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Introducción
La fauna del Chaco boliviano en general es poco documentada; con relación a mamíferos, los roedores y murciélagos son aún menos conocidos. En 1996 los autores realizaron estudios de la mastofauna en el Alto y Bajo Izozog y en el Area Natural de Manejo Integrado Kaa-Iya del Gran Chaco. En la introducción a esta serie de estudios de fauna en el Gran Chaco (Cuéllar et al., este número), se describen las características del ambiente chaqueño y se ubican los sitios de estudio en un mapa. Este artículo presenta datos sobre los mamíferos de la zona: nombres científicos, comunes y en guaraní; distribución y hábitat; y registros por métodos de estudio.
Métodos
Para documentar la mastofauna del Izozog se emplearon varios métodos de trabajo: trampeo (trampas Sherman, trampas Tomahawk, redes de neblina); observaciones indirectas (parcelas para huellas, trampas cámara, brechas barridas); observaciones directas (censos diurnos y nocturnos, recorridos en vehículos); colección de especímenes (cráneos de animales cazados por los comunarios) y de heces de carnívoros.
1. Trampeo
Trampas Sherman: Se armaron 134 trampas Sherman por noche de trampeo, dejando dos cada diez metros a lo largo de brechas, caminos, sendas, falda del cerro y arriba en los árboles en los diferentes hábitats. Se las trasladó de lugar cada cuatro o siete días, dependiendo del número de hábitats en cada sitio. Se utilizó como cebo una mezcla de avena con atún y, en algunas ocasiones, también se le mezcló esencia de vainilla.
Trampas Tomahawk: Se armaron 10 trampas Tomahawk, una cada 30, 50 o 100 metros dependiendo del lugar, en los mismos hábitats donde se colocaron las trampas Sherman. Estas trampas eran cebadas con sardinas, en algunas ocasiones se las cebó con avena, atún y esencia de vainilla.
Tanto las trampas Sherman como las Tomahawk eran cebadas al atardecer y revisadas a la mañana siguiente.
Redes de neblina: Se utilizaron dos redes de neblina de 8-10 metros de largo por 2 metros de ancho. Se colocaron dentro del bosque, sobre brechas, boca de cuevas, pampas, alrededor de corrales, depósito de agua y patios en la comunidad de Yapiroa. Las redes se revisaron en intervalos de media hora, hasta las 22:00 horas, y en algunas ocasiones hasta las 00:00 horas. Los días de muestreo variaron en cada zona.
2. Observaciones indirectas
Parcelas para huellas: Se limpiaron áreas de 2 x 1 metro de superficie, se removió y reniveló el suelo. Con una malla milimétrica se cirnió tierra fina sobre el área preparada. Se establecieron 30 parcelitas en cada lugar, sobre las sendas y a los lados de éstas. Las parcelas fueron revisadas diariamente por la mañana durante 18 días en cada lugar.
Trampas cámara: Se utilizaron cámaras automáticas conectadas a transmisores de rayos infrarrojo, las cuales se activan al interrumpirse el campo que ocupan los rayos. Las trampas cámara fueron instaladas en lugares estratégicos como pozas con agua, sendas, brechas y fruteros. Todas las cámaras se programaron para que estén activas durante 24 horas.
Brechas barridas: Se ubicaron brechas limpias o fáciles de limpiar y con suelos principalmente arenosos. Se barrieron de 5-9 kilómetros por sitio con escobas hechas de hierbas o pastos del lugar. Las brechas barridas fueron revisadas diariamente por las mañanas y eran nuevamente barridas para borrar las huellas marcadas la noche anterior. Este método se describe en detalle en Cuéllar & Noss (1997).
3. Observaciones directas
Censos por caminatas: Se realizaron caminatas para censos de fauna en las primeras horas de la mañana, por la tarde y en las primeras horas de la noche, con un promedio de 45 minutos por kilómetro, haciendo un total de 2.505 kilómetros en los cuatro sitios de estudio.
