillera del departamento de Santa Cruz. Otro resultado importante es que en las provincia Charcas de Potos&iacute; y Mizque de Cochabamba solo se identific&oacute; a T. cruzi infectando a roedores y marsupiales.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Tabla 2. Tripanosom&aacute;tidos aislados de mam&iacute;feros silvestres en los Departamentos de Cochabamba, Santa Cruz y Potos&iacute;.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><img src="/img/revistas/gmb/v36n1/v36n1a2-4.JPG" width="569" height="294"></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Tabla 3. Trypanosoma cruzi en especies de mam&iacute;feros silvestres en los Departamentos de Cochabamba, Santa Cruz y Potos&iacute;.</font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><img src="/img/revistas/gmb/v36n1/v36n1a2-5.JPG" width="520" height="172"></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Fueron determinados como reservorios de Trypanosoma cruzi, las especies Graomys domorum, Andalgalomys pearsoni, Didelphis albiventris, Galea musteloides y Didelphis marsupialis, siendo los principales reservorios D. albiventris y D. marsupialis con un 47% y 50% de infecci&oacute;n respectivamente (tabla 3).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Otro resultado importante es que los tripanosom&aacute;tidos aislados de los mam&iacute;feros silvestres desarrollados en medios de cultivo in vitro (NNN modificado-LIT) en los primocultivos tienen las siguientes caracter&iacute;sticas morfol&oacute;gicas: las formas epimastigotes de T.c. marinkellei y T. dionisii son de forma relativamente redondeada y gruesas, con movimiento aletargado, crecimiento r&aacute;pido en primocultivos, pero no son capaces de formar colonias ni adaptarse en cultivo in vitro (figuras 2c y 2d); los hemoflagelados no identificados son delgados, alargados en forma de hoz, con dificultad de desarrollarse y adaptarse en cultivo in vitro (figura 2b), a diferencia de las formas epi-mastigotes de T. cruzi, los cuales son capaces formar colonias de like amastigotes en primocultivos y adaptarse en cultivos in vitro, hasta obtener cultivos masivos de formas epimastigostes (figura 2a).</font></p> <h2 align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Discusi&oacute;n</font></h2>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En el presente estudio los resultados obtenidos nos muestran que un 15% del total de mam&iacute;feros capturados presenta infecci&oacute;n por tripanosom&aacute;tidos, entre ellos marsupiales del g&eacute;nero Didelphis, roedores del g&eacute;nero Graomys, Andalgalomys y Galea (ratones y conejos), y murci&eacute;lagos del g&eacute;nero Carollia. Uno de los principales tripanosom&aacute;tidos identificados fue T. cruzi que se encuentra infectando a los mam&iacute;feros silvestres Didelphis marsupialis y Didel-phis albiventris (50% de los animales capturados); resultados que concuerdan con otras investigaciones donde los marsupiales son los principales reservorios de este tripanosom&aacute;tido pudiendo alcanzar hasta un 54% de infecci&oacute;n<sup>4,5,12,13</sup>. Por el contrario en otras investigaciones realizadas en la provincia de Corrientes de Argentina obtuvieron resultados contrarios donde los marsupiales no</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"> No amplifica: Tripanosom&aacute;tidos no identificados con la herramientas moleculares disponibles.</font></p>     <div align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><img src="/img/revistas/gmb/v36n1/v36n1a2-2.jpg" width="1031" height="261"/></font> </div>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Figura 2. Formas epimastigotes de Tripanosom&aacute;tidos aislados de mam&iacute;feros silvestres en medio de cultivo NNN modificado-LIT (primocultivos): A) T. cruzi; B) Tripanosom&aacute;tidos no identificados; C) T.c. marinckely y D)T. dionisi, te&ntilde;idos con colorante Giemsa; observaci&oacute;n microsc&oacute;pica con objetivo 100x.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Presentaron infecci&oacute;n de T. cruzi, pero la sola presencia de D. albiventris, reservorio silvestre primario de T. cruzi constituye un factor de riesgo para la transmisi&oacute;n de la enfermedad, habiendo la posibilidad de que estos puedan infectarse al entrar en contacto con vectores infectados en su recorrido e invadir los ambientes dom&eacute;sticos y peridom&eacute;sticos<sup>2,12</sup>.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Por otra parte en el sud este del Brasil, investigadores identificaron T. rangeli y T. cruzi en marsupiales 58,4 y el 8,3% respectivamente e incluso reportaron la presencia de infecciones mixtas en estos animales (33,3%)<sup>4</sup>, resultados que difieren a los nuestros donde los marsupiales presentaron &uacute;nicamente infecci&oacute;n por T. cruzi, no observ&aacute;ndose infecci&oacute;n por otros tripanosom&aacute;tidos.