Recorridos en vehículos: Se recorrieron de 5 a 10 kilómetros por hora en camioneta y jeep, equipados con un reflector para la búsqueda de mamíferos nocturnos. También se anotaron los datos de las observaciones en los caminos durante los viajes dentro de la zona de estudio y fuera de ésta.
4. Colección de especímenes
Cráneos y pieles: Tanto en los sitios de muestreo como en las comunidades se coleccionaron cráneos, con la finalidad de conocer las especies existentes en la zona. Se obtuvieron también las pieles encontradas en las casas y en los sitios de estudio. Se colectó un individuo de vizcacha (Lagostomus maximus) con arma de fuego, rifle calibre 22 largo. Los especímenes coleccionados fueron depositados en el Museo Noel Kempff Mercado de Santa Cruz.
Resultados
Se registraron en total 69 especies de mamíferos: 58 no voladores y 11 especies de murciélagos (Tabla 1). El mayor número de registros de mamíferos se obtuvo en La Madre y Cupesí, zona de bañados. Durante las caminatas y los recorridos en camioneta, se registraron por observaciones directas 29 especies de mamíferos. Por las huellas se identificaron 31 especies de mamíferos. En las trampas y redes se capturaron 28 especies de mamíferos, en las que se incluyen seis especies de marsupiales, diez de roedores entre grandes y pequeños, once de murciélagos y un zorro.
Se obtuvieron once nuevos registros para la zona chaqueña, no reportados en las evaluaciones anteriores realizadas por Emmons (1993), Taber et al. (1994),Taber et al. (1997)yAnderson (1997): dos carachupas (Marsupialia), seis murciélagos (Chiroptera), dos ratones y un cujuchi (Rodentia).
Tabla 1: Número de registros por especie y por método empleado.
| Nombre Científico | Caminatas | Brechas Barridas y Parcelas | Trampas cámara | Trampas Tomahawk | Trampas Shermann | Redes de neblina | Otros registros | Hábitat | Localidad |
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| DIDELPHIDAE | |||||||||
| Didelphis albiventris | 1 | Mb, Ma | LM | ||||||
| Didelphis marsupialis | 5 | Mb, Ma | LM,CC | ||||||
| Marmosops dorothea | 1 | Ma | LM | ||||||
| Micoureus demerarae | 1 | Ma | LM | ||||||
| Micoureus constantiae | 2 | Mb | TN,CC | ||||||
| Monodelphis domestica | 1 | Ma | CU | ||||||
| Philander opossum | 2 | Ma | LM | ||||||
| MYRMECOPHAGIDAE | |||||||||
| Myrmecophaga tridactyla | 2 | 7 | Mb | TN,CC,CU | |||||
| Tamandua tetradactyla | 1 | 10 | 1 | Mb,Ma | TN,CC | ||||
| BRADYPODIDAE | |||||||||
| Bradypus variegatus | 1 | Ma | IS | ||||||
| DASYPODIDAE | |||||||||
| Chaetophractus vellerosus | 4 | 1 | Mb,Ma | CC,LM | |||||
| Chaetophractus villosus | 3 | Mb,P | GR | ||||||
| Chlamyphorus retusus | 1 | Ma | AG | ||||||
| Dasypus novemcinctus | 12 | 1 | 1 | Mb, Ma | CU,SS | ||||
| Euphractus sexcinctus | 6 | 9 | 1 | Mb, Ma | TN,CC,CU | ||||
| Tolypeutes matacus | 112 | 373 | 4 | 3 | Mb,Ma,P | TN,CC,LM,CU | |||
| NOCTILIONIDAE | |||||||||
| Noctilio leporinus | 3 | Ma | LM,CU | ||||||
| PHYLLOSTOMIDAE | |||||||||
| Artibeus sp. | 3 | Ma | LM | ||||||
| Chrotopterus auritus | 2 | Ma | LM,CU | ||||||
| Desmodus rotundus | 20 | Mb | CC | ||||||
| Glossophaga soricina | 1 | Ma | CU | ||||||
| Tonatia bidens | 1 | Mb | CC | ||||||
| MOLOSSIDAE | |||||||||
| Molossus molossus | 8 | Ma | YP,CC,CU | ||||||
| Molossops temminckii | 12 | Ma | CC,LM,CU | ||||||
| Nyctinimops cf. macrotis | 2 | Mb | CC | ||||||
| VESPERTILIONIDAE | |||||||||
| Myotis sp. | 6 | Mb, Ma | CC,LM | ||||||
| Lasiurus sp. | 1 | Ma | LM | ||||||
| CALLITHRICIDAE | |||||||||
| Callithrix argentata | 2 | Ma | CU | ||||||
| CEBIDAE | |||||||||
| Alouatta caraya | 1 | 4 | Ma | IS,YP,SS,LM | |||||
| Aotus azarae | 8 | Mb, Ma | CC,LM,CU | ||||||
| Callicebus moloch | 20 | 7 | Mb, Ma | CC,LM,CU,IS,KP,YP,IY | |||||
| Cebus apella | 7 | Ma | LM,CU | ||||||
| CANIDAE | |||||||||
| Cerdocyon thous | 7 | 90 | 35 | 7 | Mb, Ma | LM,CU | |||
| Pseudalopex gymnocercus | 13 | 182 | 11 | 1 | 27 | Mb, Ma | TN,CC,LM,CU | ||
| PROCYONIDAE | |||||||||
| Nasua nasua | 1 | Ma | CU | ||||||
| Procyon cancrivorous | 1 | 1 | Ma | LM | |||||
| MUSTELIDAE | |||||||||
| Conepatus chinga | 2 | 15 | 2 | Mb, Ma | TN,CC,IY,LB | ||||
| Eira barbara | 1 | 25 | Mb, Ma | TN,CC,LM,CU | |||||
| Galictis cuja | 1 | Mb | CC | ||||||
| Lontra longicaudis | 1 | Ma | CU | ||||||
| FELIDAE | |||||||||
| Herpailurus yaguarondi | 2 | 1 | Mb,Ma | LM,AG | |||||
| Leopardus pardalis | 19 | 1 | 1 | Mb,Ma | TN,CC,LM,CU | ||||
| Oncifelis geoffroyi | 3 | 3 | 2 | Mb,Ma | TN,LM,CU | ||||
| Panthera onca | 1 | 1 | Mb,Ma,P | LM,CU | |||||
| Puma concolor | 4 | 27 | 1 | Mb,Ma,P | TN,CC,LM,CU | ||||
| TAPIRIDAE | |||||||||
| Tapirus terrestris | 3 | 83 | Mb,Ma,P | TN,CC,LM,CU | |||||
| TAYASSUIDAE | |||||||||
| Catagonus wagneri | 3 | 1 | Mb,Ma,P | CC,LM,CU,GR | |||||
| Pecari tajacu | 1 | 9 | Mb,Ma,P | TN,CC,LM,CU | |||||
| Tayassu pecari | 4 | 10 | 4 | Mb,Ma,P | TN,GR,CC,LM,C,U | ||||
| CAMELIDAE | |||||||||
| Lama guanicoe | 3 | P | GR | ||||||
| CERVIDAE | |||||||||
| Mazama americana | 1 | 2 | Ma | LM,CU | |||||
| Mazama gouazoubira | 122 | 517 | 2 | 11 | Mb,Ma,P | TN,CC,LM,CU,G,R | |||
| MURIDAE | |||||||||
| Bolomys sp. | 4 | Ma | YP | ||||||
| Calomys callosus | 35 | 1 | Ma | YP,LM,CU | |||||
| Graomys griseoflavus | 2 | 36 | Mb,Ma | TN,CC,LM, CU,Y,P | |||||
| Oryzomys nitidus | 1 | Ma | LM | ||||||
| Rattus rattus | 1 | Casas | IY | ||||||
| Mus musculus | Casas | ||||||||
| ECHIMYIDAE | |||||||||