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Las investigaciones realizadas en Bolivia encuentran a T. cruzi infectando a numerosas especies de mam&iacute;feros silvestres arb&oacute;reas y terrestres tales como los marsupiales, eden-tados (armadillo de la especie Dasypus), m&aacute;s de 50 especies de roedores, murci&eacute;lagos y carn&iacute;voros primates<sup>17</sup>. Un estudio realizado por Valette E. y col en 1988 en la zona de los Yungas y el Alto Beni report&oacute; infecci&oacute;n por T. cruzi en 4 marsupiales (D. marsupialis) y 1 armadillo (Dasypus novemcinctus)<sup>18</sup>. Otro estudio realizado en Cotapachi (Cochabamba), demuestra infecci&oacute;n por T. cruzi en los roedores P. ocilae (61%) Bolomys lactens (63%), Akodon boliviensis (43%) y el marsupial Thyla-mys elegans (27%)<sup>21</sup>.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En el presente estudio, Trypanosoma cruzi fue tambi&eacute;n aislado de roedores silvestres como Graomys domorum, Andalga-lomys pearsoni y Galea musteloide, resultados que concuerdan con otras investigaciones donde T. cruzi fue aislado tambi&eacute;n de roedores silvestres<sup>21,24</sup>. Los roedores Graomys domorum, Andalgalomys pearsoni en nuestro estudios adem&aacute;s de presentar infecci&oacute;n por T. cruzi, estaban infectados por otros tripa-nosom&aacute;tidos, los cuales no pudieron ser identificados por las herramientas moleculares disponibles en nuestro laboratorio. Seg&uacute;n algunos investigadores los roedores pueden ser reser-vorios de T. cruzi y otros tripanosom&aacute;tidos como Leishmania, T. lewisi y T. rangeli<sup>1,7</sup>. Sin embargo, los tripanosom&aacute;tidos no identificados en nuestro estudio no amplificaron frente a cebadores espec&iacute;ficos para el g&eacute;nero Leishmania ( datos no mostrados), por lo que deducimos de que se tratar&iacute;an de otros hemoflagelados.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Otro de los trypanosom&aacute;tidos aislados en el presente estudio fueron T.c. Marinkellei y T. dionisii (Garcia y col 2012)<sup>8</sup> a partir de murci&eacute;lagos de la especie Carolia persipillata capturados en las zona de Carrasco Tropical de Cochabamba, no observ&aacute;ndose infecci&oacute;n por T. cruzi, a diferencia de otras investigaciones donde estos mam&iacute;feros han sido reportados como reservorios de T. cruzi, y de otros tripanosom&aacute;tidos como Trypanosoma vespertilionis que es frecuentemente encontrado parasitando estos animales, por lo que los murci&eacute;lagos deber&iacute;an ser considerados en los estudios epidemiol&oacute;gicos de la enfermedad de Chagas debido a la adaptaci&oacute;n de muchas especies al domicilio humano<sup>13,17,25</sup>.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Referente a las &aacute;rea de estudio es importante remarcar que los roedores infectados por los tripanosom&aacute;tidos no identificados fueron capturados en las provincias Campero del departamento de Cochabamba y Cordillera de Santa Cruz, las cuales son contiguas por lo que suponemos que esto tripa-nosom&aacute;tidos est&aacute;n circulando en esta zona, a diferencia de las provincia Mizque y Charcas donde los roedores presentan solo infecci&oacute;n por Trypanosoma cruzi de la misma manera que los marsupiales. Por otro lado en la provincia Carrasco T. cruzi se encuentra infectando a roedores y marsupiales y T.c. marinkellei y T. dionisii a murci&eacute;lagos (Carolia perspicillata).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En conclusi&oacute;n podemos indicar que T. cruzi fue aislado de mam&iacute;feros marsupiales (Didelphis) y de cobayos silvestres (Galea), como tambi&eacute;n fueron aislados T. cruzi y otros tripan-som&aacute;tidos no identificados de roedores (Graomys y Andalgalomys) y T.c. marinkellei y T. dionisii se encuentra infectando a murci&eacute;lagos (Carolia perspicillata), par&aacute;sitos tripanosom&aacute;ti-dos que se encuentran en su ciclo silvestre en las zonas estudiadas.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Agradecimientos: al Proyecto EPINET (Epidemiolog&iacute;a de los Linajes de T cruzi) por el financiamiento para la realizaci&oacute;n de esta investigaci&oacute;n. A la Escuela de Salud Boliviana Japonesa por su colaboraci&oacute;n en la dotaci&oacute;n de Triatominos.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Conflictos de inter&eacute;s: los autores declaran no tener conflictos de inter&eacute;s relacionados a este art&iacute;culo.</font></p> <h2 align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Referencias bibliogr&aacute;ficas</font></h2>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">1. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Wisnivesky-Colli C, Schweigmann NJ, Alberti A, Pietrokovsky SM, Conti O, Montoya S, et al. Sylvatic American trypanosomiasis in Argentina. Trypanosoma cruzi infection in mammals from the Chaco forest in Santiago del Estero. Trans R Soc Trop Med Hyg 1992; 86(1): 38-41.