| Proechimys sp. | 1 | 1 | Ma | CU | |||||
| CTENOMYIDAE | |||||||||
| Ctenomys conoveri | 2 | Mb | YP | ||||||
| Ctenomys sp. | 1 | Mb | CC | ||||||
| CAVIDAE | |||||||||
| Cavia aperea | 17 | 44 | 1 | 9 | Mb,Ma,P | TN,CC,CU,IS,IY | |||
| Dolichotis salinicola | 2 | Mb | KU | ||||||
| DASYPROCTIDAE | |||||||||
| Dasyprocta azarae | 16 | 29 | 3 | Mb,Ma | TN,CC,LM,CU | ||||
| ERETHIZONTIDAE | |||||||||
| Coendou prehensilis | 1 | Ma | LM | ||||||
| CHINCHILLIDAE | |||||||||
| Lagostomus maximus | 12 | Mb | CC,KU,SS, RV,IY | ||||||
| LEPORIDAE | |||||||||
| Sylvilagus brasiliensis | 6 | 139 | 14 | 1 | 3 | Ma,Mb,P | TN,CC,LM,CU |
Hábitats: Mb=monte bajo; Ma=monte alto; P=pampa.
Localidad: TN=Tierras Nuevas, CC=Cerro Colorado, LM=La Madre, CU=Cupesí, GR= Guaipa-Rancho Chico, Comunidades Izoceñas: IS= Isiporenda, AG= Aguaraigua, SS= San Silvestre, YP= Yapiroa, KP= Karaparí, IY= Iyobi, LB= La Brecha, KU= Kuarirenda, RV= Rancho Viejo.
Carachupas:
1) Didelphis marsupialis: fue registrada por datos de comunarios en Cerro Colorado (monte bajo) y en La Madre (monte alto).
2) Micoreus constantiae: se capturaron dos individuos por trampas Shermann en Tierras Nuevas (monte bajo) y un individuo en Cerro Colorado (monte bajo).
Murciélagos:
1) Chrotopterus auritus: se capturó un individuo con red de neblina en la Madre (monte alto) y un individuo en Cupesí (monte alto).
2) Glossophaga soricina: se capturó un individuo en Cupesí (monte alto).
3) Tonatia bidens: se capturó un individuo en Cerro Colorado (monte bajo).
4) Molossops temminckii: se capturaron nueve individuos con redes de neblina en Cerro Colorado (monte bajo), uno en La Madre (monte alto) y dos en Cupesí (monte alto).
5) Myotis sp.: se capturaron cinco individuos con redes de neblina en Cerro Colorado (monte bajo) y uno en la Madre (monte alto).
6) Lasiurus sp.: se capturó un individuo en La Madre (monte alto).
Ratones
1) Rattus rattus: se coleccionó un espécimen en la comunidad de Iyobi.
2) Mus musculus: fue encontrado en las viviendas de las comunidades.
Cujuchi
1) Ctenomys sp.: esta especie fue reportada por los comunarios del Izozog y no ha sido registrada por ninguno de los métodos empleados.
Según el Libro Rojo de los Vertebrados de Bolivia (Ergueta & Morales, 1996), del total de especies registradas en las evaluaciones realizadas se encuentran dos especies en peligro: Catagonus wagneri y Lama guanicoe. Nueve especies se categorizan como vulnerables: Alouatta caraya, Myrmecophaga tridactyla, Priodontes maximus, Lutra longicaudis, Leopardus pardalis, Panthera onca, Tapirus terrestris, Tayassu pecari, Pecari tajacu. En efecto, la mayoría de las especies registradas en estas evaluaciones también se encuentran en la categoría con datos insuficientes.
Discusiones
Aunque las evaluaciones realizadas en los bosques secos son escasas, éstos han demostrado ser muy importantes en cuanto a diversidad de especies. Por ejemplo, en cuanto a mamíferos grandes (>1kg), el Chaco tiene un número de especies comparable a los bosques húmedos del continente (Redford et al., 1990;Taber et al., 1994). La zona del Chaco en Santa Cruz muestra una impresionante y muy valiosa fuente de recursos biológicos aún poco conocidos.
La gran diversidad de mamíferos se debe entonces a la confluencia de ecosistemas, dando como resultado una excepcional diversidad de unidades ambientales (Taber et al., 1994). En el Chaco se encuentran especies características de bosques semi-deciduos (Callithrix argentata, Cebus apella) y de bosques húmedos (Mazama americana, Bradypus variegatus). En el Chaco estas especies se restringen a los bosques más altos y húmedos de los bañados y, en algunos casos, Alouatta caraya se extiende a lo largo del bosque alto, bordeando el río Parapetí. Además, se encuentran en el Chaco algunos mamíferos característicos de pampas (Lama guanicoe, Chaetophractus vellerosus). También en el Chaco hay especies muy generalistas que se han adaptado muy bien al ecosistema chaqueño, por ejemplo Mazama gouazoubira, Tapirus terrestris, Puma concolor y Sylvilagus brasiliensis. Finalmente, aumenta la diversidad de mamíferos en el Chaco por la existencia de especies endémicas como ser Catagonus wagneri, Chlamyphorus retusus, Aotus azarae y Ctenomys conoveri.
Los sitios con mayor diversidad fueron La Madre y Cupesí. Tal diferencia puede ser debido a que en estos dos sitios de los bañados el ambiente es más húmedo y hay mayor disponibilidad de recursos. Los relevamientos de fauna han sido realizados en época seca, cuando posiblemente se concentra la fauna en esta zona. Los otros dos sitios, Tierras Nuevas y Cerro Colorado están degradados por la ganadería intensiva y también sufren presión de cacería. Estos factores pueden ser de gran influencia en la diversidad faunística.
Algunas especies endémicas de la zona chaqueña como Catagonus wagneri y Aotus azarae fueron registradas en todas las áreas evaluadas, tanto en zonas muy secas como en las más húmedas. En cambio, Dolichotis salinicola, Lagostomus maximus y Chaetophractus vellerosus, por sus hábitos restringidos a áreas áridas, fueron registrados en lugares más secos. Lama guanicoe se encuentra únicamente en las pampas al extremo sur del Izozog, aunque antiguamente pobló los arenales del extremo noroeste del río Parapetí, donde ya desaparecieron, probablemente debido a la fuerte presión de cacería y ganadería en esta zona. Cabassous chacoensis no se registró en las evaluaciones y la presencia de Chlamyphorus retusus ha sido confirmada en Alto y Bajo Izozog por información de la gente local. Las últimas dos especies son consideradas muy raras incluso para los mismos Izoceños, puede ser que por esta razón y por sus hábitos propios sean muy difíciles de encontrar.
Los nuevos registros de mamíferos para la zona son muy importanes para conocer principalmente la distribución de algunas especies poco estudiadas. Las evaluaciones anteriores no han revelado la presencia de especies comunes en el Chaco, quizá por el período de muestreo corto y porque la zona chaqueña es muy amplia y a pesar de la gran diversidad de mamíferos que hay en ella, es muy difícil de observarlos en poco tiempo.
En el departamento de Santa Cruz se han realizado algunos relevamientos mastozoológicos en la zona chaqueña. Los estudios más importantes fueron de Taber et al. (1994) en varias localidades del Chaco boliviano para la propuesta de la creación del Parque Nacional Kaa-Iya. Otros estudios más puntuales son de un relevamiento rápido por Parker et al. (1993) y algunas colecciones de Anderson (1997). La Tabla 2 presenta una lista general de mamíferos del Izozog y del Parque Kaa-Iya con nombres científicos, comunes y guaraníes, así como referencias de estudios anteriores.