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=062542&pid=S1012-2966201300010000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">2. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Bar Me et al. Contribuci&oacute;n al conocimiento de los reservorios del Trypanosoma cruzi (Cha-gas,1909) en la Provincia de Corrientes, Argentina. Rev Soc Bras Med Trop 1999: 32 (3): 271-276</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=062543&pid=S1012-2966201300010000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">3. &nbsp;&nbsp;&nbsp;The Center for Food Security &amp;&nbsp;Public Health, Institute for International Cooperation in Animal Biologics an OIE Collaborating Center. Iowa State University. Leishmaniasis (cut&aacute;nea y visceral). &Uacute;ltima actualizaci&oacute;n: Octubre del 2009 &copy; 2010. Disponible en: <a href="http://www.cfsph.iastate.edu/">http://www.cfsph.iastate.edu/</a> Factsheets/es/leishmaniasis.pdf</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">4. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Ramirez LE, Lages-Silva E, Alvarenga-Franco F, Matos A, Vargas N, Fernandes O, Zingales B. High prevalence of Trypanosoma rangeli and Trypanosoma cruzi in opossums and triatomids in a formerly-endemic area of Chagas disease in Southeast Brazil. Acta Trop 2002; 84(3):189-98.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=062545&pid=S1012-2966201300010000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">5. &nbsp;&nbsp;&nbsp;De Lima H, Carrero J, Rodr&iacute;guez A, de Guglielmo Z, Rodr&iacute;guez N. Trypanosomatidae de importancia en salud p&uacute;blica en animales silvestres y si-nantr&oacute;picos en un &aacute;rea rural del municipio Tovar del estado M&eacute;rida, Venezuela. Biom&eacute;dica. 2006; 26(1): 42-50.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=062546&pid=S1012-2966201300010000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">6. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Cuba Cuba A. Revisi&oacute;n de los aspectos biol&oacute;gicos y diagn&oacute;sticos del Trypanosoma (Herpetoso-ma) rangeli. Rev Soc Bras Med Trop 1998; 31(2): 207-20.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=062547&pid=S1012-2966201300010000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">7. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Pinto CM, Oca&ntilde;a-Mayorga S, Lascano MS, Grijalva MJ. Infection by trypanosomes in marsupials and rodents associated with human dwellings in Ecuador. J Parasitol 2006; 92(6): 1251-5.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=062548&pid=S1012-2966201300010000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">8. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Garcia L, Ortiz S, Osorio G, Torrico MC, To-rrico F, Solari A. Phylogenetic analysis of Bolivian bat trypanosomes of the subgenus schizotrypa-num based on cytochrome B sequence and minicircle analyses. PLoS One 2012; 7(5): e36578.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=062549&pid=S1012-2966201300010000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">9. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Da Silva M, Marcili A, Lima L, Cavazzana MJr, Ortiz PA, Campaner M, et al. Teixeira MM. Trypanosoma rangeli isolates of bats from Central Brazil: genotyping and phylogenetic analysis enable description of a new lineage using spliced-leader gene sequences. Acta Trop 2009; 109(3):199-207.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=062550&pid=S1012-2966201300010000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">10. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Herrera HM. Otros reservorios potenciales. Laboratorio de Biolog&iacute;a de Tripanosom&aacute;tidos, Instituto Oswaldo Cruz, Fiocruz, 21040-900, R&iacute;o de Janeiro, RJ, Brasil. Disponible en: <a href="http://www">http://www</a>. fiocruz.br/chagas_esp/cgi/cgilua.exe/sys/start. htm?sid=31</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">11. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Lima L, Ortiz PA, da Silva FM, Alves JM, Serrano MG, Cortez AP, Alfieri SC, Buck GA, Tei-xeira MM. Repertoire, genealogy and genomic organization of cruzipain and homologous genes in Trypanosoma cruzi, T. cruzi-like and other trypa-nosome species. PLoSOne 2012; 7(6):e38385.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=062552&pid=S1012-2966201300010000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">12. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Jansen-Franken AM. Marsupiales did&eacute;lfidos: zarig&uuml;eyas. Laboratorio de Biolog&iacute;a de Tripa-nosom&aacute;tidos, Instituto Oswaldo Cruz, Fiocruz, 21040-900, R&iacute;o de Janeiro, RJ, Brasil. Disponible en: <a href="http://www.fiocruz.br/chagas_esp/cgi/cgilua">http://www.fiocruz.br/chagas_esp/cgi/cgilua</a>. exe/sys/start.htm?sid=31</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">13. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Barretto MP. Reservorios del Trypanosoma (Schizotrypanum) cruzi (Chagas 1909). En: Car-cavallo RU, Rabinovich JE, Tonn RJ (eds). Factores biol&oacute;gicos y ecol&oacute;gicos en la enfermedad de Chagas. Buenos Aires, Argentina: OPS/Servicio Nacional de Chagas, Tomo II, p. 275-288, 1985.</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">14. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Herrera L. Una revisi&oacute;n sobre reservorios de Trypanosoma (Schizotrypanum) cruzi (Chagas, 1909), agente etiol&oacute;gico de la Enfermedad de Chagas. Bol Mal Salud Amb 2010; 50(1): 3-15.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=062555&pid=S1012-2966201300010000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">15. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Dumonteil E. Update on Chagas&rsquo; disease in Mexico. salud p&uacute;blica de m&eacute;xico. 1999; 41(4): 322-7.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">16. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Schweigmann NJ, Pietrokovsky S, Bottazzi V,Conti O, Bujas, Wisnivesky-Colli C. Estudio de la prevalencia de la infecci&oacute;n por Trypanosoma cruzi en M Azarig&uuml;eyas (Didelphis albiventris) en Santiago del Estero, Argentina1. Rev Pan Am J Public Health.1999; 6(6)</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">17. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Noireau F. La enfermedad de Chagas y sus particularidades epidemiol&oacute;gicas en Bolivia. Chagas: la enfermedad en Bolivia Ministerio de Salud y Previsi&oacute;n Social, La Paz. 1999: 17-47. Disponible en: <a href="http://www.ops.org.bo/textocompleto/">http://www.ops.org.bo/textocompleto/</a> ncha29350.pdf.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">18. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Valette E, Breniere SF, Le Pont F, Desjeux P. Zymodemes of Trypanosoma cruzi isolated from wild mammals in Bolivia. Mem Inst Oswaldo Cruz 1988; 83(1): 139-40.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=062559&pid=S1012-2966201300010000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">19. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Rodr&iacute;gues AL, Corr&eacute;a V. Roedores. Laboratorio de Biolog&iacute;a de Tripanosom&aacute;tidos, Instituto Oswaldo Cruz, Fiocruz, 21040-900, R&iacute;o de Janeiro, RJ, Brasil. Disponible en : <a href="http://www">http://www</a>. fiocruz.br/chagas_esp/cgi/cgilua.exe/sys/start. htm?sid=31.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">20. &nbsp;&nbsp;&nbsp;VI. Reuni&oacute;n de la Iniciativa Andina para el Control de la Enfermedad de Chagas. SSA-ES. Tripanosomiasis Update (pag. 271). Disponible en: <a href="http://cdiaec.uniandes.edu.co/Capitulo%203.pdf">http://cdiaec.uniandes.edu.co/Capitulo%203.pdf</a></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">21. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Cortez MR, Pinho AP, Cuervo P, Alfaro F, Solano M, Xavier SC, et al. Trypanosoma cruzi (Ki-netoplastida Trypanosomatidae): ecology of the transmission cycle in the wild environment of the Andean valley of Cochabamba, Bolivia. Exp Para-sitol 2006; 114(4): 305-13.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=062562&pid=S1012-2966201300010000200013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">22. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Tarifa T, Yensen E. Mam&iacute;feros de los bosques de Polylepis de Bolivia. Rev Bol Ecolog&iacute;a 2001; 9: 29-44.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=062563&pid=S1012-2966201300010000200014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">23. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Vargas J, Simonetti JA. Small mammals in a tropical fragmented landscape in Beni, Bolivia. Mammalian Biology 2004; 69(1):65-69.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=062564&pid=S1012-2966201300010000200015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">24. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Ceballos LA. &ldquo;Ciclo silvestre de transmisi&oacute;n de Trypanosoma cruzi en el noroeste de Argentina&rdquo; (tesis doctoral). Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires, 2010. Disponible en: <a href="http://digital.bl.fcen.uba.ar/Down-">http://digital.bl.fcen.uba.ar/Down-</a>load/Tesis/Tesis_4703_Ceballos.pdf</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">25. &nbsp;&nbsp;&nbsp;Grisard EC, Sturm NR, Campbell DA. A new species of trypanosome, Trypanosoma desterrensis sp. n., isolated from South American bats. Parasitology. 2003; 127(Pt 3): 265-71.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=062566&pid=S1012-2966201300010000200016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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