Tabla 2: Mamíferos del Izozog y del Parque Nacional Kaa-Iya del Gran Chaco.
| Nombre Científico | Nombre Común | Nombre Guaraní | Referencia |
|---|---|---|---|
| DIDELPHIDAE | |||
| Didelphis albiventris | Carachupa | Karasupa | RN,AT |
| Didelphis marsupialis | Carachupa | Karasupa | RN,AT |
| Micoureus demerarae | Comadreja | Anguya bosico | RN,AT |
| Micoeureus constantiae | Comadreja | Anguya bosico | RN,AT |
| Marmosops dorothea | Comadreja | Anguya bosico | RN,AT,SA |
| Monodelphis domestica | Comadreja | Anguya bosico | RN,AT,SA |
| Philander opossum | Carachupa | Karasupa | RN |
| Thylamys pusilla | Carachupa | AT,TP | |
| MYRMECOPHAGIDAE | |||
| Myrmecophaga tridactyla | Oso bandera | Támiguasu | RN,AT,TP |
| Tamandua tetradactyla | Osa hormiguera | Tamimí | RN,AT |
| DASYPODIDAE | |||
| Cabassous chacoensis | AT | ||
| Chaetophractus vellerosus | Lloron | Taturabuku | RN,AT,SA,TP |
| Chaetophractus villosus | Pecho amarillo | Taturakapeyu | RN,AT,TP |
| Chlamyphorus retusus | Cosevarú | Tatujeicoarajoya | RN,AT |
| Dasypus novemcinctus | Tatú | Tatuakuti | RN,AT,TP |
| Dasypus septemcinctus | Tatú | AT | |
| Euphractus sexcinctus | Peji | Tatuguaju | RN,AT |
| Priodontes maximus | Pejichi | Tatumborevi | RN,AT |
| Tolypeutes matacus | Corechi | Taturapua | RN,AT,SA,TP |
| BRADYPODIDAE | |||
| Bradypus variegatus | Peresoso | AT | |
| NOCTILIONIDAE | |||
| Noctilio leporinus | Murciélago | Andira | RN,SA |
| PHYLLOSTOMIDAE | |||
| Artibeus sp. | Murciélago | Andira | RN,SA |
| Chrotopterus auritus | Murciélago | Andira | RN |
| Desmodus rotundus | Vampiro | Andira | RN,AT,SA |
| Glossophaga soricina | Murciélago | Andira | RN |
| Tonatia bidens | Murciélago | Andira | RN |
| MOLOSSIDAE | |||
| Molossus molossus | Murciélago | Andira | RN,SA |
| Molossops temminckii | Murciélago | Andira | RN |
| Nyctinimops cf. macrotis | Murciélago | Andira | RN,SA |
| VESPERTILIONIDAE | |||
| Myotis sp. | Murciélago | Andira | RN |
| Lasiurus sp. | Murciélago | Andira | RN |
| CALLITHRICIDAE | |||
| Callithrix argentata | Mono leoncito | RN,AT | |
| CEBIDAE | |||
| Alouatta caraya | Manechi | Karaya | RN,AT |
| Aotus azarae | Cuatro ojos | Mbarikina | RN,AT,SA |
| Callicebus moloch | Ururó | Ubo | RN,AT,SA |
| Cebus apella | Mono martín | Machi | rn,at |
| CANIDAE | |||
| Cerdocyon thous | Zorro patas negras | Äguarau | RN,AT,TP |
| Pseudalopex gymnocercus | Zorro patas amarillas | Aguara | RN,AT,SA,TP |
| Speothos venaticus | Perrito de monte | AT | |
| PROCYONIDAE | |||
| Nasua nasua | Tejón | RN,AT | |
| Procyon cancrivorous | Zorrino | Mboeta | RN,AT |
| MUSTELIDAE | |||
| Conepatus chinga | Zorillo | Miküre | rn,at,sa,tp |
| Eira barbara | Melero | Eira | RN,AT |
| Galictis cuja | Hurón | Ñaguaruape | RN,AT |
| Lontra longicaudis | Lobito de rio | RN,AT | |
| Pteronura brasiliensis | Londra | AT | |
| FELIDAE | |||
| Herpailurus yaguarondi | Gato gris | Eira | RNAT |
| Leopardus pardalis | Ocelote | Mbarakayaguaju | RN,AT |
| Leopardus wiedii | Gato brasil | AT | |
| Oncifelis geoffroyi | Gato pintado | Mbarakayamí | rn,at |
| Panthera onca | Tigre | Yagua | RN,AT,TP |
| Puma concolor | León | Yaguapïta | RN,AT,TP |
| TAPIRIDAE | |||
| Tapirus terrestris | Anta | Mborevi | RN,AT,TP |
| TAYASSUIDAE | |||
| Catagonus wagneri | Solitario | Taitetuguaju | RN,AT |
| Tayassu pecari | Tropero | Tayaju | RN,AT |
| Pecari tajacu | Taitetú | Taitetu | RN,AT,SA,TP |
| CAMELIDAE | |||
| Lama guanicoe | Guanaco | Guasukaka | RN,AT,SA,TP |
| CERVIDAE | |||
| Mazama americana | Guazo | Guajupïta | RN,AT |
| Mazama gouazoubira | Hurina | Guaju | RN,AT,SA,TP |
| Ozotoceros bezoarticus | Gama | AT | |
| SCIURIDAE | |||
| Sciurus spadiceus | Ardilla | AT | |
| MURIDAE | |||
| Akodon sp. | Ratón | AT | |
| Bolomys sp. 1 | Ratón | Anguya | RN,AT,SA |
| Bolomys sp. 2 | Ratón | Anguya | AT |
| Calomys sp. | Ratón | Anguya | RN,AT |
| Calomys callosus | Ratón | Anguya | RN,AT,SA,TP |
| Calomys laucha | Ratón | AT | |
| Graomys griseoflavus | Ratón | Anguya | RN,AT,SA,TP |
| Holochilus brasiliensis | Ratón | AT | |
| Nectomys sp. | Ratón | AT | |
| Oryzomys nitidus | Ratón | Anguya | RN,AT,SA |
| Oryzomys sp. | Ratón | Anguya | RN,AT |
| Pseudoryzomys sp. | Ratón | AT | |
| Rattus rattus | Rata casera | Anguya | RN,AT |
| Mus musculus | Ratón casero | Anguya | rn,at |
| ECHIMYIDAE | |||
| Proechimys sp. | Ratón | Anguya | RN,AT,SA |
| CTENOMYIDAE | |||
| Ctenomys conoveri | Cujuchi | Anguyatutu | RN,AT,SA |
| Ctenomys sp. | Cujuchi | Takumbokumbo | RN,AT |
| CAVIDAE | |||
| Cavia aperea | Cui/Conejo | Aperea | RN,AT,SA |
| Dolichotis salinicola | Liebre | Tapitiguaju | RN,AT |
| Galea musteloides | Cui | AT,TP | |
| HYDROCHAERIDAE | |||
| Hydrochaeris hydrochaeris | Capiguara | AT | |
| AGOUTIDAE | |||
| Agouti paca | Jochi pintao | AT | |
| DASYPROCTIDAE | |||
| Dasyprocta azarae | Jochi colorado | Akuti | RN,AT,TP |
| ERETHIZONTIDAE | |||
| Coendou prehensilis | Puerco espino | Küi | RN,AT,SA |
| CHINCHILLIDAE | |||
| Lagostomus maximus | Vizcacha | Anguyaguaju | RN,AT,SA,TP |
| LEPORIDAE | |||
| Sylvilagus brasiliensis | Tapití | Tapiti | RN,AT |
Referencias: RN=Proyecto Recursos Naturales de la CABI, 1996; AT=Taber et al., 1994; TP=Parker et al., 1993; SA=Anderson, 1997.
Una zona cercana a la formación chaqueña y con influencia de ésta es la formación de bosque semideciduo chiquitano, donde se han realizado estudios en comparación a la zona chaqueña: por ejemplo San Miguelito (Fuentes et al., 1996), Concesión Don Mario (Killeen et al., 1996) y Lomerío (Guinart, 1997). Se observa que la zona de Izozog tiene mayor número de especies en tres órdenes: Marsupialia (7), Xenarthra (9) y Artiodactyla (6). En cuanto a Xenarthra y Artiodactyla la diferencia se debe al endemismo de especies chaqueñas en la zona (ver Tabla 3).
Tabla 3: Especies registradas en el Izozog versus sitios de bosque semidecíduo chiquitano en el departamento de Santa Cruz
| TAXONOMIA | IZOZOG | 1) SAN MIGUELITO | 2) CONCESION DAN MARIO | 3) LOMERIO |
|---|---|---|---|---|
| Orden: Marsupialia | 7 | 4 | 2 | 5 |
| Orden: Xenarthra | 10 | 8 | 7 | 8 |
| Orden: Primates | 5 | 6 | 6 | 6 |
| Orden: Carnivora | 13 | 13 | 14 | 13 |
| Orden: Perissodactyla | 1 | 1 | 1 | 1 |
| Orden: Artiodactyla | 6 | 4 | 4 | 4 |
| Orden: Lagomorpha | 1 | 1 | 1 | 1 |
| Orden: Rodentia | 14 | 21 | 10 | 10 |
| Totales | 57 | 58 | 45 | 48 |
3) GUINART, 1997.
Los estudios de fauna en bosques secos en general son pocos comparados con los estudios realizados en la Amazonia, pero son una base importante para continuar investigando y documentando la biodiversidad en este bioma tan importante y aún poco conocido.
La presencia de los pequeños roedores aparentemente es mayor en sitios de pastoreo de ganado, esta superioridad tal vez se debe a que el ganado come frutas silvestres y al defecar expulsa las semillas, situación que aprovecharían los roedores para alimentarse. En general la diversidad de ratones es baja en comparación a otras zonas de Santa Cruz. La especie registrada con mayor frecuencia fue Graomys griseoflavus.
Conclusiones
Los sitios evaluados dan una pauta de la alta diversidad de especies en la zona chaqueña. Los endemismos son de mucha importancia lo que hace fundamental las acciones de conservación en esta zona. Los nuevos registros reflejan una ampliación de las áreas de distribución de algunas especies. Los resultados en sitios con influencia de cacería y ganadería son un inicio para evaluar la situación de la fauna en esas áreas y elaborar planes de manejo para desarrollar acciones prácticas. La diversidad de ambientes y las estaciones bien marcadas en la zona juegan un importante rol en la presencia de las diferentes especies de mamíferos y la actividad de los mismos.
La modificación de algunos métodos (brechas barridas, censos más rápidos) para adaptarlos mejor a la zona han sido ejecutados en este trabajo y su efectividad es comprobada (ver también Cuéllar & Noss, 1997). La combinación de los diversos métodos empleados durante las evaluaciones ha resultado muy efectiva en el lapso de tres semanas en cada sitio. Aunque los diferentes componentes del grupo de trabajo tenían sus propias actividades anotaron también sus observaciones diarias en planillas para registro de mamíferos lo que ha ayudado mucho para lograr mejores resultados.
Los parabiólogos del equipo de recursos naturales de la CABI han adquirido experiencia en cuanto técnicas para evaluaciones de fauna. Es fundamental para el desarrollo de estrategias futuras que sea la gente local quienes desarrollen programas de conservación y manejo de especies importantes en la zona chaqueña.
